hUC-MSCs及其衍生的外泌体通过调节雌激素信号通路减轻DEX诱导的肌肉萎缩

hUC-MSCs and derived exosomes attenuate DEX-induced muscle atrophy through modulation of estrogen signaling pathway.

作者信息Na Li, Xiaoqin Liu, Qiong Wang, Yushu Chen, Chao Han, Chao Qu, Xin Guan, Wei Zou, Xiaomin Wang, Ang Li, Yin Zhang, Liping Zhu, Ruoyutong Du, Jing Liu, Yanfu Wang
PMID40753405
发布时间2025-08
DOI10.1186/s13287-025-04328-z

实验完整度

包含动物模型(DEX诱导肌萎缩小鼠)、体外细胞模型(C2C12肌管)、功能验证(握力/耐力/CSA)及机制验证(RNA-seq、Western blot、抑制剂实验)。

主要模型

DEX诱导肌萎缩雄性C57BL/6J小鼠模型 C2C12成肌细胞分化肌管模型

重点核对

DEX诱导剂量:20 mg/kg腹腔注射,连续7天 hUC-MSCs治疗剂量:1×10⁶ cells/kg,双下肢腓肠肌注射,连续14天 MSC-Exos治疗剂量:100 μg/天(双侧,每侧50 μg/μL),连续14天 C2C12肌管DEX处理浓度:10 μM,处理24小时 通路抑制剂:PD98059(20 μM),BEZ235(10 μM)

摘要

背景:肌少症是一种多因素综合征,以骨骼肌质量和力量进行性丧失以及身体功能受损为特征,主要与衰老相关,但也可由慢性炎症、活动受限和内分泌失调驱动。它导致衰弱、跌倒和独立性丧失的风险增加,对老龄化人口构成重大公共卫生挑战。尽管人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs)及其衍生的外泌体(MSC-Exos)在再生医学中展现出显著潜力,但其治疗肌少症的安全性和有效性仍不清楚。为解决这一问题,我们进行了一项临床前研究,以系统评估其治疗潜力和安全性。方法:雄性C57BL/6 J小鼠接受地塞米松(20 mg/kg,腹腔注射)诱导肌肉萎缩。随后,双侧肌肉注射hUC-MSCs(1×10⁶ cells/kg)、外泌体(100 μg),或腹腔注射SNG162(40 mg/kg),持续两周。取腓肠肌进行组织学分析、TUNEL染色、Western blotting、RNA测序和qPCR。分化的C2C12肌管用10 μM地塞米松处理,并与hUC-MSCs或外泌体共培养24小时。收集样本进行qPCR、Western blot分析和流式细胞术。EdU标记用于评估细胞增殖,MyHC和MDC免疫荧光染色用于评估肌管形态和自噬水平。ELISA用于定量炎症细胞因子和雌激素水平。结果:hUC-MSCs、MSC-Exos和SNG162改善了小鼠的握力和耐力,增加了腓肠肌重量与体重之比而不对总体重产生不利影响,并增强了肌纤维横截面积(CSA)。同时,它们上调了MyHC、Beclin-1、Bcl-2/Bax、ERα46、ERα36、ERβ和雌二醇的表达,同时降低了关键的萎缩和炎症标志物,包括FOXO3、MAFbX、MURF1、TNF-α、IL-6、IL-1β、P62和Caspase-3,在体外和体内模型中均如此。此外,hUC-MSCs和MSC-Exos减弱了DEX诱导的腓肠肌和C2C12肌管的凋亡。值得注意的是,MSC-Exos在促进C2C12肌管增殖和分化方面优于hUC-MSCs。机制上,RNA测序和Western blot分析确定PI3K/AKT/mTOR和ERK1/2信号通路是这些效应的关键介质。结论:本研究强调了hUC-MSCs及其衍生的外泌体作为治疗肌少症的新型、安全、有效策略的潜力,为临床应用提供了有前景的途径。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
hUC-MSCs及其衍生的外泌体能否通过调节雌激素信号通路改善地塞米松诱导的肌肉萎缩?
核心机制
hUC-MSCs和MSC-Exos通过增加血清雌二醇水平、上调雌激素受体(ERα、ERα36、ERβ)表达,激活下游PI3K/AKT/mTOR和ERK1/2信号通路,从而抑制蛋白降解、减轻炎症、调节自噬并抑制凋亡。
主要证据
在DEX诱导的肌萎缩小鼠模型中,hUC-MSCs和MSC-Exos治疗改善了抓力、耐力和肌纤维横截面积;在C2C12肌管中促进增殖和分化;RNA-seq和Western blot证实了相关通路激活,雌激素类似物SNG162模拟了治疗效果。
研究意义
该研究为hUC-MSCs和MSC-Exos作为治疗肌少症的安全有效策略提供了临床前证据,为激素缺乏相关的肌少症提供了可转化的解决方案。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立DEX诱导的肌肉萎缩动物模型

