利用线粒体功能障碍克服晚期黑色素瘤中的BRAF抑制剂耐药:双硫仑作为铜离子载体的作用

Exploiting mitochondrial dysfunction to overcome BRAF inhibitor resistance in advanced melanoma: the role of disulfiram as a copper ionophore.

作者信息Bolun Zhao, Fazhan Ban, Yuehua Li, Qiong Shi, Sen Guo, Xiuli Yi, Huina Wang, Tianwen Gao, Chunying Li, Guannan Zhu
PMID40592836
发布时间2025-07-01
DOI10.1038/s41419-025-07766-y

实验完整度

包含体外耐药细胞模型、体内裸鼠移植瘤模型、多种细胞功能实验(CCK-8、克隆形成)、线粒体结构功能检测(TEM、JC-1、Seahorse)、RNA-seq、CRISPR-Cas9敲除及蛋白质组学等独立证据,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

451Lu和UACC62人黑色素瘤细胞系(BRAF V600E突变)及其vemurafenib耐药亚系451Lu-R和UACC62-R BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型

重点核对

耐药细胞系建立:vemurafenib浓度递增诱导16周(0.2, 0.5, 1, 2, 5 μM) 处理条件:DSF 1.5 μM,vemurafenib 5 μM,trametinib 2 nM 铜螯合剂TTM预处理浓度20 μM TXNIP敲除:CRISPR-Cas9靶向序列TCTCTTGAGTTGGCTGGCTC,puromycin筛选浓度10 μg/mL 动物实验:6周龄雌性BALB/c裸鼠,皮下注射1×10^7细胞,肿瘤体积达50 mm^3后分组给药(vemurafenib 30 mg/kg,DSF 60 mg/kg,TTM 0.3 mg/kg)

摘要

对靶向治疗的耐药是晚期BRAF突变黑色素瘤的一大挑战。即使采用BRAF+MEK抑制剂联合治疗,约70%的患者仍在两年内出现疾病进展,凸显了超越MAPK信号通路抑制的新策略的必要性。本研究探讨铜离子载体双硫仑(DSF)诱导的线粒体功能障碍是否能有效对抗BRAF抑制剂耐药。我们使用BRAF突变的451Lu和UACC62细胞建立了两种BRAF抑制剂(BRAFi)耐药黑色素瘤细胞系。体内实验使用裸鼠皮下植入进行。通过细胞活力和集落形成实验评估治疗效果,通过透射电子显微镜评估线粒体形态。使用Seahorse代谢分析仪测量线粒体呼吸,通过流式细胞术和共聚焦显微镜评估氧化应激。RNA测序鉴定了受细胞内铜水平调控的下游因子,并使用CRISPR-Cas9系统在BRAFi耐药细胞中敲除候选基因以进行机制验证。我们提供了证据表明,DSF以铜依赖性方式诱导BRAFi耐药黑色素瘤细胞死亡,通过增加氧化应激严重损害线粒体结构和功能。RNA-seq和免疫印迹显示,硫氧还蛋白相互作用蛋白(TXNIP)的表达响应DSF显著增加。TXNIP敲除通过减轻氧化应激降低了DSF诱导的细胞毒性。这些发现在体内实验中得到了支持。此外,我们证明了TXNIP介导的氧化损伤涉及其与硫氧还蛋白2(TRX2)的相互作用。总之,使用双硫仑靶向线粒体功能可有效抑制BRAFi耐药黑色素瘤细胞,且独立于MAPK信号阻断。这些结果指出,双硫仑与BRAF抑制剂联合使用可能是克服BRAFi耐药的潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DSF能否通过诱导线粒体功能障碍来克服BRAF抑制剂耐药,其潜在机制是什么?
核心机制
DSF作为铜离子载体增加细胞内铜积累,导致线粒体氧化应激,TXNIP表达上调并转位至线粒体,通过与TRX2相互作用抑制其抗氧化功能,引发线粒体结构损伤和功能抑制,从而诱导细胞死亡。
主要证据
体外和体内实验显示DSF+Vem协同抑制耐药细胞生长,铜螯合剂TTM可逆转;TEM显示线粒体肿胀和嵴异常;JC-1检测显示MMP下降;Seahorse显示OCR降低;ROS水平升高;TXNIP敲除或TXNIP-IN-1处理可减轻线粒体损伤和细胞死亡。
研究意义
研究表明靶向线粒体功能的DSF与BRAF抑制剂联合可能是克服BRAFi耐药的有前景策略,为药物重定位提供证据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

