数据获取与预处理
获取STAD患者的转录组和临床数据,并进行标准化处理以用于后续分析。
从UCSC Xena下载TCGA-STAD FPKM数据,删除无随访或生存时间≤30天的样本,将基因符号从Ensembl转换,取多基因符号的最大表达值,转换为TPM格式并进行log2转换。从GEO获取GSE62254数据集,映射探针到基因,删除生存时间≤30天的样本。从先前研究中获取277个PRGs。
Development of Novel PANoptosis-Related Gene Signatures to Predict the Prognosis of Patients With Stomach Adenocarcinoma.
包含生物信息学分析(TCGA/GEO数据)、体外细胞实验(qRT-PCR、Western blot、CCK-8、划痕、Transwell、流式)验证,但缺乏体内模型和临床样本验证。
TCGA-STAD队列(366例肿瘤样本) GSE62254验证队列(300例肿瘤样本) STAD细胞系AGS和HGC-27 人胃上皮细胞系GES-1
TCGA-STAD队列样本筛选标准:排除无随访或生存时间≤30天的样本 GSE62254数据集探针映射及样本排除标准:生存时间≤30天 APOD敲低使用si-APOD#1和si-APOD#2,转染用Lipofectamine 3000 细胞培养条件:GES-1用RPMI-1640+10%FBS;AGS用F-12K+10%FBS;HGC-27用RPMI-1640+10%FBS+1%青霉素-链霉素 RiskScore模型公式:RiskScore = 0.102*APOD + 0.063*GPC3 + 0.174*SERPINE1
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取STAD患者的转录组和临床数据,并进行标准化处理以用于后续分析。
从UCSC Xena下载TCGA-STAD FPKM数据,删除无随访或生存时间≤30天的样本,将基因符号从Ensembl转换,取多基因符号的最大表达值,转换为TPM格式并进行log2转换。从GEO获取GSE62254数据集,映射探针到基因,删除生存时间≤30天的样本。从先前研究中获取277个PRGs。
基于预后相关PRGs识别STAD的分子亚型,并评估不同亚型的预后差异。
通过单因素Cox回归筛选18个预后相关PRGs(p<0.05)。使用ssGSEA计算PRGs富集分数,并通过ConsensusClusterPlus进行一致性聚类,确定k=2时最优。比较C1和C2亚型的OS、临床病理特征,并筛选DEGs。
探索两个亚型间DEGs涉及的生物学功能和通路。
利用limma包识别DEGs,并通过clusterProfiler包进行KEGG和GO富集分析。
基于DEGs构建PANoptosis相关预后签名模型,并验证其预测性能。
对DEGs进行单因素Cox回归筛选382个预后基因,LASSO回归压缩基因数,逐步多因素回归确定三个签名基因(APOD、GPC3、SERPINE1),建立RiskScore模型。根据RiskScore=0将患者分为高低风险组,通过K-M曲线和ROC评估预后,并在GSE62254中验证。
整合RiskScore和临床特征构建预后预测模型,并评估其临床效用。
通过单因素和多因素Cox回归分析RiskScore的独立性,整合临床特征建立Nomogram,使用校准曲线和DCA评估预测准确性。
比较高风险组和低风险组的免疫细胞浸润和免疫治疗反应。
使用TIMER和MCP-counter算法评估免疫细胞浸润,使用TIDE算法预测免疫治疗反应,并分析RiskScore与免疫检查点基因的相关性。
筛选与RiskScore显著相关的药物,为个体化治疗提供参考。
使用oncoPredict包预测每位患者的药物IC50,分析RiskScore与药物敏感性的相关性,筛选FDR<0.05且|cor|>0.3的药物。
验证PANoptosis相关签名基因在STAD细胞中的表达及其功能影响。
通过qRT-PCR和Western blot检测APOD、GPC3和SERPINE1在STAD细胞系(AGS、HGC-27)和人胃上皮细胞(GES-1)中的表达。使用siRNA敲低APOD,并通过CCK-8、划痕实验、Transwell实验和流式细胞术评估细胞活力、迁移、侵袭和凋亡的变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 数据获取 | TCGA-STAD队列 | -- | -- |
| GSE62254数据集 | -- | -- | |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | BDBio | C5068-500 |
| F-12K培养基 | BDBio | C5025-500 | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| GES-1细胞系 | BDBio | C5068 | |
| AGS细胞系 | BDBio | C5025 | |
| HGC-27细胞系 | Wuhan Pricella Biotechnology | CL-0107 | |
| siRNA转染 | si-APOD#1 | Shanghai GenePharma | -- |
| si-APOD#2 | Shanghai GenePharma | -- | |
| si-NC | Shanghai GenePharma | -- | |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000008 | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Aladdin | T751379-100ml |
| SuperRT cDNA合成试剂盒 | Aladdin | S665657-100T | |
| UltraBio SYBR Green qPCR混合液 | Aladdin | S751587-25ml | |
| CG-05 PCR系统 | HealForce | -- | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Servicebio | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Servicebio | -- | |
| SDS-PAGE凝胶 | -- | -- | |
| 聚偏二氟乙烯膜 | -- | -- | |
| APOD抗体 | Abcam | ab108191 | |
| GPC3抗体 | Abcam | ab174851 | |
| SERPINE1抗体 | Abcam | ab222754 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab128915 | |
| HRP标记二抗 | Abcam | ab205718 | |
| CCK-8实验 | CCK-8溶液 | Solarbio | CA1210 |
| 细胞功能检测 | BioTek Synergy H1酶标仪 | Agilent | -- |
| 划痕实验/Transwell实验 | CKX53倒置显微镜 | Olympus | -- |
| Transwell实验 | Transwell小室 | Corning | -- |
| Matrigel | Corning | -- | |
| 流式细胞术 | Annexin V-FITC工作液 | BD Biosciences | -- |
| 碘化丙啶 | BD Biosciences | -- | |
| 数据分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| R软件 | -- | -- | |
| GraphPad Prism | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 数据获取与预处理 | TCGA-STAD和GSE62254数据集的筛选标准(删除无随访或生存时间≤30天的样本),数据标准化方法(TPM、log2转换)。 阅读提示:见2.1节 |
| 分子亚型识别 | 一致性聚类参数(k=2,km算法,1-Spearman相关性,500次bootstrap,80%训练集和20%验证集)。 阅读提示:见2.3节 |
| RiskScore模型构建 | 模型公式(RiskScore=0.102*APOD+0.063*GPC3+0.174*SERPINE1),高风险组定义(RiskScore>0)。 阅读提示:见2.5节和3.4节 |
| 细胞培养与处理 | 细胞系来源、培养基种类(GES-1用RPMI-1640,AGS用F-12K,HGC-27用RPMI-1640)及FBS浓度(10%),培养条件(37°C,5% CO2)。 阅读提示:见2.9节 |
| siRNA转染 | siRNA序列(si-APOD#1: AGGAGAATTTTGACGTGAATAAG; si-APOD#2: GGCCAACTACTCACTAATGGAAA),转染试剂(Lipofectamine 3000)及用量。 阅读提示:见2.9节 |
| 体外功能验证 | CCK-8实验细胞密度(5×10^3/孔)和检测时间点(24、48、72小时);划痕实验细胞密度(5×10^5/孔)和观察时间(0、48小时);Transwell实验细胞密度(3×10^4/孔)、小室孔径(8μm)和观察时间(48小时)。 阅读提示:见2.12、2.13、2.14节 |