建立多柔比星诱导的心脏毒性模型
建立慢性多柔比星心肌损伤小鼠模型,用于评估semaglutide的保护作用。
C57/BL6J小鼠腹腔注射多柔比星(5 mg/kg/周)共4周,造成心肌损伤;semaglutide(12 μg/kg/天)皮下注射6周。通过超声心动图、血流动力学、组织学等评估。
Semaglutide attenuates doxorubicin-induced cardiotoxicity by ameliorating BNIP3-Mediated mitochondrial dysfunction.
包含体内动物模型(C57/BL6J小鼠,多柔比星诱导心脏毒性)、体外原代心肌细胞实验、RNA-seq转录组分析、AAV9介导的BNIP3过表达功能验证及PI3K/AKT通路抑制剂干预,验证了机制。
C57/BL6J小鼠多柔比星心脏毒性模型 新生大鼠原代心室肌细胞(NRVMs)
多柔比星给药剂量为5 mg/kg,每周一次腹腔注射,共4周;semaglutide剂量为12 μg/kg,每日一次皮下注射,共6周。 AAV9-BNIP3或AAV9-EGFP经尾静脉注射,剂量为5×10^10病毒基因组/只,注射4周后检测过表达效果。 体外实验中,多柔比星浓度为1 μM,semaglutide浓度为1 nM,处理24小时。 PI3K抑制剂LY294002浓度为10 μM。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立慢性多柔比星心肌损伤小鼠模型,用于评估semaglutide的保护作用。
C57/BL6J小鼠腹腔注射多柔比星(5 mg/kg/周)共4周,造成心肌损伤;semaglutide(12 μg/kg/天)皮下注射6周。通过超声心动图、血流动力学、组织学等评估。
验证多柔比星引起的心肌损伤及semaglutide的改善作用。
通过H&E染色评估心肌结构损伤,Masson染色评估纤维化,WGA染色评估心肌细胞横截面积,TUNEL染色评估凋亡。
确定semaglutide对多柔比星处理的心肌细胞活力、氧化应激和线粒体功能的影响。
分离原代大鼠心室肌细胞(NRVMs),用多柔比星(1 μM)和semaglutide(1 nM)处理,检测细胞活力、LDH释放、ROS水平、γ-H2AX、线粒体PT孔、线粒体膜电位和耗氧率。
识别semaglutide保护作用的关键靶基因。
对semaglutide和对照处理的小鼠心脏进行RNA-seq,分析差异表达基因和通路,发现Bnip3为候选基因。
确定BNIP3是否是semaglutide保护效应的关键介导因子。
通过AAV9在心脏特异性过表达BNIP3,观察semaglutide保护作用的改变,包括心脏功能、组织学、线粒体形态和呼吸功能。
确认semaglutide通过PI3K/AKT通路调控BNIP3表达。
使用PI3K抑制剂LY294002处理心肌细胞,检测BNIP3表达、线粒体功能(PT孔、MMP、OCR)及PI3K/AKT磷酸化水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 多柔比星 | MedChemExpress | -- |
| Semaglutide | Novo Nordisk | -- | |
| AAV9-BNIP3病毒载体 | Hanbio Biotechnology | -- | |
| AAV9-EGFP病毒载体 | Hanbio Biotechnology | -- | |
| 超声心动图 | Vevo 2100超声成像系统 | VisualSonics | -- |
| 有创血流动力学 | SPR-839微压导管 | Millar Instruments | -- |
| PowerLab 16/30数据采集系统 | AD Instruments | -- | |
| 组织学分析 | H&E染色试剂盒 | Solarbio | G1120 |
| Masson三色染色试剂盒 | Solarbio | G1345 | |
| WGA染色 | Thermo Fisher Scientific | W11261 | |
| Olympus SlideView VS200显微镜 | Olympus | -- | |
| 心脏标志物检测 | BNP ELISA试剂盒 | Hengyuan Biological Technology | HB533-Mu |
| CK-MB ELISA试剂盒 | Hengyuan Biological Technology | HB761-Mu | |
| LDH ELISA试剂盒 | Hengyuan Biological Technology | HB1402-Mu | |
| 氧化应激检测 | 二氢乙啶 | Beyotime | S0063 |
| MitoSOX Red | MedChemExpress | HY-D1055 | |
| 细胞活力检测 | 钙黄绿素/PI细胞活力/细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime | C2015M |
| 线粒体呼吸功能检测 | Seahorse XFe24细胞外通量分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| Seahorse XF24 FluxPak试剂盒 | Agilent Technologies | -- | |
| 寡霉素 | -- | -- | |
| FCCP | -- | -- | |
| 鱼藤酮 | -- | -- | |
| 凋亡检测 | TUNEL原位凋亡检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A331 |
| 免疫荧光 | 柠檬酸盐抗原修复液 | Beyotime | P0081 |
| QuickBlock免疫染色封闭液 | Beyotime | P0260 | |
