受遗传变异调控的内皮KSR2通过稳定AMPKα1预防动脉粥样硬化

Endothelial KSR2 regulated by genetic variation protects against atherosclerosis through AMPKα1 stabilization.

作者信息Ming Liu, Xiangrui Fu, Hui Zhang, Jinyu Pan, Qiufeng Jia, Chengrui Zhang, Fengshuang An
PMID41424849
发布时间2026-01-01
DOI10.7150/thno.122864

实验完整度

包含基因编辑细胞模型、多种小鼠模型(自由采食、配对喂养、内皮过表达)、体内外功能验证及机制研究(Co-IP、泛素化)等。

主要模型

人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 小鼠主动脉内皮细胞(MAECs) KSR2基因敲除小鼠(KSR2-/-) Apoe-/-小鼠及内皮特异性KSR2过表达小鼠(AAV9-ICAM2-KSR2)

重点核对

rs12822146位点基因型(CC vs TT)对内皮KSR2表达的影响 XBP1s在rs12822146位点的等位基因特异性结合 KSR2与AMPKα1的K52位点竞争性结合 CRL4ACRBN E3泛素连接酶复合物介导的AMPKα1 K48泛素化 AAV9介导的内皮特异性基因操作剂量(5×10^11 vg/只)

摘要

背景:支架蛋白Ras激酶抑制因子2(KSR2)基因座内的单核苷酸多态性(SNP)rs11830157与冠状动脉疾病(CAD)的发病率密切相关,但其功能作用尚不明确。本研究旨在探讨rs11830157多态性对动脉粥样硬化的潜在影响,并阐明其潜在的分子机制。方法:采用双荧光素酶报告基因实验、染色质免疫沉淀(ChIP)、电泳迁移率变动分析(EMSA)和CRISPR/Cas9基因编辑技术研究SNP rs11830157的调控作用。为评估KSR2在动脉粥样硬化中的作用,我们使用了高脂饮食自由采食的全身性KSR2基因敲除小鼠、配对喂养的全身性KSR2和Apoe双基因敲除小鼠,以及通过AAV9-ICAM2介导的内皮特异性KSR2过表达小鼠。结果:遗传分析确定SNP rs12822146(与rs11830157连锁不平衡,位于内皮增强子内)通过转录抑制子XBP1s的差异结合调控KSR2表达。在人类和小鼠的动脉粥样硬化斑块中,内皮细胞内的KSR2表达显著降低。使用多种KSR2基因编辑小鼠模型,我们证明内皮KSR2通过抑制炎症和凋亡来预防动脉粥样硬化。机制研究表明,KSR2与CRBN竞争结合AMPKα1的K52位点,抑制CRL4ACRBN E3泛素连接酶复合物介导的AMPKα1的K48连接多聚泛素化和蛋白酶体降解。随后激活的AMPK信号通路维持内皮细胞的糖酵解平衡,最终发挥抗炎和抗凋亡作用。结论:我们的研究结果首次对rs12822146-KSR2-动脉粥样硬化轴提供了全面的分子解释,对CAD的一级预防和二级治疗具有重要意义。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CAD相关SNP rs11830157(及其连锁SNP rs12822146)如何影响动脉粥样硬化的发生发展及其分子机制。
核心机制
rs12822146风险等位基因T增强转录抑制子XBP1s结合,抑制内皮KSR2表达;KSR2与CRBN竞争结合AMPKα1 K52位点,抑制CRL4ACRBN介导的K48泛素化降解,激活AMPK信号通路,维持糖酵解平衡,抑制内皮炎症和凋亡。
主要证据
多种KSR2基因编辑小鼠模型(自由采食、配对喂养、内皮过表达)证实内皮KSR2的动脉粥样硬化保护作用;HUVECs中验证KSR2对AMPKα1稳定性和信号通路的影响;人冠状动脉样本和Apoe-/-小鼠中验证AMPKα1的K48泛素化。
研究意义
首次阐明rs12822146-KSR2-动脉粥样硬化轴,为CAD的一级预防和二级治疗提供重要分子基础和潜在治疗靶点(如CRBN)。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定功能SNP并验证其调控KSR2表达

验证rs12822146是否通过等位基因特异性增强子调控KSR2表达。

双荧光素酶报告基因实验评估等位基因活性;ChIP检测增强子标记和XBP1s结合;EMSA验证等位基因特异性结合;CRISPR-Cas9删除或碱基编辑改变rs12822146位点,检测KSR2表达。