模拟肌少症的关键表型,评估hUC-MSCs和MSC-Exos的治疗潜力。

雄性C57BL/6J小鼠腹腔注射地塞米松(20 mg/kg)连续7天诱导肌肉萎缩,随后分组注射hUC-MSCs、MSC-Exos或SNG162。

2

体内功能和组织学评估

验证治疗对肌肉功能和质量的影响。

测量小鼠抓力、耐力、腓肠肌重量与体重比,并通过HE染色分析肌纤维横截面积和最小Feret直径。

3

体外C2C12肌管萎缩模型建立及治疗评估

评估hUC-MSCs和MSC-Exos对C2C12肌管萎缩的直接作用。

C2C12成肌细胞分化为肌管后,用10 μM DEX处理24小时,与hUC-MSCs或MSC-Exos共培养,检测增殖(EdU)、分化(MyHC)、自噬(MDC)和凋亡(流式)。

4

转录组测序分析

揭示hUC-MSCs和MSC-Exos治疗后的分子变化及信号通路。

对腓肠肌组织进行RNA-seq,鉴定差异表达基因,并进行GO和KEGG通路富集分析。

5

分子机制验证

验证雌激素信号通路及下游PI3K/AKT/mTOR和ERK1/2通路的作用。

通过Western blot检测ERα、ERα36、ERβ、PI3K/AKT/mTOR和ERK1/2蛋白表达,并使用抑制剂验证通路的必要性。

6

体内验证雌激素的核心作用

确认雌激素信号在肌肉修复中的核心作用。

使用雌激素类似物SNG162处理DEX诱导的肌萎缩小鼠,评估其治疗效果与hUC-MSCs/MSC-Exos是否一致。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
高糖DMEM培养基Gibco11965-092
马血清----
胰蛋白酶-EDTA----
磷酸盐缓冲液ServiceBioG4202-100ML
去外泌体胎牛血清UmibioUR50202
CD9抗体Proteintech20597-1-AP
CD63抗体Proteintech67605-1-Ig
Tsg101抗体Proteintech28283-1-AP
Calnexin抗体Proteintech10427-2-AP
石蜡ServiceBio--
伊红ServiceBio--
切片机----
显微镜OlympusDP71
TRIzol试剂----
NanoDrop 2000分光光度计----
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
Illumina HiSeq 2000测序平台Illumina--
C2C12细胞系ProcellCL-0044
Transwell系统Corning3470
地塞米松----
PD98059(ERK1/2抑制剂)MCEHY-12028
达克替尼(BEZ235,PI3K抑制剂)MCEHY-50673
EdU细胞增殖检测试剂盒BeyotimeC0075S
Triton X-100BeyotimeP0096
DAPIBeyotimeC1005
MyHC抗体Santa Cruzsc-376157
CoraLite488标记山羊抗小鼠IgGProteintechSA00013-1
RIPA裂解液ServiceBioG2002-100
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0010S
SDS-PAGE凝胶ServiceBioG2043-50T
PVDF膜MerckIPFL00010
Bax抗体Proteintech60267-1-Ig
Bcl-2抗体Abcamab182858
Caspase-3抗体Proteintech66470-2-Ig
MuRF1抗体Santa Cruzsc-398608
FOXO3抗体Santa Cruzsc-48348
MAFbx抗体Santa Cruzsc-166806
MYH抗体Santa Cruzsc-376157
mTOR抗体Santa Cruzsc-517464
磷酸化mTOR抗体Proteintech67778-1-Ig
AKT抗体Proteintech60203-2-Ig
磷酸化AKT抗体Proteintech66444-1-Ig
磷酸化PI3K抗体AffinityAB-2834668
PI3K抗体Proteintech60225-1-Ig
ERα抗体Santa Cruzsc-8005
ERβ抗体Proteintech14007-1-AP
TNF-α抗体Proteintech17590-1-AP
p62抗体ABclonalA7758
Beclin抗体ABclonalA7353
磷酸化p44/42 MAPK(Erk1/2)抗体Cell Signaling Technology4370