| γ-H2AX抗体 | Abcam | ab81299 | |
| 心肌肌钙蛋白T抗体 | Abcam | ab209813 | |
| BNIP3抗体 | Abcam | ab109362 | |
| Alexa Fluor 488二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-11008 | |
| Alexa Fluor 555二抗 | Thermo Fisher Scientific | A-11035 | |
| DAPI | Beyotime | C1006 | |
| RNA-seq | Illumina Novaseq 6000测序平台 | Illumina | -- |
| RT-qPCR | RNAiso Plus试剂 | TaKaRa | 9108 |
| PrimeScript RT试剂盒(含gDNA Eraser) | TaKaRa | RR047A | |
| SYBR Premix Ex Taq II | TaKaRa | RR820A | |
| 7900HT Fast实时PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 线粒体膜电位检测 | JC-1线粒体膜电位检测试剂盒 | Beyotime | C2003S |
| 线粒体PT孔检测 | 线粒体通透性转换孔检测试剂盒 | Beyotime | C2009S |
| Hoechst33342 | Beyotime | C1017 | |
| 线粒体标记 | MitoTracker Red | Thermo Fisher Scientific | M7512 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11965092 |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| Percoll梯度 | Sigma-Aldrich | GE17-0891-01 | |
| 线粒体分离 | 细胞线粒体分离试剂盒 | Beyotime | C3601 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | PC0020 |
| Western blot | 硝酸纤维素膜 | GE Healthcare Life Sciences | -- |
| 抗PI3K p85抗体 | Abcam | ab191606 | |
| 抗磷酸化PI3K p85抗体 | Abcam | ab182651 | |
| 抗AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4691T | |
| 抗磷酸化AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060T | |
| 抗VDAC1抗体 | Abcam | ab154856 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| 荧光标记的山羊抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 5151 | |
| Odyssey Western blot检测系统 | LI-COR Biotechnology | -- | |
| 免疫沉淀 | 磷酸化丝氨酸/苏氨酸抗体 | Abcam | ab17464 |
| PI3K抑制实验 | LY294002 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 多柔比星给药剂量、频率、途径和持续时间;semaglutide给药剂量、频率、途径和持续时间;小鼠品系、周龄和性别;AAV9-BNIP3注射剂量、时间。 阅读提示:见Methods 2.1 Animals、图S1A和图S1B。 |
| 心脏功能评估 | 麻醉方式;超声心动图测量参数(LVEF、LVFS、LVIDd、LVIDs);血流动力学测量参数(dp/dtmax、dp/dtmin、SV、ESPVR)。 阅读提示:见Methods 2.2 Echocardiography和2.3 Invasive hemodynamics。 |
| 组织学分析 | 染色类型(H&E、Masson、WGA、TUNEL);切片厚度;观察显微镜;定量分析软件。 阅读提示:见Methods 2.4 Histological analysis和2.8 TUNEL staining。 |
| 体外心肌细胞实验 | NRVM分离方法;培养条件;药物处理浓度和时间:多柔比星1 μM、semaglutide 1 nM、LY294002 10 μM;处理顺序(预处理时间)。 阅读提示:见Methods 2.14 Cell culture、图3和图7图例。 |
| 线粒体功能检测 | Seahorse实验的细胞密度、药物处理、OCR测量条件(寡霉素、FCCP、鱼藤酮、抗霉素A的浓度);JC-1和PT-pore检测的孵育时间和浓度;MitoTracker Red浓度。 阅读提示:见Methods 2.7 Seahorse respirometry和2.13 Mitochondrial assays。 |
| RNA-seq分析 | 测序平台;差异表达基因阈值(fold change≥1.5,P<0.05);样本量。 阅读提示:见Methods 2.10 RNA-seq analysis。 |
| 蛋白表达检测 | 组织/细胞裂解;Western blot抗体浓度;线粒体分离方法;免疫沉淀条件。 阅读提示:见Methods 2.15 Mitochondrial fractionation, western blot analyses, and immunoprecipitation。 |