2

检测KSR2在动脉粥样硬化中的表达模式

评估KSR2在人类和小鼠动脉粥样硬化斑块中的表达变化。

对人冠状动脉样本和小鼠主动脉进行免疫组化、免疫荧光、Western blot和RT-qPCR分析,检测KSR2表达。

3

验证内皮KSR2对动脉粥样硬化的保护作用

确定KSR2缺失或过表达对动脉粥样硬化斑块形成的影响。

使用KSR2-/-小鼠(自由采食)、Apoe-/-KSR2-/-小鼠(配对喂养)、AAV9-ICAM2-KSR2小鼠(内皮过表达),通过油红O染色、H&E、Masson等评估斑块面积和成分。

4

评估KSR2对内皮炎症和凋亡的影响

检测KSR2对内皮细胞炎症和凋亡的作用。

通过免疫组化检测斑块炎症因子,TUNEL染色检测内皮凋亡,Western blot检测凋亡相关蛋白;体外使用siRNA敲低或过表达KSR2,检测炎症因子、THP-1粘附、TUNEL和蛋白表达。

5

探究KSR2对糖酵解平衡的维持

确定KSR2是否通过调节糖酵解影响内皮细胞功能。

使用Seahorse XF96测量ECAR,检测乳酸、ATP/ADP比值,RT-qPCR和荧光染色检测糖酵解基因表达。

6

阐明KSR2稳定AMPKα1的机制

揭示KSR2如何调节AMPKα1蛋白稳定性从而激活AMPK信号。

通过Western blot、CHX追踪、MG132处理、Co-IP和泛素化实验,验证KSR2抑制AMPKα1的K48泛素化降解;通过截短体和点突变确定结合位点;验证CRBN的作用。

7

体内验证CRBN和AMPK信号通路的关键作用

验证内皮CRBN敲低或AMPK激活对动脉粥样硬化的影响及KSR2的依赖性。

通过AAV9-shCRBN敲低内皮CRBN,AAV9-AMPKα1激活内皮AMPK,评估斑块面积和炎症、凋亡标志物。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
内皮细胞培养基Sciencell--
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清----
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher Scientific11668019
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
双荧光素酶报告基因检测试剂盒MeilunBioMA0518
SimpleChIP®酶法染色质IP试剂盒Cell Signaling Technology9005
生物素标记试剂盒BeyotimeGS008
化学发光EMSA试剂盒BeyotimeGS009
油红OSigma-AldrichO1516
Masson三色染色试剂盒SolarbioG1340
RIPA裂解液SolarbioR0010
蛋白酶抑制剂混合物CWBIOCW2200
磷酸酶抑制剂混合物CWBIOCW2383
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0012
PVDF膜Millipore--
ECL底物MilliporeWBULS0500
TRIzol试剂Invitrogen15596018
HiScript III逆转录预混液VazymeR323-01
ChamQ通用型SYBR qPCR预混液VazymeQ711
LightCycler 96实时荧光定量PCR仪Roche--
Protein A/G磁珠MedChemExpressHY-K0202
Seahorse XF96细胞代谢分析仪Agilent Technologies--
乳酸检测试剂盒SolarbioBC2230
ATP/ADP比值检测试剂盒ElabscienceE-BC-F004
AAV9-ICAM2-KSR2BioSune Biotechnology--
AAV9-ICAM2-AMPKα1BioSune Biotechnology--
AAV9-ICAM2-shCRBNBioSune Biotechnology--
牛磺熊去氧胆酸----
MG132蛋白酶体抑制剂----
TD165----
来那度胺----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
HUVECs和HEK293T细胞系来源(ATCC),培养基类型及添加物(ECM、DMEM、FBS浓度、生长因子)
阅读提示:Methods - Cell Culture
SNP功能验证
rs12822146位点基因型(CC vs TT)、XBP1s结合、增强子活性
阅读提示:Results Figure 1 及 Methods - Luciferase Assay、ChIP、EMSA
基因编辑
CRISPR-Cas9删除区域及sgRNA序列、碱基编辑的sgRNA和供体模板
阅读提示:Methods - CRISPR-Cas9 Genome Editing
动物实验
小鼠品系、基因型、性别(雄性)、饮食方案(高脂饲料成分)、病毒注射剂量(5×10^11 vg/只)
阅读提示:Methods - Animal Studies
动脉粥样硬化分析
油红O染色方法、主动脉根部切片厚度(6-7 µm)、免疫荧光抗体及浓度
阅读提示:Methods - Atherosclerotic Plaque Analysis
体外机制验证
oxLDL浓度(100 μg/mL)、处理时间、siRNA序列、CHX浓度(50 μg/mL)、MG132浓度(10 μM)
阅读提示:Methods - Transfection and Infection 及相应图注
代谢测量
Seahorse XF96细胞数量、葡萄糖/寡霉素/2-DG浓度
阅读提示:Methods - Metabolic Measurements