巨噬细胞通过GMCSF/CCL2/CCR2信号及表型转换促进小鼠心肌缺血再灌注损伤向心脏纤维化的转变

Macrophages promote the transition from myocardial ischemia reperfusion injury to cardiac fibrosis in mice through GMCSF/CCL2/CCR2 and phenotype switching.

作者信息Shi-Chun Shen, Jie Xu, Cheng Cheng, Xin-Jian Xiang, Bao-Yu Hong, Meng Zhang, Chen Gong, Li-Kun Ma
PMID38225394
发布时间2024-05
DOI10.1038/s41401-023-01222-3

实验完整度

包含体内小鼠MIR模型、细胞共培养、基因敲除与药理抑制、质谱流式等多个独立证据层级,且包含功能验证和机制验证(约90字)。

主要模型

小鼠心肌缺血再灌注模型 骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) 小鼠心脏微血管内皮细胞(MCMECs) 原代心脏成纤维细胞(PCFs)

重点核对

小鼠品系:C57BL/6背景,8-10周龄雄性WT和CCR2−/−小鼠 MIR模型:左冠状动脉结扎30分钟后再灌注 CCR2抑制剂RS102895剂量:5 mg/kg,每12小时,腹腔注射 GMCSF中和抗体剂量:300 μg/kg,每24小时,尾静脉注射 共培养时间:24小时,Transwell小室孔径0.4 μm

摘要

急性心肌缺血再灌注(MIR)后,巨噬细胞浸润受损心脏组织并改变其极化表型,以应对急性炎症和慢性纤维化重塑。本研究探讨了巨噬细胞在缺血后心肌纤维化中的作用,并探索心肌纤维化的治疗靶点。雄性小鼠接受左冠状动脉结扎30分钟。我们首先检测了心脏组织中募集免疫细胞浸润的趋化因子水平,发现小鼠心脏微血管内皮细胞(MCMECs)释放的粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GMCSF)在再灌注后6小时达到峰值,而GMCSF诱导的巨噬细胞释放的CC基序趋化因子配体2(CCL2)在再灌注后24小时达到峰值。在BMDMs与MCMECs共培养中,我们证明了MCMECs来源的GMCSF刺激BMDMs释放CCL2,并有效促进BMDMs的迁移。我们还证实,GMCSF在体外促进巨噬细胞M1极化,而GMCSF中和抗体(NTABs)阻断CCL2/CCR2信号。在MIR小鼠心脏中,我们证明GMCSF激活CCL2/CCR2信号以促进NLRP3/caspase-1/IL-1β介导的扩增性炎症损伤。敲除CC趋化因子受体2基因(CCR2−/−),或给予特异性CCR2抑制剂RS102895(5 mg/kg每12小时,腹腔注射,MIR前1天开始并持续至实验结束)可有效减少心肌梗死面积,下调炎症介质和NLRP3/Caspase-1/IL-1β信号。质谱流式细胞术证实M2巨噬细胞在纤维化过程中发挥重要作用,而巨噬细胞耗竭的小鼠在MIR后心脏组织中转化生长因子-β(Tgf-β)水平显著降低。在巨噬细胞与成纤维细胞共培养中,重组小鼠CCL2处理刺激巨噬细胞释放大量Tgf-β,并促进成纤维细胞释放Col1α1。这种效应在CCR2−/−小鼠的BMDMs中减弱。敲除或抑制CCR2基因后,Tgf-β水平显著降低,心肌纤维化水平亦降低,心脏功能得到保护。本研究证实,小鼠MIR后急性损伤向慢性纤维化的转变是由巨噬细胞中GMCSF/CCL2/CCR2信号通过NLRP3炎症级联和表型转换介导的。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
巨噬细胞如何介导心肌缺血再灌注损伤向心脏纤维化的转变,以及其潜在的治疗靶点是什么?
核心机制
GMCSF/CCL2/CCR2信号在巨噬细胞中介导急性期NLRP3/Caspase-1/IL-1β炎症级联和慢性期M2表型转换,释放Tgf-β促进纤维化
主要证据
小鼠MIR模型、BMDMs与MCMECs共培养、巨噬细胞与成纤维细胞共培养、CCR2基因敲除和药理抑制实验显示,抑制CCR2减少梗死面积、炎症因子和纤维化,并改善心功能;质谱流式显示M2巨噬细胞在纤维化期增加。
研究意义
GMCSF/CCL2/CCR2轴可作为抑制心肌缺血再灌注损伤和减轻心肌纤维化修复的关键治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

