临床样本分析
评估TUBB3在HCC组织中的表达及其与临床病理特征和预后的关系。
收集31对HCC和癌旁组织,用RT-qPCR和Western blot检测TUBB3表达,免疫荧光检测KCs中TUBB3及M2标志物(CD163、CD206),并进行生存分析。
DTX1-mediated degradation of TUBB3 in Kupffer cells mitigates hepatocellular carcinoma progression by regulating M1/M2 polarization.
包含体外细胞实验、体内动物模型、临床样本分析以及机制验证(包括PTEN/AKT通路、泛素化实验),证据层级丰富。
人Kupffer细胞(KCs) 小鼠Kupffer细胞 人肝癌细胞系Huh-7和SNU-423 小鼠肝癌细胞系Hepa 1-6 C57BL/6J小鼠皮下移植瘤模型
TUBB3在HCC组织中的表达上调,与M2巨噬细胞浸润正相关(免疫荧光、RT-qPCR、Western blot) 敲低TUBB3抑制M2极化(CD163、IL-10、Arg-1降低),增强M1极化(CD86、IL-6、iNOS升高) 敲低TUBB3在体内抑制肿瘤生长,并增强抗PD-1疗效 TUBB3通过抑制PTEN增加AKT磷酸化,AKT激活逆转TUBB3敲低对M2极化的抑制 DTX1促进TUBB3泛素化降解,DTX1过表达抑制M2极化,TUBB3过表达逆转此效应
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估TUBB3在HCC组织中的表达及其与临床病理特征和预后的关系。
收集31对HCC和癌旁组织,用RT-qPCR和Western blot检测TUBB3表达,免疫荧光检测KCs中TUBB3及M2标志物(CD163、CD206),并进行生存分析。
验证TUBB3敲低对巨噬细胞M1/M2极化的影响。
用慢病毒shRNA敲低人KCs中的TUBB3,通过条件培养基诱导TAM,检测M1/M2标志物。
评估敲低TUBB3的TAM条件培养基对HCC细胞增殖、迁移和侵袭能力的影响。
将TAM条件培养基处理Huh-7和SNU-423细胞,进行EdU、集落形成、Transwell实验。
验证TUBB3敲低在体内对肿瘤生长和免疫微环境的影响。
将小鼠KCs敲低TUBB3后与Hepa 1-6细胞混合皮下接种C57BL/6J小鼠,13天后分析肿瘤体积、重量及免疫指标。
验证TUBB3敲低的作用依赖巨噬细胞,并评估与抗PD-1联合的增效作用。
使用氯膦酸盐脂质体耗竭巨噬细胞,或给予抗PD-1抗体,观察肿瘤生长变化。
探究TUBB3是否通过抑制PTEN激活AKT,从而促进M2极化。
在KCs中敲低TUBB3后用PTEN抑制剂VO-OHpic或AKT激动剂YS-49处理,检测AKT磷酸化及极化标志物。
验证DTX1是否作为E3连接酶促进TUBB3泛素化降解。
在KCs中过表达DTX1,检测TUBB3蛋白半衰期;在HEK293T细胞中共转染Flag-TUBB3、Myc-DTX1和HA-Ub,进行泛素化免疫沉淀实验。
验证DTX1过表达通过降解TUBB3抑制M2极化,并确认TUBB3过表达可逆转此效应。
在KCs中共感染OE-DTX1和OE-TUBB3,诱导TAM后检测极化标志物及HCC细胞恶性行为。
验证DTX1过表达在体内通过降解TUBB3抑制肿瘤生长。
将过表达DTX1或共过表达DTX1和TUBB3的KCs与Hepa1-6细胞混合接种小鼠,13天后分析肿瘤变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | -- | -- |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 人Kupffer细胞 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 小鼠Kupffer细胞 | Procell | -- | |
| Huh-7细胞系 | Procell | -- | |
| SNU-423细胞系 | ATCC | -- | |
| Hepa 1-6细胞系 | Procell | -- | |
| 肝细胞完全培养基 | Procell | -- | |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| 新霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | VO-OHpic | MedChemExpress | HY-110067 |
| YS-49 | MedChemExpress | HY-15477 | |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 泛素化免疫沉淀实验 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 巴弗洛霉素A1 | Sigma-Aldrich | 196000 | |
| 动物实验 | 空白脂质体对照 | Yeasen | 40338ES10 |
| 抗小鼠PD-1抗体 | BioXCell | BE0146 | |
| 免疫荧光 | CD206抗体 | Abcam | ab64693 |
| CD163抗体 | Abcam | ab182422 | |
| CD68抗体 | ABclonal | A24386PM | |
| TUBB3抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA1-19187 | |
| Arg-1抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-29645 | |
| iNOS抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA1-036 | |
| 二抗(Alexa Fluor 488) | Abcam | ab150079 | |
| 二抗(Alexa Fluor 594) | Abcam | ab150113 | |
| DAPI | -- | -- | |
| 免疫组化 | CD8抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-88265 |
