TLR配体刺激LSEC评估成熟和T细胞启动能力
确定TLR2/9配体是否能诱导LSEC表型和功能成熟。
从野生型小鼠分离LSEC,以P3C、ODN1826等刺激24小时,通过流式检测成熟标记,ELISA检测细胞因子,与脾细胞共培养检测T细胞应答。
Glycolysis Drives TLR Ligand-Induced Maturation and Immune Activation of Liver Sinusoidal Endothelial Cells
包含体外原代细胞模型、慢性HBV小鼠模型,涉及功能验证(成熟、细胞因子、T细胞激活)、代谢分析(代谢组学、Seahorse)和机制验证(Western blot),证据层级完整。
肝窦内皮细胞(LSECs) 野生型C57BL/6小鼠 慢性HBV复制小鼠模型
LSEC纯度超过93%(经磁珠分选) TLR配体刺激浓度:P3C 10 μg/mL,ODN1826 1 μM 2-DG使用浓度:5 mM 慢性HBV模型建立:水动力注射pAAV-HBV1.2质粒 共培养时脾细胞与LSEC比例为2:1
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定TLR2/9配体是否能诱导LSEC表型和功能成熟。
从野生型小鼠分离LSEC,以P3C、ODN1826等刺激24小时,通过流式检测成熟标记,ELISA检测细胞因子,与脾细胞共培养检测T细胞应答。
探究TLR配体刺激后LSEC的代谢变化。
使用LC-MS非靶向代谢组学分析LSEC代谢物,通过Seahorse XF分析测量ECAR和OCR,并检测乳酸分泌。
验证糖酵解对TLR配体诱导的LSEC免疫激活的必要性。
用2-DG预处理LSEC 1小时,再用P3C或ODN1826刺激,评估表型、细胞因子和T细胞激活能力,并检测mTORC1通路蛋白水平。
评估在慢性HBV背景下TLR配体激活LSEC是否仍依赖糖酵解。
建立pAAV-HBV1.2质粒水动力注射的小鼠模型,分离LSEC,进行TLR刺激和2-DG处理,检测表型、细胞因子和T细胞应答。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞分离与培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 抗CD146磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-092-007 | |
| OptiPrep密度梯度介质 | STEMCELL | 07820 | |
| Accutase酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 代谢抑制实验 | 2-脱氧-D-葡萄糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 刺激处理 | Pam3CSK4 | InvivoGen | -- |
| ODN1826 | InvivoGen | -- | |
| 聚肌苷酸-聚胞苷酸 | InvivoGen | -- | |
| 脂多糖 | InvivoGen | -- | |
| Gardiquimod | InvivoGen | -- | |
| 细胞因子检测 | ELISA试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 乳酸检测 | L-乳酸比色法试剂盒 | Elabscience | E-BC-K044-M |
| 代谢分析 | Seahorse XF HS Mini分析仪 | Agilent | -- |
| 寡霉素 | Sigma | -- | |
| 鱼藤酮 | Sigma | -- | |
| 流式分析 | 抗CD28和抗CD3抗体 | eBioscience | -- |
| 单克隆抗体 | BD | -- | |
| Western blot | 己糖激酶II抗体 | CST | 2867 |
| Glut1抗体 | Abcam | ab115730 | |
| Akt抗体 | MCE | HY-P80535 | |
| p-Akt抗体 | MCE | HY-P80276 | |
| AMPK抗体 | CST | 2532 | |
| p-AMPK抗体 | CST | 2531 | |
| c-Myc抗体 | CST | 9402 | |
| mTOR抗体 | CST | 2972 | |
| p-mTOR抗体 | CST | 2971 | |
| Raptor抗体 | CST | 2280 | |
| p-Raptor抗体 | CST | 2083 | |
| Rictor抗体 | CST | 2114 | |
| p-Rictor抗体 | CST | 3806 | |
| HIF-1α抗体 | CST | 14179 | |
| S6K抗体 | CST | 9202 | |
| p-S6K抗体 | CST | 9234 | |
| 4E-BP1抗体 | CST | 9452 | |
| p-4E-BP1抗体 | CST | 9459 | |
| β-肌动蛋白抗体 | Sigma | A2228 | |
| 二抗(兔抗鼠IgG) | Jackson ImmunoResearch Laboratories | -- | |
| 二抗(山羊抗兔IgG) | Jackson ImmunoResearch Laboratories | -- | |
| ECL系统 | GE Healthcare | -- | |
| 流式分析 | FACS Canto II流式细胞仪 | BD | -- |
| FACS Symphony流式细胞仪 | BD | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞分离 | 小鼠品系、年龄、性别;灌注酶种类(0.1% Liberase);密度梯度离心介质(OptiPrep);阳性分选磁珠(anti-CD146) 阅读提示:Methods 2.3节 |
| 细胞培养 | 培养基(DMEM含10%FCS、2mM L-谷氨酰胺、Pen/Strep 100U/mL);培养板包被(collagen);恢复时间(过夜) 阅读提示:Methods 2.3节 |
| TLR配体刺激 | P3C浓度10 μg/mL;ODN1826浓度1 μM;刺激时间24小时 阅读提示:Methods 2.5节;Figure 1 legend |
| 糖酵解抑制 | 2-DG浓度5 mM;预处理时间1小时 阅读提示:Methods 2.6节 |
| T细胞共培养 | 脾细胞来源;anti-CD3/anti-CD28浓度(各1 μg/mL);共培养时间48-72小时;脾细胞与LSEC比例2:1 阅读提示:Methods 2.5节 |
| 慢性HBV模型构建 | 质粒pAAV-HBV1.2剂量6 μg;注射途径(尾静脉);小鼠周龄(5周龄);LSEC分离时间(注射后2-3周) 阅读提示:Methods 2.2节 |