特发性肺纤维化中单核细胞来源肺泡巨噬细胞的多组学分析

Multiomic analysis of monocyte-derived alveolar macrophages in idiopathic pulmonary fibrosis.

作者信息Miaomiao Zhang, Jinghao Zhang, Haisheng Hu, Yuan Zhou, ZhiWei Lin, Hui Jing, Baoqing Sun
PMID38937806
发布时间2024-06-27
DOI10.1186/s12967-024-05398-y

实验完整度

包含scRNAseq、bulkseq、scATACseq多组学分析,以及细胞实验(THP1、HELF)和体外共培养、Western blot、qPCR等验证。

主要模型

IPF患者肺组织样本(scRNAseq、bulkseq、scATACseq) THP1细胞系诱导的M2巨噬细胞 HELF细胞系诱导的纤维化模型 体外共培养体系(M2巨噬细胞与HELF)

重点核对

IPF患者样本的scRNAseq、bulkseq、scATACseq数据 THP1细胞以150 nM PMA处理24小时分化,并加IL4和IL13各20 ng/ml刺激72小时 HELF细胞以5 ng/ml TGFβ1处理24小时 CXCR4拮抗剂AMD3100和CXCR4 siRNA处理 ERK通路抑制剂U0126和PD98059以及CXCR4激动剂NUCC-390处理

摘要

背景:单核细胞来源的肺泡巨噬细胞(Mo_AMs)日益被认为是特发性肺纤维化(IPF)的潜在致病因素。虽然单细胞RNA测序(scRNAseq)分析在Mo_AMs的转录组谱分析中已被证明有价值,但多组学的整合分析可能为理解这些细胞群体提供额外的维度。方法:我们对来自IPF的116个scRNAseq、119个bulkseq和5个scATACseq肺组织样本进行了多组学分析。我们构建了一个大规模的IPF scRNAseq图谱,并进行了Monocle 2/3以及Cellchat分析,以探索Mo_AMs的发育路径和细胞间通讯。我们还报告了Mo_AMs与组织驻留肺泡巨噬细胞(TRMs)在代谢、组织修复和吞噬作用方面的差异。为了确定Mo_AMs是否影响肺功能,我们将来自bulkseq数据集的临床表型(FVC%pred)投射到scRNAseq图谱上。最后,我们使用scATACseq来揭示Mo_AMs的上游调控机制并确定关键驱动因素。结果:我们确定了三个Mo_AMs簇,轨迹分析进一步验证了这些簇的起源。此外,通过Cellchat分析,发现CXCL12/CXCR4轴通过激活Mo_AMs中的ERK通路参与Mo_AMs与成纤维细胞之间相互作用的分子基础。SPP1_RecMacs(RecMacs,募集巨噬细胞)在低FVC组中高于高FVC组。具体来说,与TRMs相比,Mo_AMs的脂质和能量代谢以及组织修复功能高于TRMs。但TRMs可能具有比TRMs更高的吞噬作用水平。SPIB(PU.1)、JUNB、JUND、BACH2、FOSL2和SMARCC1与Mo_AMs的开放染色质关联强于TRMs。在SPP1_RecMacs和TRMs中均观察到APOE的显著上调表达和深度染色质可及性。结论:通过轨迹分析,证实SPP1_RecMacs来源于单核细胞。此外,Mo_AMs可能通过与成纤维细胞的通讯影响FVC%pred并加重肺纤维化。此外,Mo_AMs和TRMs之间独特的转录调控因子提示它们可能依赖不同的上游调控机制。总之,这项工作提供了Mo_AMs如何控制IPF的全局概览,也有助于确定更好的方法和干预治疗。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
单核细胞来源的肺泡巨噬细胞(Mo_AMs)在特发性肺纤维化(IPF)中的作用和机制是什么?
核心机制
Mo_AMs通过CXCL12/CXCR4轴与成纤维细胞相互作用,激活Mo_AMs中的MEK/ERK通路,促进M2巨噬细胞趋化和成纤维细胞活化,从而加重肺纤维化。
主要证据
多组学分析显示SPP1_RecMacs来源于单核细胞,低FVC组中比例更高;体外实验证实CXCL12/CXCR4轴通过MEK/ERK通路促进M2趋化和成纤维细胞活化。
研究意义
为IPF的机制提供了全局概览,提示抑制MEK/ERK通路可能成为IPF的潜在治疗策略,并有助于确定更好的干预方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

