体外筛选二萜类化合物对 NLRP3 炎症小体的抑制作用
筛选能够抑制 NLRP3 炎症小体激活的天然二萜类化合物
使用 LPS 预刺激的 BMDMs,以尼日利亚霉素(nigericin)激活 NLRP3 炎症小体,评估多种二萜类化合物对 IL-1β 分泌的抑制作用
Rosthornin B alleviates inflammatory diseases via directly targeting NLRP3.
研究包含体外细胞实验(BMDMs、THP-1)、机制实验(免疫共沉淀、SPR、分子对接)以及多种体内动物模型(LPS 诱导的脓毒性休克、MSU 诱导的腹膜炎、DSS 诱导的结肠炎),并进行了功能验证和机制验证。
小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) 人单核细胞系 THP-1 HEK-293T 细胞(用于外源性相互作用研究) C57BL/6J 小鼠(LPS 诱导的脓毒性休克、MSU 诱导的腹膜炎、DSS 诱导的结肠炎模型)
Ros B 对 NLRP3 炎症小体抑制的 IC50 值为 0.39 μM Ros B 直接结合 NLRP3,KD 值为 5.491 μM(SPR 检测) Ros B 抑制 NEK7-NLRP3 相互作用,但不影响 NLRP3-NLRP3 相互作用 在 BMDMs 中,Ros B 剂量依赖性地抑制 nigericin、ATP、MSU 和胞内 LPS 诱导的 caspase-1 裂解和 IL-1β 分泌 体内实验中,Ros B 剂量为 10 mg/kg(腹腔注射),在 LPS 诱导的脓毒性休克、MSU 诱导的腹膜炎和 DSS 诱导的结肠炎模型中均显示治疗效果
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选能够抑制 NLRP3 炎症小体激活的天然二萜类化合物
使用 LPS 预刺激的 BMDMs,以尼日利亚霉素(nigericin)激活 NLRP3 炎症小体,评估多种二萜类化合物对 IL-1β 分泌的抑制作用
验证 Ros B 是否特异性抑制 NLRP3 炎症小体,而不是其他炎症小体或炎症通路
在 BMDMs 和 THP-1 细胞中,用不同 NLRP3 刺激物(nigericin、ATP、MSU)和 AIM2 炎症小体刺激物 poly(A:T) 处理,检测 Ros B 对 caspase-1 裂解和 IL-1β 分泌的影响;同时检测 Ros B 对非炎症小体依赖的 TNF-α 和 IL-6 产生的影响
确定 Ros B 是否通过影响 NLRP3 炎症小体组装(特别是 NEK7-NLRP3 相互作用)发挥抑制作用
在 BMDMs 中通过免疫共沉淀检测 Ros B 对 NEK7-NLRP3 和 NLRP3-ASC 相互作用的影响;在 HEK-293T 细胞中检测 Ros B 对外源性 NEK7-NLRP3 和 NLRP3-NLRP3 相互作用的影响
验证 Ros B 是否直接与 NLRP3 蛋白结合
使用表面等离子体共振(SPR)检测 Ros B 与重组人 NLRP3 蛋白的结合亲和力;使用 AutoDock4 进行分子对接预测结合位点
评估 Ros B 在体内对 NLRP3 驱动的脓毒性休克是否具有治疗效果
小鼠腹腔注射 Ros B (10 mg/kg) 后 50 分钟,注射 LPS (20 mg/kg) 诱导脓毒性休克,检测血清 IL-1β 和 TNF-α 水平,并观察生存率
评估 Ros B 在 MSU 诱导的腹膜炎模型中是否减少炎症反应
小鼠腹腔注射 Ros B (10 mg/kg) 后 50 分钟,注射 MSU (100 mg/kg) 诱导腹膜炎,6 小时后收集腹腔灌洗液,检测 IL-1β 水平和中性粒细胞浸润
评估 Ros B 对 DSS 诱导的结肠炎是否具有治疗作用
小鼠饮用含 3% DSS 的水 7 天诱导结肠炎,每天腹腔注射 Ros B (10 mg/kg),记录体重和疾病活动指数,评估结肠长度、组织学损伤、caspase-1 和 IL-1β 水平以及 Th17 细胞比例
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 试剂获取 | Rosthornin B | Desite | -- |
| 二萜类化合物 | TargetMol | -- | |
| 细胞培养 | 巨噬细胞集落刺激因子 | Novoprotein | CB34 |
| 脂多糖 | InvivoGen | tlrl-eklps | |
