脱氢二异丁香酚靶向PLK1-p53轴抑制乳腺癌细胞周期

Dehydrodiisoeugenol targets the PLK1-p53 axis to inhibit breast cancer cell cycle.

作者信息Lin Li, Yifan Zheng, Yongxia Yang, Senlin Shi, Shangjie Liu, Keying Huang, Luonan Qiu, Rongxin Zhang, Wenbin Huang, Yin Leng
PMID40093330
发布时间2025-02-28
DOI10.3389/fphar.2025.1545498

实验完整度

包含体外细胞实验(CCK-8、流式、Western blot)、分子对接、生物信息学分析和体内小鼠肿瘤模型,且明确进行了功能验证和机制验证。

主要模型

MDA-MB-231细胞 MCF-7细胞 4T1细胞 BALB/c小鼠皮下移植瘤模型

重点核对

细胞系类型:MDA-MB-231(三阴性)、MCF-7(雌激素受体阳性)、MCF-10A(正常乳腺上皮)、4T1(小鼠乳腺癌) DHIE处理浓度:体外实验NC、5μM、10μM处理组;IC50值(MDA-MB-231:14.98μM,MCF-7:15.96μM,MCF-10A:56.80μM) 体内给药方案:4周龄雌性BALB/c小鼠,皮下接种4T1细胞1×10^6,1周后腹腔注射,DHIE 40mg/kg,DOX 1.5mg/kg,隔天一次,持续2周,3周后处死 细胞周期同步化:血清饥饿24h后DHIE处理24h Western blot检测指标:PLK1、p53、CDK4、Ki-67、GAPDH 统计显著性:p<0.05,每组5只小鼠

摘要

背景:全球每年约有230万乳腺癌新发病例。乳腺癌已成为全球第一大常见癌症和女性死亡的主要原因。同时,晚期乳腺癌患者的化疗耐药仍是一个严峻挑战。草果(Alpinia Katsumadai Hayata, AKH)作为一种传统中草药,具有广泛的药理活性。相关研究发现AKH中的许多化合物具有抗乳腺癌活性。然而,AKH中抑制乳腺癌的主要活性成分及其作用机制仍值得探索。方法:在本研究中,基于LC-MS结合药物相似性和疾病富集分析,筛选出脱氢二异丁香酚(DHIE)作为AKH抗乳腺癌的主要活性成分。采用WGCNA、网络药理学、分子对接、转录组测序分析、免疫浸润分析和单细胞测序探讨DHIE对乳腺癌的作用机制。采用CCK-8、流式细胞术和Western blot在体外验证结果。通过构建皮下荷瘤小鼠模型,在体内验证药物疗效。结果:研究表明,DHIE和乳腺癌富集的核心基因靶点主要作用于乳腺癌组织中的上皮细胞,并通过影响PLK1-p53信号轴将乳腺癌细胞周期阻滞在G0/G1期,显著抑制乳腺癌生长。进一步分析表明,尽管DHIE对不同类型的乳腺癌细胞中p53的不同亚型具有相反的调控作用,但最终均导致细胞周期阻滞。此外,体内研究表明,DHIE可减少肿瘤负荷,显著降低肿瘤增殖相关标志物Ki-67的浸润水平,并抑制小鼠模型中PLK1的表达,与DOX联用时进一步增强。讨论:总之,我们的研究表明,AKH中的DHIE可能通过调节PLK1-p53信号轴,最终诱导细胞周期阻滞并抑制乳腺癌生长,这可能为乳腺癌提供新的治疗策略。然而,DHIE在不同乳腺癌亚型中调节p53的具体机制,以及与其他药物相比化疗联合的优势仍值得探索。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
草果抑制乳腺癌的主要活性成分是什么?其作用机制如何?
核心机制
DHIE通过抑制PLK1表达,进而下调突变型p53(MDA-MB-231)或上调野生型p53(MCF-7),最终导致CDK4表达降低,细胞周期阻滞于G0/G1期,从而抑制乳腺癌生长。
主要证据
体外实验显示DHIE抑制乳腺癌细胞增殖,流式细胞术证实G0/G1期阻滞;Western blot显示PLK1和CDK4下调,p53在不同细胞中分别下调和上调;分子对接显示DHIE与PLK1结合最稳定(-8.4 kcal/mol);体内实验显示DHIE减少肿瘤体积和重量,降低Ki-67和PLK1表达,与DOX联用效果增强。
研究意义
研究提示DHIE可作为治疗乳腺癌的候选药物,为临床治疗提供新策略,特别是与化疗药物联合可能具有协同作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

