单细胞转录组图谱构建
描绘UM肿瘤微环境的细胞组成和转录异质性
对9例原发UM样本进行单细胞RNA测序,经质控、聚类和注释,获得81,695个细胞,识别出10种主要细胞类型。
Tumor-intrinsic redox programming drives an SPP1-CD44 axis of immune suppression in uveal melanoma.
文献包含单细胞测序、细胞功能实验、共培养、免疫荧光等实验,但缺乏体内动物模型验证,且有体外共培养证据间接性及ROS机制未完全阐明等限制。
葡萄膜黑色素瘤临床样本(9例原发肿瘤,5例患者) 人UM细胞系(92.1, MEL202, MEL290, OMM1, OMM2.3, MP46) 正常黑色素细胞系PIG1 CD8+ T细胞共培养体系
UM临床样本来源:上海第九人民医院,伦理批号SH9H-2023-T462-1 单细胞RNA测序:9例原发肿瘤,81,695个细胞,质控标准(基因数200-7000,UMI 800-30000,线粒体比例<10%) SPP1过表达及rhSPP1处理:100 ng/mL重组人SPP1,10 μg/mL抗CD44抗体 Mito-LND处理浓度:5 μM,处理24小时 共培养条件:肿瘤细胞与CD8+ T细胞比例1:5,IL-2 10 ng/mL,共培养24小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
描绘UM肿瘤微环境的细胞组成和转录异质性
对9例原发UM样本进行单细胞RNA测序,经质控、聚类和注释,获得81,695个细胞,识别出10种主要细胞类型。
解析肿瘤细胞内在的转录状态和代谢特征
对33,587个黑色素瘤细胞进行再聚类,得到5个亚群,其中TXN+ MEL亚群富集于AT,具有高抗氧化、ER应激和UPR特征。
评估肿瘤浸润T细胞的功能状态和免疫抑制特征
对5,919个T细胞聚类,得到9个亚群,AT组中CD8+ T细胞浸润减少,Treg富集,且CD8+ T细胞呈现耗竭特征。
鉴定肿瘤细胞与T细胞之间的关键信号通路
通过CellChat分析,发现TXN+ MEL是SPP1的主要来源,SPP1-CD44为最主要的配体-受体对,免疫荧光验证了SPP1+黑色素瘤细胞与CD8+ T细胞的空间邻近。
验证SPP1对肿瘤细胞自身及CD8+ T细胞功能的影响
过表达SPP1或给予rhSPP1处理,检测细胞增殖、侵袭及共培养体系中CD8+ T细胞的Ki-67和IFN-γ表达;使用抗CD44抗体验证CD44依赖性。
探讨ROS扰动对SPP1表达和分泌的影响
用Mito-LND处理MP46细胞,检测细胞活力、OCR、ROS水平、SPP1表达及ER应激标志物CHOP。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 单细胞悬液制备 | 组织保存液 | Miltenyi | -- |
| 40 μm细胞筛网 | Falcon | -- | |
| 红细胞裂解液 | Miltenyi | -- | |
| 自动细胞计数仪 | Logos Biosystems | Luna-FL | |
| 单细胞RNA测序 | Chromium Next GEM单细胞3'试剂盒v3.1 | 10x Genomics | -- |
| Illumina NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | 11875093 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099141C | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | 15070063 | |
| Mito-LND | MCE | HY-134832 | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | Dojindo | CK04 |
| 酶标仪 | BioTek Instruments | -- | |
| 克隆形成实验 | 结晶紫 | Sangon Biotech | E607309 |
| ImageJ软件 | NIH | -- | |
| Transwell实验 | 预包被细胞外基质蛋白的Transwell小室 | Corning | 354480 |
| Western blot | RIPA裂解液 | NCM Biotech | WB3100 |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | NCM Biotech | P002 | |
| 上样缓冲液 | Takara | 9173 | |
| PVDF膜 | Merck millipore | ISEQ00010 | |
| 脱脂牛奶 | BioFroxx | 1172GR100 | |
| CHOP抗体 | Cell Signaling Technology | 2895 | |
| SPP1抗体 | ABclonal | A19092 | |
| β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 4967 | |
| HRP标记抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 7074 | |
| HRP标记抗鼠IgG | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| T细胞共培养 | 重组人SPP1 | Gibco | 120-35 |
| 抗CD44抗体 | Creative Biolabs | TAB-128CL | |
| 白细胞介素-2 | Gibco | 200-02 | |
| ELISA | 人SPP1 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H1347 |
| ROS检测 | 活性氧检测探针 | Invitrogen | C6827 |
| CM-H2DCFDA | Invitrogen | C6827 | |
| 荧光显微镜 | Nikon | d-Eclipse C1 | |
| Seahorse分析 | Seahorse XF Pro代谢分析仪 | Agilent | -- |
| 细胞线粒体压力测试试剂盒 | Agilent | 103015-100 | |
| 免疫荧光 | SPP1抗体 | Proteintech | 22952-1-AP |
| HMB45抗体 | Abcam | ab787 | |
| CD8抗体 | Cell Signaling Technology | 98941 | |
| CD44抗体 | Cell Signaling Technology | 37259 | |
| 扫描仪 | ZEISS | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 单细胞RNA测序 | 样本来源:9例原发UM,5例患者,其中AT 5例,BM 4例;测序平台:10x Genomics Chromium Next GEM 3' v3.1,Illumina NovaSeq 6000;质控标准:基因数200-7000,UMI 800-30000,线粒体比例<10% 阅读提示:Methods 2.3, 2.4;Results 3.1 |
| 细胞培养 | 细胞系:PIG1, 92.1, MEL202, MEL290, OMM1, OMM2.3, MP46;培养基:RPMI 1640(MP46含20% FBS,其余10% FBS);添加剂:青霉素-链霉素;培养条件:37°C,5% CO2 阅读提示:Methods 2.9 |
| SPP1过表达与rhSPP1处理 | SPP1过表达方法:未明确说明质粒或转染试剂;rhSPP1浓度:100 ng/mL;检测时间点:48小时收集上清(ELISA) 阅读提示:Methods 2.15;Results 3.6 图6B-E |
| T细胞共培养 | 肿瘤细胞:1×10^6/孔;CD8+ T细胞来源:Milecell Biological Science & Technology Co., Ltd.;比例:1:5;IL-2:10 ng/mL;时间:24小时;检测:Ki-67 FITC, IFN-γ PC7流式 阅读提示:Methods 2.14;Results 3.6 图6F-G |
| Mito-LND处理 | Mito-LND浓度:5 μM;处理时间:24小时(OCR、ROS、Western blot);CCK-8:0、24、48、72、96小时;Seahorse:15,000细胞/孔,处理24小时 阅读提示:Methods 2.10, 2.16, 2.17;Results 3.6 图6I-K |
| SPP1 ELISA | 细胞接种量:5×10^5/孔(6孔板);收集时间:48小时;试剂盒:Elabscience E-EL-H1347 阅读提示:Methods 2.15 |