耐药细胞系建立

生成对vemurafenib耐药的黑色素瘤细胞系以模拟临床BRAFi耐药。

将451Lu和UACC62细胞持续暴露于递增浓度的vemurafenib(0.2, 0.5, 1, 2, 5 μM),16周后获得耐药亚系451Lu-R和UACC62-R。

2

体外药效验证

评估DSF单独或与vemurafenib联合对耐药细胞的抑制作用及铜依赖性。

使用CCK-8和集落形成实验检测细胞活力;使用铜螯合剂TTM及凋亡、坏死性凋亡、铁死亡、自噬抑制剂预处理,观察对细胞死亡的影响。

3

体内药效验证

在裸鼠移植瘤模型中验证DSF与vemurafenib联合的抑制效果及铜依赖性。

将耐药细胞皮下接种裸鼠,成瘤后随机分组给予Vem、DSF、Vem+DSF或Vem+DSF+TTM治疗,测量肿瘤体积和重量。

4

线粒体功能与结构分析

探究DSF+Vem对线粒体结构和功能的影响。

利用RNA-seq分析差异表达基因;TEM观察线粒体形态;JC-1染色检测MMP;ATP检测;Seahorse测定OCR和ECAR。

5

氧化应激机制验证

验证DSF诱导的线粒体功能障碍是否依赖于氧化应激,以及铜的作用。

使用MitoSOX检测mt-ROS;使用Mito-TEMPO清除mt-ROS,观察对细胞活力、线粒体形态和功能的影响;使用TTM剥夺铜,检测ROS、MMP、OCR等。

6

关键分子TXNIP的鉴定与功能验证

确定TXNIP是否介导DSF诱导的线粒体功能障碍。

通过RNA-seq筛选TXNIP,WB验证表达;使用CRISPR-Cas9敲除TXNIP,检测细胞活力、线粒体结构、MMP、ATP、OCR、mt-ROS;体内实验验证。