多组学图谱构建

构建IPF肺组织的单细胞转录组图谱,并整合bulk和表观遗传数据

对116个scRNAseq、119个bulkseq和5个scATACseq样本进行整合分析,识别主要细胞类型和Mo_AMs亚群。

2

Mo_AMs轨迹分析

确定SPP1_RecMacs的细胞起源

使用Slingshot、Monocle 2和Monocle 3进行拟时间分析,推断CD14+单核细胞向Mo_AMs的分化轨迹。

3

细胞间通讯分析

揭示Mo_AMs与成纤维细胞之间的相互作用

使用CellChat分析配体-受体相互作用,发现CXCL12/CXCR4轴。

4

临床表型关联分析

确定与肺功能相关的Mo_AMs亚群

使用Scissor将bulkseq的FVC%pred与scRNAseq整合,识别与FVC%pred相关的Mo_AMs亚群。

5

体外细胞实验验证

验证CXCL12/CXCR4轴在Mo_AMs与成纤维细胞相互作用中的作用

建立HELF纤维化模型和THP1来源的M2巨噬细胞,进行共培养、转染、趋化实验,并用Western blot、qPCR、免疫荧光检测相关蛋白表达。

6

表观遗传调控分析

鉴定调控Mo_AMs分化的转录因子和染色质可及性变化

处理scATACseq数据,进行足迹分析、peak calling、motif富集和轨迹分析,鉴定关键转录因子。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco12491-015
RPMI 1640培养基ProcellPM150110
胎牛血清Gibco10099-141
HELF细胞FenghuiCL0676
THP1细胞PricellaCL-0233
转化生长因子β1ProteintechHZ-1011
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯----
白细胞介素4----
白细胞介素13----
AMD3100MCEHY-10046
吡非尼酮MCEHY-B0673
U0126MCEHY-12031
PD98059MCEHY-12028
NUCC-390MCEHY-111793
CXCL12抗体Proteintech17042-1-AP
CXCR4抗体Proteintech60042-1-Ig
磷酸化MEK抗体Proteintech28930-1-AP
MEK抗体Proteintech11049-1-AP
磷酸化ERK抗体Proteintech28733-1-AP
ERK抗体Proteintech51068-1-AP
α-平滑肌肌动蛋白抗体Proteintech67735-1-Ig
I型胶原蛋白抗体Proteintech67288-1-Ig
二抗(兔)ProteintechSA00001-2
二抗(小鼠)ProteintechSA00001-2
RNA提取试剂盒ServicebioG3640-50T
cDNA合成试剂盒ServicebioG3333-50
SYBR Green PCR预混液ServicebioG3326-01
α-平滑肌肌动蛋白抗体Proteintech14395-1-AP
I型胶原蛋白抗体Proteintech67288-1-Ig
抗小鼠二抗ProteintechSA00009-1
抗兔二抗ProteintechSA00009-2
人IL-10 ELISA试剂盒Biotech ShanghaiEH10245S
人CCL18/PARC ELISA试剂盒Biotech ShanghaiEH10070M
人MCP-1/CCL2 ELISA试剂盒Biotech ShanghaiEH10335S
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher ScientificL3000015
CD206抗体BD Pharmingen555954
Transwell小室Corning--
Transwell小室(8 μm孔径)Corning--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
多组学数据集
scRNAseq数据集GSE 136831、GSE 122960、GSE 135893、GSE 128033、GSE 132771;bulkseq数据集GSE 32537;scATACseq数据集GSE 214085
阅读提示:Methods: Dataset availability
细胞培养
HELF细胞培养于DMEM+10%FBS;THP1细胞培养于RPMI 1640+10%FBS
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry
纤维化模型
HELF细胞用5 ng/ml TGFβ1处理24小时
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry
M2巨噬细胞极化
THP1细胞用150 nM PMA处理24小时,再用IL4 (20 ng/ml)和IL13 (20 ng/ml)处理72小时
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry
共培养
M2 (1×10^5) cells in inner insert, fibroblasts (1×10^5) in well bottom, 0.4 μm pore transwell
阅读提示:Methods: Cell culture and flow cytometry
CXCR4敲低
siRNA序列 (GGCAAUGGAUUGGUCAUCCUGGUCA) 转染M2巨噬细胞
阅读提示:Methods: Interference transfection and transwell migration assays
Western blot
抗体及稀释比例:CXCL12 (1:3000), CXCR4 (1:2000), p-MEK (1:2000), MEK (1:10000), p-ERK (1:5000), ERK (1:10000), α-SMA (未明确), Collagen I (1:10000)
阅读提示:Methods: Western blot
migration assay
M2 (5×10^5) cells in upper chamber, conditioned media from fibrosis model in lower chamber, 8 μm pore transwell, 24 h incubation
阅读提示:Methods: Interference transfection and transwell migration assays