候选基因的鉴定与验证
寻找在视网膜变性晚期仍在光感受器中表达或上调的基因,以作为启动子开发的来源。
分析两个犬IRD模型(PDE6β-RCD1和RPGR-XLPRA2)的转录组数据,筛选上调或表达不变的基因;通过激光捕获显微切割(LCM)分离视网膜各层进行qPCR分析,并通过RNA原位杂交(RNA-ISH)验证候选基因在光感受器中的表达。
Novel photoreceptor-specific promoters for gene therapy in mid- to late-stage retinal degeneration
包含转录组筛选、激光捕获显微切割与qPCR、RNA原位杂交、双荧光素酶实验、MPRA结合scRNA-seq以及两种犬模型的体内AAV递送验证等多层级证据,并进行了功能与机制验证。
PDE6β-RCD1犬视网膜变性模型 RPGR-XLPRA2犬视网膜变性模型 正常犬视网膜
候选基因在ONL中的特异性表达(通过LCM-qPCR和RNA-ISH验证) 启动子片段大小及序列(cGNGT2p1 581bp, hGNGT2p1 481bp, cIMPG2p2 745bp, cPDE6Hp1 840bp) AAV血清型为AAV5,注射剂量1.5×10^11 vg/mL 犬模型注射时间:PDE6β-RCD1在9周(中期)和12周(晚期)注射;RPGR-XLPRA2在16周(中期)和40周(晚期)注射 免疫组化染色的细胞类型标记(RHO, ARR3)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
寻找在视网膜变性晚期仍在光感受器中表达或上调的基因,以作为启动子开发的来源。
分析两个犬IRD模型(PDE6β-RCD1和RPGR-XLPRA2)的转录组数据,筛选上调或表达不变的基因;通过激光捕获显微切割(LCM)分离视网膜各层进行qPCR分析,并通过RNA原位杂交(RNA-ISH)验证候选基因在光感受器中的表达。
确定候选基因的转录起始位点,并验证所设计的顺式调控元件在视网膜细胞中的启动子活性。
通过5'RACE确定候选基因的TSS,结合序列比对和预测鉴定潜在启动子区域;将启动子片段克隆至NanoLuc荧光素酶报告载体,在Y79和HEK293细胞中进行双荧光素酶实验评估活性。
在正常和突变犬视网膜中,高通量筛选候选启动子的活性和细胞类型特异性。
将候选启动子(犬源和人源)驱动eGFP的AAV5文库分别注射入正常和突变犬(PDE6β-RCD1及RPGR-XLPRA2的晚期)的视网膜下腔,6周后取材进行单细胞RNA测序,分析各细胞类型中GFP的表达。
验证在MPRA中表现最好的启动子在光感受器中的表达效率和特异性。
将四个选定的启动子(cGNGT2p1、hGNGT2p1、cIMPG2p2、cPDE6Hp1)分别包装成AAV5载体,以相同剂量在正常犬和两种突变犬(分别为中期和晚期)中进行视网膜下腔注射,6周后通过免疫组化检测GFP的表达。
评估GFP表达是否引起视网膜免疫反应,以及是否影响转基因表达模式。
对表达GFP的视网膜进行针对Iba1、CD18、CD8、CD4和CD20等免疫细胞标志物的免疫组化染色,比较正常和突变视网膜中的免疫反应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 组织包埋 | OCT包埋剂 | Sakura Finetek | -- |
| 激光捕获显微切割 | PEN膜玻片 | Zeiss | -- |
| 激光显微切割系统 | Leica Microsystems | -- | |
| RNA提取 | RNeasy Plus Micro试剂盒 | Qiagen | -- |
| RNA扩增 | MEGAScript T7转录试剂盒 | Life Technologies | -- |
| qPCR | SYBR Green试剂盒 | -- | -- |
| RNA-ISH | RNAscope 2.5 HD检测试剂盒(红色) | Advanced Cell Diagnostics | -- |
| 5'RACE | SMARTer RACE试剂盒 | Takara Bio | -- |
| 双荧光素酶实验 | NanoLuc荧光素酶报告质粒 | Promega | -- |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 双荧光素酶实验 | Neon转染系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Nano-Glo双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| Envision Xcite多功能酶标仪 | PerkinElmer | -- | |
| MPRA载体构建 | 增强型绿色荧光蛋白报告基因 | -- | -- |
| scRNA-seq | Miltenyi Biotec神经组织解离试剂盒(出生后神经元) | Miltenyi Biotec, Inc. | 130-094-802 |
| 10X Genomics Chromium Next GEM芯片G | 10X Genomics | -- | |
| Chromium Next GEM单细胞3'试剂盒v3.1 | 10X Genomics | -- | |
| 免疫组化 | 视紫红质抗体 | Millipore | MAB5316 |
| Iba1抗体 | FUJIFILM Wako | 019-19741 | |
| CD4抗体 | Bio-Rad | MCA1038GA | |
| CD8抗体 | Bio-Rad | MCA1039GA | |
| CD18抗体 | Leukocyte antigen laboratory, UC Davis | -- | |
| CD20抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-16701 | |
| GFP抗体 | Millipore Sigma | AB3080 | |
| GFP抗体 | Millipore Sigma | MAB3580 | |
| Hoechst 33342染色液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| AAV载体构建 | 所用启动子序列及其长度(cGNGT2p1: 581bp, hGNGT2p1: 481bp, cIMPG2p2: 745bp, cPDE6Hp1: 840bp),AAV血清型(AAV5),启动子-转基因表达框的构建方式 阅读提示:请参阅Materials and Methods中‘MPRA and scRNA-seq analysis’及‘Subretinal injection of individual promoter vectors and immunohistochemistry’部分 |
| 体内AAV递送 | 动物模型(PDE6β-RCD1、RPGR-XLPRA2、正常犬),注射年龄(PDE6β-RCD1: 9周和12周;RPGR-XLPRA2: 16周和40周),注射途径(视网膜下腔),病毒剂量(1.5×10^11 vg/mL,约150μL) 阅读提示:请参阅Materials and Methods中‘Subretinal injection of individual promoter vectors and immunohistochemistry’部分以及Figure legends 5-7 |
| 组织处理和免疫组化 | 固定方法(4% PFA 3小时,然后2% PFA 24小时),视网膜切片厚度(10μm),使用的抗体及其稀释度(如RHO 1:200, ARR3 1:200等) 阅读提示:请参阅Materials and Methods中‘Subretinal injection of individual promoter vectors and immunohistochemistry’部分 |
| 数据分析 | scRNA-seq数据分析流程,包括Cell Ranger、Seurat版本及参数,细胞聚类和GFP表达定量方法,启动子效率归一化方式(以最高表达启动子为参照) 阅读提示:请参阅Materials and Methods中‘MPRA and scRNA-seq analysis’部分 |