活性成分筛选

鉴定AKH中抗乳腺癌的主要活性成分

利用TCMSP数据库筛选AKH活性成分,结合LC-MS进行定性定量分析,并通过疾病富集分析确定DHIE为主要候选成分。

2

靶点预测与网络分析

预测DHIE的潜在靶点及其与乳腺癌的关联

通过TCMSP、CTD、PharmMapper和SwissTargetPrediction数据库收集DHIE靶点,与乳腺癌疾病靶点取交集,构建PPI网络并筛选核心基因。

3

体外抗增殖活性验证

验证DHIE对乳腺癌细胞增殖的抑制作用

使用CCK-8检测DHIE对MDA-MB-231、MCF-7和MCF-10A的细胞活力影响,并测定IC50。

4

细胞周期分析

探究DHIE对乳腺癌细胞周期的影响

通过流式细胞术检测DHIE处理后的细胞周期分布。

5

分子对接验证

验证DHIE与核心靶蛋白的结合能力

使用AutoDockTools-1.5.7进行分子对接,计算结合能。

6

机制验证

验证DHIE对PLK1-p53信号轴及下游CDK4的影响

通过Western blot检测DHIE处理后PLK1、p53和CDK4的蛋白表达变化。

7

体内抗肿瘤实验

评估DHIE单用及与DOX联用对小鼠肿瘤生长的影响

构建4T1皮下荷瘤模型,分组给药,测量肿瘤体积和重量,并通过免疫组化检测Ki-67和PLK1表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Vanquish超高效液相色谱系统ThermoFisher--
Orbitrap Q Exactive HF质谱仪Thermo Fisher--
Hypersil Gold色谱柱----
高糖DMEM培养基Thermo Fisher11965126
MCF-10A专用培养基PricellaCM-0525
脱氢二异丁香酚冻干粉GlpBioGC38184
CCK-8试剂盒GlpBioGK10001
细胞周期染色试剂盒MULTI SCIENCESCCS01
BCA蛋白浓度测定试剂盒BeyotimeP0012
5×上样缓冲液BeyotimeP0286
PAGE凝胶快速制备试剂盒EpizymePG110,
无蛋白快速封闭液EpizymePS108P
PLK1多克隆抗体proteintech10305-1-AP
Ki67多克隆抗体proteintech27309-1-AP
p53多克隆抗体proteintech10442-1-AP
CDK4多克隆抗体proteintech11026-1-AP
GAPDH多克隆抗体proteintech10494-1-AP
生物素标记山羊抗小鼠IgG(H+L)BeyotimeA0288
生物素标记山羊抗兔IgG(H+L)BeyotimeA0279
免疫组化试剂盒proteintechPK10006

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
活性成分筛选
LC-MS条件(流速、梯度、色谱柱)
阅读提示:Methods 2.3
细胞培养
细胞系来源、培养基成分、培养条件
阅读提示:Methods 2.11
药物处理
DHIE溶液的配制浓度(200mM)及处理浓度(5μM、10μM)
阅读提示:Methods 2.12
CCK-8检测
细胞密度、处理时间、IC50值
阅读提示:Methods 2.13及Results 3.5
细胞周期分析
血清饥饿时间、药物处理时间
阅读提示:Methods 2.14及Results 3.5
Western blot
抗体稀释比例、封闭时间、显色方法
阅读提示:Methods 2.16
动物实验
小鼠品系和周龄、细胞接种数量和部位、给药剂量和途径、时间、每组数量
阅读提示:Methods 2.17及Results 3.7
免疫组化
抗原修复条件、抗体稀释、DAB显色时间
阅读提示:Methods 2.19