体外ICH模型构建与外泌体提取鉴定
验证不同浓度亚铁血红素对原代星形胶质细胞活化和活力的影响,并提取和鉴定外泌体。
使用不同浓度(0、25、50、100、200 μm)亚铁血红素处理原代星形胶质细胞48小时,通过CCK-8检测细胞活力,Western Blot检测GFAP表达评估活化。采用超速离心法提取外泌体,并通过NTA、TEM和Western Blot(Alix、CD9、HSP70、TSG101)进行鉴定。
Reactive astrocyte-derived exosomes enhance intracranial lymphatic drainage in mice after intracranial hemorrhage.
包含体外细胞模型、体内ICH模型、功能验证(免疫荧光、Western blot、MRI)及机制验证(TGN020阻断),证据层级多样。
原代星形胶质细胞 胶原酶诱导的C57BL/6小鼠ICH模型
外泌体鼻内给药剂量和时间(1h、1天、2天,108 exosomes) TGN020剂量和给药方式(100 mg/kg腹腔注射) RITC-Dextran示踪剂注射部位(基底节、小脑延髓池)和浓度(25 mg/ml) 胶原酶VII剂量(0.1 U/ul,0.5ul)和注射参数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证不同浓度亚铁血红素对原代星形胶质细胞活化和活力的影响,并提取和鉴定外泌体。
使用不同浓度(0、25、50、100、200 μm)亚铁血红素处理原代星形胶质细胞48小时,通过CCK-8检测细胞活力,Western Blot检测GFAP表达评估活化。采用超速离心法提取外泌体,并通过NTA、TEM和Western Blot(Alix、CD9、HSP70、TSG101)进行鉴定。
建立小鼠ICH模型,并评估鼻内给予外泌体对星形胶质细胞增殖和AQP4极化的影响。
采用胶原酶法诱导ICH,术后1小时、1天、2天鼻内给予PBS重悬的108外泌体(H-Exo或R-Exo),通过免疫荧光检测GFAP和AQP4表达。
评估H-Exo对ICH小鼠脑内溶质清除和淋巴引流功能的影响。
通过基底节注射RITC-Dextran评估溶质清除,通过小脑延髓池注射RITC-Dextran和荧光磁珠评估脑实质内流和引流至MLV及DCLN的效率。
检测H-Exo对ICP中磷酸化tau蛋白积累、血肿体积、脑水肿和血脑屏障蛋白的影响。
Western Blot检测磷酸化tau蛋白、紧密连接蛋白(Occludin、ZO-1);MRI(T2加权)测量血肿和PHE体积;湿干重法测定脑含水量。
评估H-Exo对ICH小鼠长期神经功能和运动恢复的影响,并验证GLS功能的作用。
通过mNSS评分和Cat Walk步态分析评估神经功能;同时设置TGN020作为AQP4抑制剂干预,观察其对H-Exo效应的影响。
检测H-Exo对ICP后皮层神经元凋亡和功能状态的影响,并验证GLS的介导作用。
TUNEL和Neun免疫荧光共定位检测神经元凋亡,Nissl染色评估神经元功能状态,Western Blot检测Bax和Bcl-2表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物饲养与麻醉 | 异氟烷 | Sigma-Aldrich | 792632 |
| 模型构建 | VII型胶原酶 | Sigma-Aldrich | C2399 |
| 药物处理 | 亚铁血红素 | MedChem Express | HY-19424 |
| TGN020 | MedChem Express | HY-W008574 | |
| 细胞培养 | 原代星形胶质细胞 | Pricella | CP-M157 |
| 完全培养基 | Pricella | CM-M157 | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Solarbio | CA1210 |
| 外泌体标记 | PKH26红色细胞膜染色试剂盒 | Solarbio | D0030 |
| 免疫荧光 | OCT包埋剂 | SAKURA | 4583 |
| GFAP小鼠单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 3670 | |
| AQP4兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 59678 | |
| CD31山羊多克隆抗体 | R&D Systems | AF3628 | |
| NeuN兔单克隆抗体 | Abcam | ab177487 | |
| LYVE1兔多克隆抗体 | Abcam | ab14917 | |
| Western blot | 彩色PAGE凝胶快速制备试剂盒 | Yamei | PG112, |
| Immobilon-P PVDF膜 | Merck | IPVH00010 | |
| GFAP兔单克隆抗体 | Abcam | ab68428 | |
| Alix兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 92880 | |
| CD9兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 13174 | |
| HSP70兔单克隆抗体 | ABclonal | A21180 | |
| TSG101/VPS23兔多克隆抗体 | ABclonal | A2216 | |
| Tau兔单克隆抗体 | ABclonal | A23490 | |
| 磷酸化Tau-T205兔多克隆抗体 | ABclonal | AP0168 | |
| 磷酸化Tau-S404兔多克隆抗体 | ABclonal | AP0170 | |
| 磷酸化Tau-S396兔单克隆抗体 | ABclonal | AP1028 | |
| Bax兔单克隆抗体 | ABclonal | A19684 | |
| Bcl-2小鼠单克隆抗体 | ABclonal | A20777 | |
| Occludin兔单克隆抗体 | ABclonal | A24601 | |
| ZO-1小鼠单克隆抗体 | Thermo Fisher Scientific | 33-9100 | |
| β-肌动蛋白兔单克隆抗体 | ABclonal | AC026 | |
| 神经元凋亡检测 | TUNEL凋亡检测试剂盒 | absin | abs50033 |
| 尼氏染色 | 尼氏染色试剂盒 | Servicebio | G1036 |
| 示踪剂注射 | RITC-葡聚糖 | Sigma-Aldrich | R9379 |
| 荧光磁珠 | Invitrogen | F8813 | |
| MRI | 9.4 T磁共振成像扫描仪 | Bruker BioSpec 94/30 | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外星形胶质细胞活化与外泌体提取 | 亚铁血红素处理浓度(50 μm)、处理时间(48小时)、细胞密度(3×10^6/10cm dish)、外泌体超速离心参数(110,000 g,70分钟) 阅读提示:Methods: In vitro cell assays, Extraction and identification of exosomes |
| 体内ICH模型建立 | 胶原酶VII浓度(0.1 U/ul)和体积(0.5ul)、注射坐标(前囟后2.0mm,前0.5mm,深度3.5mm)、注射速率(0.2ul/min) 阅读提示:Methods: ICH modeling |
| 外泌体鼻内给药 | 给药时间点(ICH后1h、1d、2d)、外泌体剂量(108 exosomes/10ul)、溶剂(PBS) 阅读提示:Methods: Administration program |
| GLS功能评估 | 示踪剂类型(RITC-Dextran 25 mg/ml)、注射部位(基底节、小脑延髓池)、循环时间(50分钟)、磁珠剂量(5ul) 阅读提示:Methods: Tracer injection |
| TGN020干预 | TGN020剂量(100 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、给药时间(外泌体给药前30分钟)、溶剂(5% DMSO, 40% PEG300, 5% TWEEN-80, 50% saline) 阅读提示:Methods: Administration program |