MSC提取与MSC-EVs分离鉴定
获取并验证用于递送miR-124的细胞外囊泡
从大鼠股骨骨髓提取MSCs,培养第三代后收集培养基,通过超速离心分离MSC-EVs,并使用透射电镜观察形态,使用CD63-mcherry慢病毒标记MSC-EVs以追踪其体内分布。
MiR-124 Delivered by Extracellular Vesicles from Mesenchymal Stem Cell Exerts Neuroprotective Effects by Stabilizing the p62-Keap1-Nrf2 Pathway after Spinal Cord Injury in Rats.
包含体外细胞实验和体内大鼠SCI模型,涉及分子检测、细胞凋亡、氧化应激、行为学和组织学等,且对通路进行了功能验证。
原代大鼠皮层神经元 大鼠脊髓挫伤模型
SD大鼠,8周龄,220-230g,雌性 SCI造模:T9-T10椎板切除后,10g NYU撞击器从3cm高度自由落体撞击脊髓 体外神经元损伤:谷氨酸100μM处理30分钟 MSC-EVs尾静脉注射200μl 分组:Control、Glu、miR-sponge、EV、NC(体外);SCI、SCI+EV、SCI+EV-miR-124、SCI+EV-NC(体内)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证用于递送miR-124的细胞外囊泡
从大鼠股骨骨髓提取MSCs,培养第三代后收集培养基,通过超速离心分离MSC-EVs,并使用透射电镜观察形态,使用CD63-mcherry慢病毒标记MSC-EVs以追踪其体内分布。
建立体外神经元损伤模型以研究miR-124的作用
分离胎鼠大脑皮层神经元,使用谷氨酸处理诱导损伤,并通过慢病毒转染miR-124-sponge阻断miR-124功能或转染对照慢病毒。
评估miR-124对受损神经元中通路相关蛋白、氧化应激和凋亡的影响
使用Western blot检测p62、Keap1、Nrf2等蛋白水平,RT-qPCR检测HO-1和NqO1 mRNA水平,ROS测定和TUNEL染色分别评估氧化应激和凋亡。
在动物模型中验证过表达miR-124的MSC-EVs对神经修复和功能恢复的影响
建立大鼠脊髓挫伤模型,尾静脉注射过表达miR-124的MSC-EVs或对照,通过BBB评分、H&E染色、Nissl染色及WB检测评估功能恢复、组织修复、神经元存活和自噬相关蛋白。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| MSC细胞培养 | MSC完全培养基 | Procell | CM-R131 |
| 神经元分离 | 胰蛋白酶 | Beyotime | C0203 |
| 神经元培养 | 神经元培养基 | Procell | CM-R105 |
| 免疫荧光染色 | MAP2抗体 | Abcam | ab32454 |
| 慢病毒转染 | CD63-mcherry慢病毒 | Hanbio | -- |
| miR-124慢病毒 | Hanbio | -- | |
| miR-124-sponge慢病毒 | Hanbio | -- | |
| RNA提取 | RNAprep Pure微量提取试剂盒 | TianGen | DP420 |
| RT-qPCR | RT Plus试剂盒 | SparkJade | AG0304 |
| qPCR Mix | SparkJade | AH0104 | |
| ABI QuantStudio 6 Flex实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher | -- | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Solarbio | R0010 |
| 蛋白变性 | SDS上样缓冲液 | Solarbio | P1015 |
| Western blot转印 | PVDF膜 | Merck Millipore | IPVH00010 |
| Western blot抗体 | p62抗体 | ABclonal | A7758 |
| Keap1抗体 | ABclonal | A1820 | |
| Nrf2抗体 | ABclonal | A0674 | |
| LC3B抗体 | ABclonal | A7198 | |
| Lamin B1抗体 | ABclonal | A1910 | |
| BAX抗体 | Proteintech | 50599-2-Ig | |
| Bcl-2抗体 | Proteintech | 26593-1-AP | |
| Tuj1/β-Tubulin III抗体 | GeneTex | GTX130245 | |
| GAPDH抗体 | GeneTex | GTX100118 | |
| Western blot二抗 | HRP标记二抗 | Elabscience | E-AB-1003 |
| 蛋白成像 | Amersham Imager 600RGB凝胶成像系统 | GE Healthcare | -- |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | S0033S |
| 荧光显微镜 | 荧光显微镜 | Nikon | Eclipse |
| TUNEL染色 | 一步法TUNEL原位凋亡检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A320 |
| 组织切片 | 切片机 | Leica | RM2255 |
| H&E染色图像采集 | 显微镜 | Nikon | Eclipse |
| 图像分析 | Image Pro Plus 6.0图像分析软件 | Media Cybernetics | -- |
| 统计分析 | SPSS 19.0统计软件 | IBM | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 大鼠品系、性别、周龄、体重;麻醉剂量;SCI造模参数(撞击器重量、高度、脊髓节段) 阅读提示:Materials and Methods: Animals, SCI Models |
| 细胞培养与损伤 | 神经元来源(胎鼠皮层);培养条件(培养基、温度、CO2);谷氨酸损伤浓度和处理时间;神经元接种密度 阅读提示:Materials and Methods: Extraction, Culture, and Identification of Neurons; In Vitro Experimental Design |
| MSC-EVs分离 | MSC代数;离心参数(转速、时间、温度);过滤孔径;最终重悬体积 阅读提示:Materials and Methods: Extraction, Culture, and Identification of MSCs; Isolation of MSC-EVs |
| 体内递送 | MSC-EVs注射剂量和途径;注射时间;慢病毒转染效率 阅读提示:Materials and Methods: In Vivo Experimental Design; Transfection of Lentivirus |
| 检测指标 | BBB评分时间点和评分者;组织学处理和染色方法;WB检测的蛋白及内参;ROS和TUNEL检测步骤 阅读提示:Materials and Methods: Behavioral Assessment; Tissue Processing; H&E Staining; Nissl Staining; Western Blotting; ROS Assay; TUNEL Staining |