| poly (A:T) | InvivoGen | tlrl-patn | |
| Pam3CSK4 | InvivoGen | tlrl-pms | |
| 免疫沉淀 | 蛋白 G 琼脂糖 | Millipore | -- |
| 细胞培养 | 尼日利亚霉素 | Sigma | N7143 |
| 尿酸单钠 | Sigma | U0881 | |
| 脂多糖 | Sigma | L2630 | |
| 三磷酸腺苷 | Sigma | A2383 | |
| 佛波酯 | Sigma | 79346 | |
| 免疫印迹 | 抗小鼠 NLRP3 抗体 | Adipogen | AG-20B-0014 |
| 抗小鼠 caspase-1 抗体 | Adipogen | AG-20B-0042 | |
| 抗 β-actin 抗体 | Abmart | P30002 | |
| 抗 NEK7 抗体 | Abcam | ab133514 | |
| 抗小鼠 IL-1β 抗体 | Cell Signaling Technology | 12507S | |
| 抗小鼠 ASC 抗体 | Cell Signaling Technology | 67824S | |
| 抗人 caspase-1 抗体 | Cell Signaling Technology | 2225 | |
| ELISA | IL-6 ELISA 试剂盒 | R&D | DY406 |
| IL-1β ELISA 试剂盒 | R&D | DY401 | |
| TNF-α ELISA 试剂盒 | Invitrogen | 88-7324-22 | |
| TNF-α ELISA 试剂盒(人) | R&D | DY201 | |
| LDH 活性检测 | LDH 检测试剂盒 | Promega | G1780 |
| 细胞活力检测 | CCK-8 试剂 | -- | -- |
| 共聚焦显微镜 | MitoTracker | -- | -- |
| MitoSOX | -- | -- | |
| 盖玻片 | Biosharp | -- | |
| SPR | BIAcore 3000 | GE Healthcare | -- |
| 流式细胞术 | 抗 CD16/32 抗体 | BioLegend | -- |
| 细胞刺激混合物 | eBioscience | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与活化 | BMDMs 培养条件(M-CSF 浓度 50 ng/mL,5-7 天);LPS 预刺激浓度和时间(50 ng/mL,3 小时);Ros B 处理时间(30 分钟);NLRP3 刺激物浓度和时间(nigericin 10 μM、ATP 5 mM、MSU 300 μg/mL);THP-1 分化条件(PMA 400 ng/mL) 阅读提示:Materials and Methods 2.3 Cell culture and activation procedures |
| 免疫印迹 | 抗体信息(anti-NLRP3, anti-caspase-1 等);蛋白分离和转移条件(SDS-PAGE 电泳、PVDF 膜、封闭等) 阅读提示:Materials and Methods 2.4 Immunoblotting |
| 免疫沉淀 | 细胞裂解液体积(300 μL NP-40 buffer);离心条件(6080 × g,10 分钟);抗体比例(1:100);孵育条件(4°C 过夜) 阅读提示:Materials and Methods 2.5 Immunoprecipitation |
| 共聚焦显微镜 | 细胞密度(2×10^5 cells/mL);LPS 浓度(100 ng/mL);Ros B 浓度(2 μM);MitoTracker 浓度(200 nM);MitoSOX 浓度(1 μM);nigericin 浓度(10 μM);固定方法(4% PFA) 阅读提示:Materials and Methods 2.6 Confocal microscopy |
| 体内实验 | 小鼠品系、性别、年龄(C57BL/6J,雄性,8-10 周龄);Ros B 剂量(10 mg/kg,腹腔注射);LPS 剂量(20 mg/kg);MSU 剂量(100 mg/kg);DSS 浓度(3% w/v,7 天);每组动物数 阅读提示:Materials and Methods 2.12-2.14;Figure legends 5 and 6 |