| CD86抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-79007 | |
| Ki67抗体 | GeneTex | GTX16667 | |
| PCNA抗体 | GeneTex | GTX100539 | |
| HRP偶联二抗 | GeneTex | GTX213110-01 | |
| TUNEL实验 | 一步法TUNEL凋亡检测试剂盒 | Meilunbio | MA0223 |
| RNA提取和RT-qPCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara | RR037Q | |
| TB Green快速qPCR预混液 | Takara | RR430S | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| TUBB3抗体 | Abcam | ab68193 | |
| 磷酸化AKT抗体 | Abcam | ab38449 | |
| DTX1抗体 | ProteinTech | 18350-1-AP | |
| Flag抗体 | Abcam | ab236777 | |
| Myc标签抗体 | Abcam | ab9106 | |
| HA标签抗体 | Abcam | ab9110 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab9485 | |
| GAPDH抗体 | GeneTex | GTX627408 | |
| HRP偶联山羊抗兔二抗 | ABclonal | AS014 | |
| HRP偶联山羊抗小鼠二抗 | GeneTex | GTX213111-01 | |
| ELISA | 人IL-10 ELISA试剂盒 | Antibodies-online | A76770 |
| 人IL-6 ELISA试剂盒 | Antibodies-online | A78324 | |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0044 | |
| 小鼠IL-10 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M0046 | |
| 小鼠TGF-β1 ELISA试剂盒 | Antibodies-online | A75898 | |
| 小鼠颗粒酶B ELISA试剂盒 | Antibodies-online | A2030 | |
| 小鼠穿孔素ELISA试剂盒 | MyBioSource | MBS012669 | |
| 流式细胞术 | Fc受体阻断抗体 | Thermo Fisher | 16-0161-82 |
| CD163-APC抗体 | Thermo Fisher | 17-1639-42 | |
| CD86-FITC抗体 | Thermo Fisher | MHCD8601 | |
| 细胞增殖实验 | EdU细胞增殖试剂盒 | Sangon | E607204 |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 甘氨酸 | -- | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 集落形成实验 | 结晶紫 | -- | -- |
| 迁移侵袭实验 | Matrigel基质胶 | -- | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 10.0统计软件 | GraphPad | -- |
| G-power 3.1.9.7软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | HCC组织样本量(n=31),TUBB3表达分组(高/低),生存分析统计方法 阅读提示:Methods章节Sample collection, Results部分Fig.1 |
| 体外敲低TUBB3 | 人KCs来源和培养条件,shRNA序列(1#、2#、3#),感染时间(48h),筛选药物(嘌呤霉素/新霉素),TAM诱导条件(HCC细胞条件培养基处理48小时) 阅读提示:Methods章节Cell culture, Establishment of stable knockdown and overexpression cell lines, TAM induction |
| 体内肿瘤模型 | 小鼠品系(C57BL/6J),年龄(5-6周),体重(15-20g),分组(每组6只),细胞接种数量(5×10^6 Hepa1-6和KCs按1:1),肿瘤体积测量公式(长×宽^2×0.5),终止时间(13天),麻醉方法(戊巴比妥钠150mg/kg i.p.) 阅读提示:Methods章节Subcutaneous murine tumor model, Results部分Fig.3 |
| 巨噬细胞耗竭 | 氯膦酸盐脂质体给药剂量(100μL/次),给药时间(注射前3天开始,每4天一次),对照(空白脂质体) 阅读提示:Methods章节Subcutaneous murine tumor model, Results部分Fig.4A |
| 抗PD-1治疗 | anti-PD-1抗体剂量(200μg),给药频率(每3天),给药途径(腹腔注射) 阅读提示:Methods章节Subcutaneous murine tumor model, Results部分Fig.4E |
| 机制验证 | PTEN抑制剂VO-OHpic浓度(500nM, 24h), AKT激动剂YS-49浓度(100μM, 18h),对照DMSO 阅读提示:Methods章节TAM induction, Results部分Fig.5 |
| 蛋白稳定性实验 | 环己酰亚胺浓度(100μg/mL),时间点(0,3,6,9小时) 阅读提示:Methods章节Protein stability assay |
| 泛素化实验 | 细胞系(HEK293T),转染质粒(Flag-TUBB3, Myc-DTX1, HA-Ub),转染试剂(Lipofectamine 3000,48h),Bafilomycin A1浓度(1μM, 24h),裂解液(RIPA含1%SDS和蛋白酶抑制剂),抗体(Flag抗体, Protein A/G磁珠) 阅读提示:Methods章节Ubiquitination immunoprecipitation assay |