p44/42 MAPK(Erk1/2)抗体Cell Signaling Technology4695
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
β微管蛋白抗体Proteintech66240-1-Ig
HRP标记的山羊抗小鼠IgG(H+L)ProteintechSA00001-1
HRP标记的山羊抗兔IgG(H+L)ProteintechSA00001-2
ECL发光液ServiceBioG2020-50ML
Trizol试剂Solarbio--
2× SYBR Green qPCR预混液Sparkjade Biotechnology--
QuantStudio 5 Dx实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific--
雌二醇(E2)ELISA试剂盒CusabioCSB-E05101m
TNF-α ELISA试剂盒JinmeiCSB-E04741m
IL-6 ELISA试剂盒JinmeiCSB-E04639m
IL-1β ELISA试剂盒JinmeiCSB-E08054m
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒BeyotimeC1062L
BD FACSAria III流式细胞仪BD Biosciences--
ImageJ软件----
FlowJo软件----
GraphPad Prism软件GraphPad Software Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
DEX给药剂量、途径、频率:20 mg/kg,腹腔注射,连续7天;小鼠品系、性别、年龄:雄性C57BL/6J,8-10周龄
阅读提示:见Materials and methods - Animals and experimental design
hUC-MSCs治疗
细胞来源、代数、注射剂量、途径、频率:hUC-MSCs(P3-P8),1×10⁶ cells/kg,双侧腓肠肌注射,连续14天
阅读提示:见Materials and methods - Animals and experimental design
MSC-Exos治疗
外泌体剂量、注射途径、频率:100 μg/天(双侧,每侧50 μg/μL),双侧腓肠肌注射,连续14天
阅读提示:见Materials and methods - Animals and experimental design
SNG162治疗
SNG162剂量、给药途径、频率:40 mg/kg,腹腔注射,连续2周
阅读提示:见Materials and methods - Animals and experimental design
体外肌管萎缩模型
C2C12分化条件、DEX浓度、处理时间、共培养体系:分化培养基(DMEM+4%马血清)7天;10 μM DEX处理24小时;Transwell共培养(0.4 μm)
阅读提示:见Materials and methods - C2C12 cell culture, differentiation and treatment 及 In vitro myotube atrophy model and treatment groups
通路抑制剂实验
抑制剂名称、浓度、预处理时间:PD98059(20 μM)、BEZ235(10 μM),预处理时间未明确说明
阅读提示:见Materials and methods - In vitro myotube atrophy model and treatment groups
功能评估
抓力测试方法、次数、归一化:每周测量,每只5次取平均,除以体重(N/g);耐力测试方法:四肢悬挂测试,记录最长悬挂时间,除以体重(s/g)
阅读提示:见Materials and methods - Muscle function test
组织学分析
切片厚度、视野数、肌纤维数:5 μm切片,每样本6个视野,每视野50个肌纤维;测量指标:横截面积、最小Feret直径
阅读提示:见Materials and methods - Histological analysis of the muscle
分子检测
Western blot抗体信息、RT-qPCR引物序列、ELISA试剂盒货号
阅读提示:见Materials and methods - Western blot assay、RNA extraction and qRT-PCR、Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)