ACOD1-衣康酸轴在巨噬细胞中通过上调并转移FTH1减轻良性气道狭窄中的氧化应激和炎症

ACOD1-itaconate in macrophage attenuates oxidative stress and inflammation in benign airway stenosis by upregulating and transferring FTH1.

作者信息YiLin Chen, ChengFei Xu, Tao Luo, DongChen Shi, XinYi Guo, ChengCheng Yang, YuChao Dong, HaiDong Huang, YiFei Zhang, Zhe Zong, XiaoMin Wang, ZhiRu Xu, Yue Shi, ChaoFeng Han, Hui Shi, Chong Bai
PMID41865719
发布时间2026-05
DOI10.1016/j.redox.2026.104133

实验完整度

高

包含人类样本多组学分析、小鼠模型、体外巨噬细胞和成纤维细胞共培养、功能验证(敲低/过表达)及机制验证(NRF2、FTH1、SCARA5)。

主要模型

小鼠气管刮伤诱导良性气道狭窄模型 Raw264.7巨噬细胞 THP-1来源人巨噬细胞 成纤维细胞(小鼠气管成纤维细胞和人气管成纤维细胞)

重点核对

ACOD1敲除小鼠(ACOD1−/− C57BL/6J) 4-OI给药剂量:25 mg/kg腹腔注射 LPS处理浓度:1 μg/ml 4-OI处理浓度:125 μM 抗SCARA5中和抗体给药:3 μL气管内注射

摘要

巨噬细胞的氧化应激在急性和慢性炎症以及慢性纤维化阶段中起关键作用,其代谢机制仍需进一步探索。在本研究中,对人类和小鼠良性气道狭窄(BAS)活检组织的多组学分析确定了ACOD1是急性炎症阶段免疫代谢调节的标志物。ACOD1敲除加重了急性和慢性炎症,并增加了肉芽组织形成。ACOD1-衣康酸轴及其衍生物4-辛基衣康酸(4-OI)协调急性和慢性炎症,减轻了BAS的纤维化。4-OI通过激活NRF2上调巨噬细胞中FTH1的表达,有效抑制氧化应激和急性炎症。此外,4-OI促进FTH1包装进巨噬细胞来源的外泌体中,以SCARA5依赖性方式转移至成纤维细胞,诱导成纤维细胞铁死亡并减轻慢性纤维化。总之,本研究表明ACOD1-衣康酸代谢轴通过诱导FTH1转移降低巨噬细胞中的氧化应激和炎症,从而减轻纤维化,为纤维化气道疾病提供了治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ACOD1-衣康酸轴在良性气道狭窄的急性和慢性炎症阶段如何调控巨噬细胞功能并影响纤维化进程?
核心机制
ACOD1-衣康酸轴通过激活NRF2上调巨噬细胞FTH1表达以抑制氧化应激和急性炎症;在慢性阶段,4-OI促进FTH1包装进外泌体并经SCARA5转移至成纤维细胞,诱导铁死亡从而减轻纤维化。
主要证据
多组学分析显示ACOD1在BAS肉芽组织中上调;ACOD1敲除加重急慢性炎症;4-OI处理减轻炎症和纤维化;体外实验表明4-OI通过NRF2上调FTH1,且FTH1敲低消除保护作用;共培养实验证明外泌体FTH1经SCARA5转移至成纤维细胞诱导铁死亡。
研究意义
本研究揭示ACOD1-衣康酸轴作为免疫代谢调节策略,为纤维化气道疾病提供潜在治疗靶点,支持进一步研究其临床应用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

发现ACOD1在BAS中表达上调

通过人类样本多组学分析和小鼠模型鉴定ACOD1在BAS中的表达变化

对正常和BAS肉芽组织进行单细胞RNA测序、免疫组化、免疫荧光;建立小鼠BAS模型并在伤后第1天进行转录组测序、Western blot、qPCR、IF和FISH检测ACOD1表达

2

验证ACOD1敲除加重BAS炎症

评估ACOD1缺失对急性和慢性炎症及纤维化的影响

使用ACOD1敲除小鼠建立BAS模型,通过HE染色、micro-CT、免疫荧光检测炎症和纤维化标志物

3

评估4-OI对BAS的疗效

验证外源性衣康酸衍生物4-OI能否减轻急性和慢性炎症及纤维化

腹腔注射4-OI或溶剂对照,通过HE染色、Masson染色、qPCR、免疫荧光检测炎症指标和胶原沉积

4

研究ACOD1-衣康酸轴在巨噬细胞中的功能

探究ACOD1在巨噬细胞中的表达及对炎症和氧化应激的调控作用

用LPS刺激巨噬细胞,检测ACOD1表达;通过过表达和敲低ACOD1检测炎症因子和ROS水平;用4-OI处理观察抗炎和抗氧化效果

5

揭示ACOD1-衣康酸-NRF2轴上调FTH1的机制

验证NRF2是否介导4-OI诱导的FTH1上调及其在抗氧化应激中的作用

使用NRF2抑制剂ML385和siRNA敲低NRF2,Western blot和免疫荧光检测FTH1表达和ROS水平;RNA-seq和免疫组化分析NRF2通路激活

