PD小鼠模型建立与验证
建立MPTP诱导的亚急性PD小鼠模型,并验证模型成功及相关病理特征。
对8周龄雄性C57BL/6小鼠腹腔注射MPTP(25 mg/kg/天,连续5天)建立PD模型,对照组注射等量生理盐水。通过行为学实验(转棒、攀杆、步态分析)检测运动功能,并通过TH免疫组化和Western blot验证多巴胺能神经元损伤。
Inhibition of astrocyte BMP signaling alleviates neuroinflammation in experimental models of Parkinson's disease.
包含snRNA-seq转录组分析、MPTP小鼠模型、细胞实验(C8-D1A、MN9D)、免疫组化/免疫荧光、Western blot、ELISA及行为学验证,涵盖体外和体内功能与机制验证。
MPTP诱导的亚急性PD小鼠模型(C57BL/6小鼠) C8-D1A星形胶质细胞系 MN9D多巴胺能神经元细胞系 人中脑scRNA-seq数据(GSE157783)
MPTP剂量:25 mg/kg/天,连续5天,腹腔注射 C8-D1A细胞MPP+处理浓度:800 µM,处理24小时 重组Bmp6蛋白处理浓度:100 ng/ml DMH1(ALK2抑制剂)给药方案,但文中未明确说明剂量、途径和时间 统计学方法:双尾t检验或单因素方差分析(ANOVA),数据以均值±SEM表示
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立MPTP诱导的亚急性PD小鼠模型,并验证模型成功及相关病理特征。
对8周龄雄性C57BL/6小鼠腹腔注射MPTP(25 mg/kg/天,连续5天)建立PD模型,对照组注射等量生理盐水。通过行为学实验(转棒、攀杆、步态分析)检测运动功能,并通过TH免疫组化和Western blot验证多巴胺能神经元损伤。
分析PD小鼠SN区星形胶质细胞的转录组变化和亚群异质性,识别差异表达基因和功能通路。
对前期获得的snRNA-seq数据(CON和PD组)进行分析,使用Seurat进行聚类,鉴定星形胶质细胞亚群,并通过GSEA、GO及KEGG分析差异表达基因的功能富集。
构建星形胶质细胞亚群在PD进展中的动态变化轨迹,鉴定中间状态和终末神经毒性亚群。
使用Monocle2进行拟时分析,以cluster 2为起点,构建星形胶质细胞激活轨迹,并比较PD与CON组各亚群比例及基因表达。
鉴定PD中特异激活的信号通路,并揭示星形胶质细胞在BMP信号网络中的角色。
使用CellChat分析所有细胞类型间的通讯网络,比较PD与CON组的信号通路差异,并具体分析BMP信号通路的配体-受体对及星形胶质细胞的输入/输出信号强度。
在体内和体外模型中验证BMP信号通路是否激活。
通过免疫荧光检测SN区p-Smad1/5/9水平,并通过Western blot和qPCR检测C8-D1A细胞中MPP+处理对BMP靶基因(Id1、Id2)和p-Smad1/5/9的影响。
探究抑制BMP信号是否减少星形胶质细胞炎症因子的释放。
使用siRNA敲低ALK2(si-Acvr1)或DMH1抑制BMP信号,在MPP+处理的星形胶质细胞中检测炎症因子(Nlrp3、TNF-α、IL-1β)的mRNA和蛋白水平,并通过ELISA检测培养上清液中的IL-1β、TNF-α和IL-6。
评估抑制星形胶质细胞BMP信号后,其条件培养基对多巴胺能神经元存活的影响。
收集不同处理组的星形胶质细胞条件培养基,用于培养MN9D多巴胺能神经元,检测TH的表达水平。
验证在体内特异性抑制星形胶质细胞BMP信号是否改善PD小鼠的运动功能和多巴胺能神经元存活。
通过立体定位注射AAV-GFAP-sh-Acvr1或对照病毒至SN区,小鼠随后进行MPTP或生理盐水处理,进行行为学测试和TH免疫组化分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 建立PD模型 | 1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶 | Macklin | M832929 |
| 免疫荧光染色 | 抗磷酸化SMAD1/5/9兔单克隆抗体 | CST | 13820 |
| 抗Aldh1l1小鼠单克隆抗体 | Proteintech | 68018-1-Ig | |
| Alexa Fluor® 594标记的山羊抗兔IgG二抗 | Thermo Scientific™ | A-21207 | |
| Alexa Fluor® 488标记的山羊抗小鼠IgG二抗 | Thermo Scientific™ | A-21202 | |
| 免疫组化染色 | UltraSensitiveSP试剂盒 | MXB Biotechnologies | KIT-9720 |
| 抗TH兔单克隆抗体 | Boster | PB9449 | |
