体外验证联合刺激对DC活性的影响
探究CpG ODN和poly(I:C)联合刺激是否协同改变DC的免疫活性相关基因表达和功能。
用CpG ODN和/或poly(I:C)刺激BMDC,通过qRT-PCR检测免疫调节基因表达,ELISA检测IL-12分泌,流式细胞术检测CD86和MHC-I表达,Transwell实验检测迁移能力。
CpG ODN Activates TLR9 and Upregulates TLR3 via the p38 MAPK-ATF3 Signaling Axis to Synergistically Enhance Dendritic Cell Vaccine Efficacy.
包含体外细胞实验、体内动物模型、转录组测序及机制验证(抑制剂、敲低/过表达)等多个独立证据层级。
小鼠骨髓来源树突状细胞(BMDC) 小鼠原位胶质瘤模型(GL261和CT2A) 人源工程化树突状细胞 人CD8+ T细胞共培养系统
联合刺激浓度:10 μg/mL CpG ODN和10 μg/mL poly(I:C) 序贯刺激方案:先用10 μg/mL CpG ODN刺激24小时,再用10 μg/mL poly(I:C)刺激24小时 DC疫苗抗原负载比例:小鼠BMDC与胶质瘤细胞比例2:1,人源工程化DC与胶质瘤细胞比例4:1 体内注射方案:肿瘤接种后第10、14、18天尾静脉注射200,000个DC疫苗 共培养比例:CD8+ T细胞与DC比例为4:1,共培养48小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究CpG ODN和poly(I:C)联合刺激是否协同改变DC的免疫活性相关基因表达和功能。
用CpG ODN和/或poly(I:C)刺激BMDC,通过qRT-PCR检测免疫调节基因表达,ELISA检测IL-12分泌,流式细胞术检测CD86和MHC-I表达,Transwell实验检测迁移能力。
验证联合刺激的DC是否增强CD8+ T细胞的增殖和杀伤能力。
用处理过的DC负载肿瘤裂解物,与CFSE标记的CD8+ T细胞共培养,流式细胞术检测增殖和穿孔素表达,通过荧光素酶评估杀伤活性。
验证联合刺激的DC疫苗在胶质瘤小鼠模型中的抗肿瘤效果。
建立GL261或CT2A原位胶质瘤模型,尾静脉注射负载抗原的DC疫苗,通过活体成像监测肿瘤生长,评估生存期,并进行H&E染色分析肿瘤体积。
明确联合刺激协同效应的分子机制,特别是TLR9激活如何导致TLR3上调。
转录组测序结合KEGG富集分析,使用通路抑制剂筛选关键通路,Western blot验证p38和ATF3磷酸化,通过敲低/过表达ATF3检测DC激活标志物。
基于TLR3上调的时间依赖性,验证序贯给药策略是否优于联合给药。
在体内模型中比较未处理、联合、序贯刺激的DC疫苗的抗肿瘤效果;在体外用人源工程化DC评估序贯刺激对CD8+ T细胞增殖的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | ServiceBio | G4612 |
| 胎牛血清 | Gibco | A5661701 | |
| 青霉素-链霉素溶液 | ServiceBio | G4003 | |
| 胰蛋白酶消化液 | ServiceBio | G4001 | |
| RPMI-1640培养基 | ServiceBio | G4531 | |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | MCE | HY-P7361 | |
| 白细胞介素-4 | MCE | HY-P70644 | |
| 细胞分离 | 淋巴细胞分离液 | DAKEWE | DKW33 |
| CD8+ T细胞分离 | Dynabeads™ Untouched™ 人CD8+ T细胞分离试剂盒 | Thermo Fisher | 11348D |
| 流式细胞术 | CFSE染料 | Elabscience | E-CK-A345 |
| 抗CD3抗体 | DAKEWE | 300311, | |
| 抗CD8抗体 | DAKEWE | 100707, | |
| 动物实验 | 立体定位仪 | RWD | 68801 |
| D-荧光素钠 | MCE | HY-12591 | |
| 小动物活体成像系统 | Spectral Instruments Imaging | LAGO | |
| 蛋白制备 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | ServiceBio | G2026 |
| 蛋白变性 | 蛋白上样缓冲液 | NCM Biotech | WB2001 |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | IPFL00005 |
| TLR3抗体 | ABclonal | A11778 | |
| p38 MAPK抗体 | Proteintech | 14064-1-AP | |
| 磷酸化p38 MAPK抗体 | Proteintech | 28796-1-AP | |
| ATF3抗体 | ABclonal | A13469 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 化学发光底物 | NCM Biotech | P10060 | |
| GeneGnome GRQ成像系统 | Syngene | -- | |
| ELISA | 小鼠IL-12(p70) ELISA试剂盒 | Boster | EK0422 |
| 人IL-12(p70) ELISA试剂盒 | Boster | EK0421 | |
| 流式细胞术 | FluoroFix™固定液 | BioLegend | 422101 |
| 细胞内染色破膜洗涤缓冲液 | BioLegend | 421002 | |
| CytoFLEX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 抑制剂处理 | 托法替尼 | -- | -- |
| PDTC | -- | -- | |
| 3-甲基腺嘌呤 | -- | -- | |
| 阿地唑莫德 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DC体外刺激 | 激动剂浓度、刺激时间(12h/24h/36h/48h),组合方式(联合或序贯) 阅读提示:Methods 2.6.2 和 Results 3.1、3.4、3.5 |
| DC疫苗制备 | 肿瘤裂解物制备方法(冻融循环次数)、抗原负载比例(DC与肿瘤细胞比例2:1或4:1、1:3、1:6)、负载时间(24h) 阅读提示:Methods 2.5 |
| 共培养实验 | CD8+ T细胞与DC比例(4:1)、CFSE浓度(5uM)和标记时间(20min)、共培养时间(48h) 阅读提示:Methods 2.6 |
| 体内动物实验 | 小鼠品系(C57BL/6)、周龄(6-10周)、肿瘤细胞系(GL261/CT2A)和接种量(50,000/只)、DC疫苗注射时间(第10/14/18天)和剂量(200,000/只)、D-荧光素钠剂量(150mg/kg) 阅读提示:Methods 2.10 |
| 机制验证实验 | 抑制剂种类和浓度、ATF3敲低/过表达方法(脂质体转染)、检测指标(IL-12B、TLR3、CD86、MHC-I) 阅读提示:Results 3.4 和 Methods 2.15 |