6

验证外泌体FTH1转移诱导成纤维细胞铁死亡

证明4-OI促进巨噬细胞外泌体FTH1分泌,并被成纤维细胞摄取导致铁死亡

分离外泌体并表征;用DiD标记外泌体观察摄取;共培养体系检测成纤维细胞铁死亡标志物(脂质过氧化、线粒体形态)

7

证明FTH1-SCARA5轴介导巨噬细胞-成纤维细胞通讯

确定SCARA5是否介导FTH1的细胞间转移及对纤维化的影响

单细胞数据分析和CellChat预测相互作用;Co-IP验证结合;siRNA敲低SCARA5;体内注射抗SCARA5抗体观察纤维化变化

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
4-辛基衣康酸MedChem ExpressHY-112675
脂多糖MedChem ExpressHY-D1056
ML385MedChem ExpressHY-100523
GW4869MedChem ExpressHY-19363
去铁胺MedChem ExpressHY-B1625
DMEM培养基HycloneSH30243.01
胎牛血清HycloneSH30406.05
青霉素-链霉素HycloneSV30010
二甲基亚砜MedChem ExpressHY-Y0320
玉米油MedChem ExpressHY-Y1888
RAW264.7细胞系ProcellCL-0190
THP-1细胞系ProcellCL-0233
小鼠气管成纤维细胞ProcellCP-M008
人气管成纤维细胞ProcellCP-H247
Lipofectamine 3000InvitrogenL3000001
RNeasy试剂盒VazymeRC112
iScript cDNA合成试剂盒VazymeR323
SYBR Green预混液VazymeQ711
核浆蛋白提取试剂盒SolarbioEX1470
蛋白质分子量标准EpizymeWJ103
辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgGProteintechSA00001-2
FTH1抗体Cell Signaling Technology4393
FTH1 ELISA试剂盒CusabioCSB-EL009030MO
荧光法细胞内ROS检测试剂盒SigmaMAK142
Phen Green SK荧光指示剂Thermo Fisher ScientificP14312
DiD荧光染料BeyotimeC1039
C11-BODIPY探针InvitrogenD3861
重组FTH1蛋白CusabioCSB-EP009030MO
抗SCARA5抗体Bio-TechneAF4754

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型构建
小鼠品系:C57BL/6J,8周龄,雌雄兼有;麻醉:腹腔注射氯胺酮/甲苯噻嗪(100/10 mg/kg);手术:颈部消毒(75%乙醇),中线切口1.5 cm,气管横切口2/3周径,1 mm直径刷子插入气管6 mm,刮擦3次;术后3%异氟烷麻醉下颈椎脱臼处死。
阅读提示:Methods: Modeling of BAS in mice
4-OI给药方案
剂量:25 mg/kg;给药途径:腹腔注射;溶剂:10% DMSO + 90%玉米油;时间:伤前12小时、伤后立即(5分钟内)、伤后第2、4、6天;取样时间:急性期(24小时)和纤维化期(第7天)。
阅读提示:Methods: Drug administration; Figure 3B, 3M
细胞处理
RAW264.7和THP-1细胞用1 μg/ml LPS和/或125 μM 4-OI处理24小时;共培养使用Transwell,6孔板,成纤维细胞在下室,巨噬细胞在上室;外泌体分泌抑制:10 μM GW4869预处理12小时;铁死亡抑制:5 μM DFO预处理2小时。
阅读提示:Methods: Cell culture and treatment
外泌体分离与鉴定
差速离心:300g 10分钟,2000g 20分钟,100,000g 120分钟;鉴定标志物:TSG101, CD63, CD81, calnexin;NTA和TEM表征。
阅读提示:Methods: Isolation and identification of exosomes
体内SCARA5抑制
抗SCARA5中和抗体(AF4754,Bio-Techne)气管内注射,每次3 μL,于伤后立即和第4天给药;评估纤维化指标:α-SMA和COL1表达。
阅读提示:Methods: Drug administration; Figure 7H