建立索拉非尼耐药HepG2细胞模型
建立索拉非尼耐药细胞模型,以研究耐药机制。
通过逐步递增索拉非尼浓度(从1 μM开始,每两周增加1 μM,直至细胞耐受8 μM)建立HepG2/Sorafenib细胞,并维持培养于含8 μM索拉非尼的培养基中。
Apatinib modulates sorafenib-resistant hepatocellular carcinoma through inhibiting the EGFR/JNK/ERK signaling pathway.
包含体外细胞实验与体内动物模型等至少两个独立证据层级,并通过特异性抑制剂进行功能与机制验证。
HepG2细胞 HepG2/Sorafenib细胞 Balb/c裸鼠皮下移植瘤模型
索拉非尼耐药HepG2细胞建立:逐步递增索拉非尼浓度至8 μM 阿帕替尼处理浓度:0、0.5、1、2、4 μM,处理24小时 JNK抑制剂SP600125(20 μM)和ERK抑制剂PD98059(10 μM)处理24小时 体内实验分组:HepG2/sorafenib(对照组)、阿帕替尼、阿帕替尼+SP600125、阿帕替尼+PD98059,每组4只小鼠 阿帕替尼给药剂量:150 mg/kg,每日一次口服灌胃
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立索拉非尼耐药细胞模型,以研究耐药机制。
通过逐步递增索拉非尼浓度(从1 μM开始,每两周增加1 μM,直至细胞耐受8 μM)建立HepG2/Sorafenib细胞,并维持培养于含8 μM索拉非尼的培养基中。
比较索拉非尼耐药与敏感细胞的EMT相关蛋白表达及微管结构变化。
通过Western blot检测EMT相关蛋白(β-Tubulin III、N-cadherin、Vimentin、keratin)表达,通过免疫荧光观察微管结构,并通过Transwell实验检测迁移和侵袭能力。
探究阿帕替尼对索拉非尼耐药细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
用不同浓度(0、0.5、1、2、4 μM)阿帕替尼处理HepG2和HepG2/Sorafenib细胞24小时,通过CCK-8、集落形成和Transwell实验检测细胞活力、增殖、迁移和侵袭。
探究阿帕替尼对EMT相关蛋白和EGFR/JNK/ERK通路蛋白表达的影响。
使用Western blot检测不同浓度阿帕替尼处理后EMT相关蛋白(β-Tubulin III、N-cadherin、Vimentin、keratin)和EGFR/JNK/ERK通路蛋白(p-EGFR、p-JNK、p-ERK、EGFR、JNK、ERK)的表达。
验证阿帕替尼是否通过EGFR/JNK/ERK通路发挥作用。
在阿帕替尼处理的基础上,加入JNK抑制剂SP600125(20 μM)或ERK抑制剂PD98059(10 μM)处理24小时,通过Western blot和Transwell实验检测蛋白表达及迁移侵袭能力变化。
在体内验证阿帕替尼对索拉非尼耐药肿瘤生长的抑制作用及机制。
将HepG2/Sorafenib细胞皮下注射到裸鼠,7天后分组给药:对照组、阿帕替尼组(150 mg/kg,每日口服)、阿帕替尼+SP600125组(SP600125 10 mg/kg,每3天注射)、阿帕替尼+PD98059组(PD98059 10 mg/kg,每3天注射),治疗约4周后处死,检测肿瘤体积、重量,并通过Western blot检测肿瘤组织中相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Procell | PM150250 |
| 胎牛血清 | GIBCO | 10099141 | |
| 青霉素/链霉素 | Meilune | MA0110 | |
| 耐药细胞建立 | 索拉非尼 | MCE | HY-10201 |
| 药物处理 | SP600125 | Beyotime | -- |
| PD98059 | Beyotime | -- | |
| CCK-8实验 | CCK-8溶液 | Servicebio | G4103 |
| 酶标仪 | Thermo Fisher | multiskan sky | |
| 免疫荧光 | TritonX-100 | Solarbio | T8200 |
| 牛血清白蛋白 | Servicebio | G5001 | |
| 抗β-微管蛋白抗体 | PTG | 10068-1-AP | |
| 二抗 | PTG | RGAR004 | |
| 荧光显微镜 | Nikon | Eclipse C1 | |
| 集落形成实验 | 结晶紫染色液 | Sangon Biotech | CB0331 |
| 倒置显微镜 | Olympus | CKX53 | |
| Transwell实验 | Transwell试剂盒 | Corning | 3422 |
| Matrigel基质胶 | Corning | BD Biocoat 354234 | |
| 结晶紫 | Sangon | CB0331 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Boster | AR0102 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0012 | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 抗β-Tubulin III抗体 | Abcam | Ab52623 | |
| 抗角蛋白抗体 | Abcam | Ab8068 | |
| 抗N-钙黏蛋白抗体 | Abcam | Ab52623 | |
| 抗波形蛋白抗体 | Abcam | Ab52623 | |
| 抗p-EGFR抗体 | Abcam | Ab32430 | |
| 抗p-JNK抗体 | CST | 9255 | |
| 抗p-ERK抗体 | CST | 4370 | |
| 抗EGFR抗体 | Abcam | Ab52894 | |
| 抗JNK抗体 | CST | 9252 | |
| 抗ERK抗体 | CST | 4695 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| HRP标记的二抗 | ZSGB-Bio | ZB-2305/ZB-2301 | |
| Image Lab软件 | Bio-Rad | -- | |
| 动物实验 | Balb/c裸鼠 | Charles River | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与耐药细胞建立 | 细胞系来源(HepG2来自ATCC);耐药细胞建立过程中索拉非尼浓度递增方案 阅读提示:Materials and Methods: Cell lines, Establishment of sorafenib-resistant HepG2 cells |
| 细胞药物处理 | 阿帕替尼浓度(0、0.5、1、2、4 μM)及处理时间(24 h);SP600125浓度(20 μM)和PD98059浓度(10 μM)及处理时间(24 h) 阅读提示:Materials and Methods: Cell treatment |
| CCK-8实验 | 细胞接种密度(5×10^4 cells/well);处理浓度、时间;CCK-8孵育时间(4 h);检测波长(450 nm) 阅读提示:Materials and Methods: CCK-8 assay; Figure 3 legend |
| 集落形成实验 | 细胞接种密度(1×10^3 cells/well);培养时间(约两周);固定和染色液浓度、时间 阅读提示:Materials and Methods: Colony formation; Figure 3 legend |
| Transwell实验 | 细胞密度(1.2×10^5 cells/well);下室FBS浓度(30%);迁移/侵袭时间(48 h);Matrigel铺胶条件 阅读提示:Materials and Methods: Transwell assay; Figure 4 legend |
| Western blot | 抗体种类、稀释比例(具体见原文);内参GAPDH;SDS-PAGE电压(80 V) 阅读提示:Materials and Methods: Western blot; Figure legends 2, 5, 6, 8, 9 |
| 动物实验 | 小鼠品系、周龄、性别(4周龄雌性Balb/c裸鼠);接种细胞数(1×10^6);分组和每组动物数(n=4);阿帕替尼剂量(150 mg/kg,每日一次)和给药方式(口服灌胃);SP600125/PD98059剂量(10 mg/kg,每3天)和给药方式(注射);治疗周期(约4周);肿瘤体积计算公式 阅读提示:Materials and Methods: In vivo experiments; Figure 9 legend |
| 统计方法 | 统计检验方法(t检验);显著性水平(p < 0.05);数据表示(mean ± SD);实验重复次数(所有实验重复三次) 阅读提示:Materials and Methods: Statistical methods |