MIR模型建立与时间进程分析

观察MIR后急性损伤向慢性纤维化转变的过程及巨噬细胞浸润动态

雄性WT小鼠行左冠状动脉结扎30分钟再灌注,分别于再灌注后1、7、14、30天处死,检测心肌组织学、巨噬细胞标志物和纤维化水平

2

趋化因子动态及来源分析

鉴定MIR后参与免疫细胞募集的趋化因子及其细胞来源

利用Luminex技术检测心脏组织趋化因子浓度,通过细胞分选和ELISA检测不同细胞GMCSF表达

3

细胞共培养验证GMCSF来源与功能

验证MCMECs来源的GMCSF对巨噬细胞CCL2释放和迁移的作用

用无血清或含血清培养基培养MCMECs,与BMDMs共培养,检测GMCSF和CCL2水平,并通过Transwell迁移实验检测BMDMs迁移

4

CCR2基因敲除或药理抑制对MIR损伤的影响

验证CCR2在急性MIR损伤中的作用

对WT和CCR2−/−小鼠建立MIR模型,部分WT小鼠给予CCR2抑制剂RS102895,检测梗死面积、心肌损伤标志物和炎症信号

5

巨噬细胞表型转换及对成纤维细胞的影响

验证CCL2诱导巨噬细胞M2极化并释放Tgf-β促进成纤维细胞向肌成纤维细胞转化

用GMCSF和/或CCL2处理BMDMs,检测M1/M2标志物和Tgf-β释放;将BMDMs与PCFs共培养,检测Col1α1表达

6

体内验证CCR2抑制对纤维化和心功能的影响

验证抑制CCR2对MIR后心肌纤维化和心脏功能的保护作用

对MIR小鼠给予CCR2抑制剂或基因敲除,检测Tgf-β、Col1α1、纤维化面积和心功能

7

质谱流式和流式细胞术分析免疫微环境

分析MIR后7天心脏免疫细胞组成变化及CCR2敲除的影响

制备心脏单细胞悬液,进行质谱流式和流式细胞术,分析巨噬细胞、树突细胞等免疫细胞比例和表型

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
气体麻醉机RWD Life ScienceR500IP
小动物呼吸机AlcbioALC-V8S
RS102895Sigma-AldrichR1903
GMCSF中和抗体R&DMAB415
同型对照R&DMAB006
伊文思蓝Sigma-AldrichE2129
2,3,5-三苯基氯化四氮唑Sigma-AldrichT8877
小鼠乳酸脱氢酶检测试剂盒JianchengA020-1-2
小鼠肌酸激酶同工酶检测试剂盒JianchengH197-1-2
小鼠心肌肌钙蛋白I ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-M1203c
抗CD68抗体CST97778
抗CCR2抗体Abcamab273050
抗Ly6g抗体Abcamab238132
抗CD19抗体CST90176
抗CD3e抗体CST85061
抗Arg-1抗体CST93668
抗iNos抗体CST13120
抗GMCSF抗体Proteintech17762-1-AP
抗CCL2抗体Proteintech26161-1-AP
抗Tgf-β抗体Proteintech21898-1-AP
抗Col1α1抗体CST72026
含DAPI封片剂BeyotimeP0131
Bio-Plex Pro小鼠趋化因子31重检测试剂盒Bio-Rad12009159
Luminex X200系统Luminex CorporationX200
新生心脏解离试剂盒Miltenyi Biotec130-098-373
红细胞裂解液SolarbioR1010
胎牛血清Clark BioscienceFB15015
Percoll分离液Solarbio65455-52-9
MojoSort小鼠死细胞去除试剂盒Biolegend480157
CD45阳性分选试剂盒Biolegend480027
CD11b阳性分选试剂盒Biolegend480109
CD11c阳性分选试剂盒Biolegend480077
Cell-ID顺铂-194PtFluidigm201194
Maxpar固定通透缓冲液Fluidigm201067
EQ四元素校准微球Fluidigm201078
胰蛋白酶BeyotimeC0201
DMEM培养基Gibco11965118
1640培养基Gibco11875093
重组小鼠GMCSFR&D System415-ML
重组小鼠CCL2Peprotech250-10
Transwell小室(0.4 μm聚酯膜)Corning3450
Transwell小室(8 μm聚酯膜)Labselect14342
结晶紫SolarbioG1064
GMCSF ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-M0032c
Tgf-β ELISA试剂盒NeoBioscienceEMC107b.96
CCL2 ELISA试剂盒NeoBioscienceEMC113.96
Triton X-100BeyotimeP0096
免疫荧光封闭液BeyotimeP0260
抗F4/80抗体R&D SystemMAB5580
抗CCL2抗体Proteintech66272-1-lg
PVDF膜MilliporeIPVH00010
抗NLRP3抗体Abcamab263899
抗Caspase-1抗体Proteintech22915-1-AP
抗IL-1β抗体Proteintech16806-1-AP
抗β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
抗GAPDH抗体Proteintech10494-1-AP

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、年龄;MIR手术(左冠状动脉结扎30分钟);再灌注时间点
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments, Mouse myocardial ischemia reperfusion model
药物干预
RS102895剂量(5 mg/kg)、给药频率(每12小时)、给药途径(腹腔注射)、给药起始时间(MIR前1天);GMCSF NTAB剂量(300 μg/kg)、给药频率(每24小时)、给药途径(尾静脉注射)、给药起始时间(MIR前1天)
阅读提示:Materials and methods: Drug treatment
巨噬细胞清除
氯膦酸盐脂质体给药剂量、间隔(每5天)、给药途径(静脉注射)
阅读提示:Materials and methods: Drug treatment
细胞培养与处理
BMDMs提取方法、培养条件(L929条件培养基)、刺激物浓度(GMCSF 50 ng/mL,CCL2 50 ng/mL)、处理时间(24小时);MCMECs无血清处理;共培养条件(Transwell 0.4 μm,时间24小时)
阅读提示:Materials and methods: BMDMs extraction and culture, Immunocytochemistry staining
迁移实验
Transwell孔径(8 μm)、下室条件(MCMEC条件培养基或重组GMCSF/CCL2)、共培养时间24小时、染色方法(结晶紫)
阅读提示:Materials and methods: Migration assay
梗死面积与心功能评估
Evans Blue和TTC染色方法;超声心动图检测时间(MIR后30天)
阅读提示:Materials and methods: Measurement of myocardial infarct size; Results section