肌球蛋白1b在胶质母细胞瘤中的异常过表达通过VEGF-myc-myosin 1b-Piezo1轴促进血管生成

Aberrant overexpression of myosin 1b in glioblastoma promotes angiogenesis via VEGF-myc-myosin 1b-Piezo1 axis.

作者信息Weifeng Lv, Fan Yang, Zhengmao Ge, Lele Xin, Lingxue Zhang, Yaohong Zhai, Xian Liu, Qingdong Guo, Xinggang Mao, Peng Luo, Lei Zhang, Xiaofan Jiang, Yanyu Zhang
PMID39307302
发布时间2024-11
DOI10.1016/j.jbc.2024.107807

实验完整度

包含体外细胞实验、患者样本和动物模型等证据层级,并明确功能验证和机制验证(如敲低/过表达、类器官、免疫染色、钙成像)。

主要模型

人脐静脉内皮细胞系HUVEC 小鼠脑内皮细胞系bEnd.3 HEK293T细胞 RCAS诱导的小鼠GBM模型

重点核对

VEGFA处理浓度25 ng/ml,处理时间HUVEC 48h,bEnd.3 24h Yoda1浓度HUVEC 2μM,bEnd.3 4μM;Dooku1浓度4μM和2μM 细胞系来源:HUVEC和bEnd.3由陕西师范大学提供;HEK293T由第四军医大学提供 小鼠模型:雌性C57BL6 Gtva; Arf-/-小鼠,RCAS-PDGFB-HA细胞立体定向注射105细胞 患者样本:西京医院手术切除GBM肿瘤及邻近正常组织

摘要

胶质母细胞瘤(GBM)是最具侵袭性的颅内恶性肿瘤,预后差。血管生成增强是GBM的重要标志,表现为广泛的微血管增殖和异常血管。在此,我们揭示了肌球蛋白1b在GBM血管生成和血管异常中的关键作用。与配对的非恶性脑组织相比,GBM内皮细胞(ECs)中肌球蛋白1b上调。在我们的研究中,我们发现肌球蛋白1b促进人/小鼠脑内皮细胞的迁移、增殖和血管生成。我们还发现,ECs中肌球蛋白1b的表达可通过myc受血管内皮生长因子(VEGF)信号调控。此外,肌球蛋白1b通过Piezo1增强Ca2+内流促进血管生成,其中VEGF可以是触发因素。总之,我们的结果确定肌球蛋白1b是通过机械敏感离子通道组分1(Piezo1)促进血管生成的关键介质,并提示VEGF/myc信号通路可能驱动GBM ECs中肌球蛋白1b过表达的变化。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肌球蛋白1b在GBM内皮细胞中的异常高表达是否影响血管生成及血管完整性,并通过何种机制发挥作用。
核心机制
VEGF信号通过转录因子myc上调内皮细胞中肌球蛋白1b表达,肌球蛋白1b通过Piezo1诱导细胞内钙内流,从而促进血管生成。
主要证据
在HUVEC和bEnd.3细胞中通过过表达/敲低肌球蛋白1b验证其促进增殖、迁移和血管生成;VEGFA刺激上调myc和肌球蛋白1b,敲低myc可消除VEGFA效应;荧光素酶报告和ChIP实验证明myc直接结合肌球蛋白1b启动子;3D发芽实验表明Piezo1激动剂/拮抗剂和钙缺乏影响肌球蛋白1b促血管生成作用;临床及小鼠样本中肌球蛋白1b和Piezo1表达上调。
研究意义
本研究首次探索肌球蛋白1b与GBM血管的关系,为GBM的治疗干预提供了潜在的靶点。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
内皮细胞培养基ScienCell1001
胎牛血清ScienCell0025
内皮细胞生长补充剂ScienCell1052
青霉素/链霉素溶液ScienCell0503
DMEM培养基Gibco11995073
胎牛血清Thermo Fisher Scientific10099141C
抗生素-抗真菌溶液Thermo Fisher Scientific15240062
OCT包埋剂Sakura Tissue-Tek4583
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher Scientific11668019
CCK-8试剂盒Apexbiok1018
酶标仪HitachiSH-9000
硝酸纤维素膜----
增强化学发光系统Tanon Science and TechnologyTanon
抗VE-钙黏蛋白抗体Abcamab205336
抗E-钙黏蛋白抗体Cell Signaling Technology3195T
抗MMP1抗体Abcamab134184
抗MMP9抗体Abcamab76003
抗MMP14抗体Abcamab51074
抗ANXA1抗体Cell Signaling Technology32934T
抗ANXA3抗体Abcamab127924
抗ANXA5抗体Cell Signaling Technology8555S
抗ANXA6抗体Cell Signaling Technology29015S
抗ANXA10抗体Abcamab213656
抗连接蛋白43抗体Cell Signaling Technology83469T
抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology5174S
抗肌球蛋白1b抗体AbcamEPR16223
抗myc抗体Cell Signaling Technology9402S
抗Piezo1抗体Proteintech15939-1-AP
抗肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology8457S
抗微管蛋白抗体Sigma-AldrichT3526
HRP标记抗兔IgGCell Signaling Technology7074
RNAiso Plus试剂Takara Bio9109
一步法SYBR PrimeScript RT-PCR试剂盒Takara BioRR820A
热循环仪Bio-RadC1000
DAPI染色液Abcamab228549
冷冻切片机Leica--
显微镜ZeissAxio
抗CD31抗体Thermo Fisher ScientificMA3105
山羊抗叙利亚仓鼠Alexa 568二抗Abcamab175716
山羊抗叙利亚仓鼠Alexa 488二抗Abcamab173003
山羊抗兔Alexa 594二抗Abcamab150080
驴抗兔Alexa 488二抗Abcamab150073
Transwell小室BD bioscience3422
ECM胶R&D Systems3536-005-02
荧光微球Sigma Aldrich234,340
细胞内钙含量检测试剂盒Beyotimes1603s
Yoda1Sigma-AldrichSML1558-5
Dooku1Sigma-AldrichSML2397
二甲基亚砜Sigma-AldrichD8418
血管内皮生长因子AMCEHY-P7110
血管内皮生长因子AMCEHY-P70638
AggreWell400微孔培养板STEMCELL34,425
大鼠尾I型胶原Corning354,236
共聚焦显微镜LeicaTCS
无钙DMEMGibco21,068
DMEM培养基Gibco11960
荧光素酶检测试剂盒Guangzhou FulengenLF031
Hank's平衡盐溶液PricellaPB180123
Fura 2/AM----
荧光酶标仪TecanSpark
H&E染色试剂盒BeyotimeC0105S
切片扫描仪OlympusSlideview
SimpleChIP酶法染色质免疫沉淀试剂盒Cell Signaling Technology9003
兔抗myc抗体Cell Signaling Technology9402S
小鼠IgGMillipore12-371B
血管生成检测试剂盒AbcamAB204726