| Western blot | 抗TH兔单克隆抗体 | ABclonal | A5079 |
| 细胞培养 | C8-D1A细胞系 | Wuhan Pricella Biotechnology Co., Ltd | CL-0506 |
| 高糖DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT | |
| 胎牛血清 | clerk | FB15015 | |
| 青霉素/链霉素溶液 | Solarbio | P1400 | |
| MN9D多巴胺能神经元细胞系 | Hunan Fenghui Biotechnology Co., Ltd | CL0466 | |
| MEM+NEAA培养基 | Gibco | 11095080 | |
| 胰蛋白酶-EDTA(0.25%)无酚红 | Solarbio | T1300 | |
| 6孔板 | Servicebio | CCP-6H | |
| CCK8实验 | CCK-8试剂盒 | APEXBIO | K1018 |
| RT-qPCR | 总RNA提取试剂盒 | ZOMANBIO | ZP401 |
| HiScript III逆转录预混液 | Vazyme | R323 | |
| ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | KT201 | |
| QuantStudio™ 6 Flex实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | 4484642 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | R0020 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | PC0020 | |
| Infinite F200酶标仪 | TECAN | -- | |
| 5×上样缓冲液 | Solarbio | P1040 | |
| 抗GAPDH小鼠单克隆抗体 | Servicebio | GB120025 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG二抗 | Biodragon | BF03008 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG二抗 | Proteintech | SA00001-1 | |
| 增强型/超敏ECL化学发光试剂盒 | Biodragon | BF06053-100 | |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | LIANKEBIO | EK282 |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | LIANKEBIO | EK201B | |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | LIANKEBIO | EK206 | |
| 体内实验 | DMH1 | -- | -- |
| AAV5-GFAP-sh-Acvr1 | -- | -- | |
| 体外处理 | 重组Bmp6蛋白 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| PD模型建立 | MPTP剂量:25 mg/kg/天,连续5天,腹腔注射;动物周龄和性别:8周龄雄性C57BL/6小鼠 阅读提示:Methods: Establishment of PD model mice |
| 细胞培养 | C8-D1A细胞培养条件:高糖DMEM+10%FBS+1%双抗,5%CO2, 37°C;MN9D细胞培养条件:MEM+NEAA+10%FBS+1%双抗 阅读提示:Methods: Cell culture |
| 体外MPP+处理 | MPP+浓度:800 µM,处理24小时;细胞密度:5×10^3 cells/well(CCK-8)或50,000 cells/cm^2(6孔板) 阅读提示:Methods: CCK8 assay; Figure 7 legend |
| BMP信号抑制 | siRNA靶向Acvr1(si-Acvr1)或阴性对照;DMH1浓度、给药方式、时间(文中未明确说明);AAV注射体积、滴度、时间(文中未明确说明) 阅读提示:Methods: Cell culture; Figure 5 and 9 legends |
| 行为学测试 | 转棒转速:25 rpm;攀杆实验记录总时间T和转向时间;步态分析参数:步长、步速 阅读提示:Methods: Animal behavioral experiments |