7

机制深化:TXNIP-TRX2相互作用

阐明TXNIP与TRX2相互作用在氧化损伤中的作用。

使用STRING数据库和DIA蛋白质组学预测相互作用;使用TXNIP-IN-1抑制TXNIP-TRX复合物形成,检测细胞活力和线粒体功能;敲低TRX1或TRX2观察对细胞死亡的影响;Co-IP验证TXNIP与TRX1/TRX2的相互作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Corning--
胎牛血清Corning10-040-CV
威罗菲尼MedChemExpressHY-12057
曲美替尼MedChemExpressHY-10999
双硫仑SelleckNSC 190940
四硫代钼酸铵Sigma-Aldrich323446
Z-VAD-FMKMedChemExpressHY-16658B
Boc-D-FMKENZOALX-260-071-M005
坏死性凋亡抑制剂-1MedChemExpressHY-15760
铁死亡抑制剂-1MedChemExpressHY-100579
氯喹MedChemExpressHY-17589A
Mito-TEMPOMedChemExpressHY-112879
MitoSOX™ RedInvitrogenM36008
JC-1线粒体膜电位染料Invitrogen65-0851-38
ATP检测试剂盒BeyotimeS0026
Hanks平衡盐溶液Merck MilliporeH8264
BCA蛋白检测试剂盒ElabScienceE-BC-K318-M
PVDF膜----
ECL蛋白检测系统Thermo Scientific--
Caspase 3抗体Proteintech19677-1-AP
TXNIP抗体Abcamab188865
硫氧还蛋白2抗体Cell Signaling Technology14907
ERK1/2抗体Cell Signaling Technology4695
磷酸化ERK1/2抗体Cell Signaling Technology9101
硫氧还蛋白抗体Proteintech14999-1-AP
TOM20抗体Proteintech11802-1-AP
ATP7A抗体Abcamab308524
ATP7B抗体Abcamab124973
SLC31A1抗体Proteintech67221-1-IG
DLAT抗体Proteintech13426-1-AP
LIAS抗体Proteintech11577-1-AP
FDX1抗体Proteintech12592-1-AP
微管蛋白抗体Proteintech11224-1-AP
山羊抗小鼠IgGProteintechSA00004-1
山羊抗兔IgGProteintechSA00001-2
CCK-8试剂GK10001GK10001
Model 680酶标仪Bio-Rad Laboratories--
二氢乙锭Sigma-AldrichD7008
Protein A/G PLUS-琼脂糖Santa Cruzsc-2003
TXNIP(D5F3E)抗体Cell Signaling Technology14715
对照IgGProteintech30000-0-AP
MitoTracker™ Red CMXROSLife technologiesM7512
山羊抗兔IgG H&L(FITC)ZhuangzhibioEK023
山羊抗小鼠IgG H&L(Cy3)ZhuangzhibioEK012
JEM-1400FLASH透射电子显微镜JEOL--
BD LSRFortessa™流式细胞仪BD Biosciences--
Zeiss LSM880共聚焦激光扫描显微镜Zeiss--
Lipofectamine 3000转染试剂盒InvitrogenL3000-015
慢病毒(CRISPR-Cas9)Beijing Tsingke Biotechnology Co., Ltd.--
嘌呤霉素Beyotime--
TRIzol试剂----
靶向FDX1的siRNABeijing Tsingke Biotechnology Co., Ltd.--
靶向TRX1的siRNABeijing Tsingke Biotechnology Co., Ltd.--
靶向TRX2的siRNABeijing Tsingke Biotechnology Co., Ltd.--
FDX1质粒Beijing Tsingke Biotechnology Co., Ltd.--
山羊血清Gibco--
Triton X-100----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
耐药细胞系建立
vemurafenib浓度梯度(0.2, 0.5, 1, 2, 5 μM)和时间(16周),细胞初始接种密度(5×10^3细胞/96孔)
阅读提示:见Methods部分'Establishment of BRAFi-resistant cells'
体外药物处理
DSF浓度(1.5 μM),vemurafenib浓度(5 μM),处理时间(48小时,CCK-8)
阅读提示:见Methods部分'Materials'和'Cell viability assay',图1A图注
细胞死亡机制
TTM浓度(20 μM),Z-VAD-FMK(30 μM),Boc-D-FMK(50 μM),Necrostatin-1(20 μM),Ferrostatin-1(10 μM),Chloroquine(5 μM)
阅读提示:见图1E-I图注
线粒体功能检测
JC-1孵育时间(30分钟,37°C),MitoSOX浓度(流式5 μM,共聚焦25 μM),Seahorse药物浓度(Oligomycin 1 μM,FCCP 1 μM,Rotenone/Antimycin A 2 μM;葡萄糖100 mM,Oligomycin 10 μM,2-DG 500 μM)
阅读提示:见Methods部分'Mitochondrial membrane potential (MMP)'、'Mitochondrial reactive oxygen species (mt-ROS) assays'、'Seahorse assays'
氧化应激干预
Mito-TEMPO浓度(文中未明确说明),TTM浓度(20 μM)
阅读提示:见图3C和图4A图注
TXNIP敲除实验
CRISPR-Cas9靶向序列(TCTCTTGAGTTGGCTGGCTC),筛选浓度(puromycin 10 μg/mL),验证方法(WB)
阅读提示:见Methods部分'CRISPR-Cas9'和图5图注
体内实验
动物品系(BALB/c nude mice),周龄(6周),性别(雌性),接种细胞量(1×10^7),给药剂量(vemurafenib 30 mg/kg,DSF 60 mg/kg,TTM 0.3 mg/kg),起始肿瘤体积(50 mm^3),治疗周期(14天)
阅读提示:见Methods部分'Animal experiments'和图5J-L图注
TXNIP-TRX2机制验证
TXNIP-IN-1浓度(文中未明确说明),siRNA序列(si-TRX1,si-TRX2),Co-IP抗体(TXNIP(D5F3E))
阅读提示:见Methods部分'Materials'、'siRNA transfection and plasmid vectors'、'Co-immunoprecipitation (Co-IP)'和图6图注