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源:HUVEC和bEnd.3由陕西师范大学提供,HEK293T由第四军医大学提供;培养基及添加物:内皮细胞培养基(ScienCell 1001)含5%FBS、1%内皮生长补充剂、1%青霉素/链霉素;HEK293T用DMEM(Gibco 11995073)含10%FBS和1%抗生素-抗真菌溶液。
阅读提示:参见Experimental procedures中的Cell lines and cell culture
动物模型
小鼠品系:C57BL6 Gtva; Arf-/-;性别:雌性;年龄:6-8周;注射细胞:RCAS-PDGFB-HA(DF-1细胞)105个;对照组注射PBS;观察终点:症状出现或15周;麻醉:氯胺酮75 mg/kg和甲苯噻嗪10 mg/kg。
阅读提示:参见Experimental procedures中的Animals, patient tissue samples, and the preparation
药物处理
VEGFA浓度25 ng/ml,处理时间HUVEC 48h,bEnd.3 24h;Yoda1浓度2μM(HUVEC)和4μM(bEnd.3);Dooku1浓度4μM(HUVEC)和2μM(bEnd.3);处理时间24h。
阅读提示:参见Figure 3、Figure 5及Intracellular calcium content detection部分
细胞功能实验
伤口愈合实验:2×10^5细胞/孔接种6孔板,划痕后培养时间:敲低组24h,过表达组12h;Transwell迁移实验:4×10^4细胞,培养36h;CCK-8:1000细胞/孔,加10μl CCK-8,孵育3h,测490nm。
阅读提示:参见Wound-healing assay、Transwell migration assay和Cell proliferation assay部分
血管生成实验
3D发芽实验:1×10^5细胞形成球体,培养2周;胶原浓度3 mg/ml;处理VEGFA 25 ng/ml,Yoda1/Dooku1浓度如前;培养24h。无钙实验使用无钙DMEM(21068)和常规DMEM(11960),无FBS,培养16h。管形成实验:96孔板,ECM胶,细胞培养18h。
阅读提示:参见In vitro 3D spheroid cultivation and sprouting angiogenesis assay和Tube formation assay部分
钙检测
细胞内钙检测:细胞密度60%时加药处理24h;Fura 2/AM测量:2.5μM Fura 2/AM负载45min,激发340/380nm,发射492nm,每18秒记录。
阅读提示:参见Intracellular calcium content detection和Fura 2/AM Ca2+ real time measurement部分
转录调控验证
荧光素酶报告:HEK293T细胞共转染myc和pGL3.0-pMyosin1b-Luc,48h后检测;ChIP:甲醛交联10min,微球菌核酸酶消化20min,抗体:anti-myc(9402S)和IgG阴性对照。
阅读提示:参见Luciferase reporter assay和ChIP assay部分