工程化外泌体通过声动力学逆转前列腺癌免疫抑制微环境

Sonodynamical reversion of immunosuppressive microenvironment in prostate cancer via engineered exosomes.

作者信息Dingyi Wang, Zhuo Wan, Qian Yang, Jianmei Chen, Yunnan Liu, Fan Lu, Jie Tang
PMID35236203
发布时间2022-12
DOI10.1080/10717544.2022.2044937

实验完整度

包含体外细胞实验(DC2.4、RAW264.7、RM-1)、体内小鼠肿瘤模型及多种免疫检测(流式、免疫荧光、qPCR),并进行了功能验证和机制验证。

主要模型

RM-1小鼠前列腺癌皮下移植瘤模型(C57BL/6小鼠) DC2.4树突状细胞系 RAW264.7巨噬细胞系 HEK293T细胞来源外泌体

重点核对

工程化外泌体的构建与表征(粒径、标志物、药物负载率) 体外超声参数(浓度109 particles/mL,强度0.1 W/cm2,频率1 MHz,20%占空比,5 min) 体内治疗剂量与方案(2×109 particles/kg,瘤内注射三次,间隔两天,超声2.0 W/cm2) 肿瘤生长抑制和免疫微环境评估(DC成熟、T细胞浸润、巨噬细胞极化)

摘要

前列腺癌(PCa)由于肿瘤免疫抑制微环境,对常规免疫治疗反应不佳。在此,我们描述了一种基于超声的药物递送策略,通过封装声敏剂二氢卟吩e6(Ce6)和免疫佐剂R848的外泌体(即ExoCe6+R848)来激发强效的抗肿瘤免疫。ExoCe6+R848通过将Ce6和R848与HEK 293T细胞来源的外泌体简单共孵育构建而成。负载Ce6和R848后,外泌体的特性未受影响,且瘤内注射后外泌体在肿瘤部位蓄积。体外和体内实验表明,当ExoCe6+R848被树突状细胞(DCs)吞噬后,超声照射增强了R848介导的DCs成熟,表现为CD80和CD86表达上调。此外,这些工程化外泌体与超声照射协同作用,可将巨噬细胞从免疫抑制的M2样表型重编程为抗肿瘤的M1样表型,进一步激活效应T细胞并逆转免疫抑制微环境。外泌体递送策略不仅为克服Ce6和R848全身给药的副作用提供了范例,而且为癌症免疫治疗提供了一种有效的联合方案。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何通过局部递送声敏剂和免疫佐剂,激活抗肿瘤免疫并逆转前列腺癌的免疫抑制微环境?
核心机制
ExoCe6+R848在超声照射下产生ROS,上调DC表面Hsp70,促进DC成熟(CD80/CD86),同时将巨噬细胞从M2极化为M1,增强效应T细胞浸润并减少Treg,从而逆转免疫抑制微环境。
主要证据
体外实验显示ExoCe6+R848+US显著增强DC成熟和M1极化;体内实验显示该组合显著抑制肿瘤生长,增加肿瘤浸润CD8+ T细胞(27.27%),降低Treg比例(0.11倍),并上调促炎因子(如Il-1β、Ifn-γ)。
研究意义
该外泌体递送策略为克服Ce6和R848全身给药的副作用提供了范例,并提出了一种有效的联合免疫治疗方案,有望临床转化。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建与表征ExoCe6+R848

制备负载Ce6和R848的外泌体,并验证其物理特性和药物负载效率。

通过共孵育法将Ce6和R848装载到HEK293T细胞来源的外泌体中,利用透射电镜、粒径分析、Western blot和紫外-可见光谱表征外泌体形态、粒径、标志物表达和药物负载率。

2

外泌体体内分布与注射途径优化

比较尾静脉和瘤内注射的外泌体在肿瘤及主要器官的分布,选择最佳给药途径。

用DiR/DiI标记外泌体,通过尾静脉或瘤内注射至荷瘤小鼠,进行活体荧光成像和共聚焦显微镜观察;同时用cel-miR54负载外泌体,通过qPCR分析其在各组织的分布。

3

体外细胞水平验证免疫激活效应

评估ExoCe6+R848联合超声对DC成熟和巨噬细胞极化的影响。

用不同处理(PBS、ExoCtrl、ExoR848、ExoCe6+US、ExoR848+Ce6+US)处理DC2.4和RAW264.7细胞,检测ROS生成、Hsp70表达、DC表面共刺激分子(CD80/CD86)表达,以及M1/M2相关基因表达。

4

体内抗肿瘤疗效评估

评估ExoCe6+R848联合超声对PCa移植瘤生长的抑制作用。

在RM-1细胞皮下接种的C57BL/6小鼠模型中,当肿瘤体积达30 mm3时,分组(PBS、ExoCtrl、ExoR848、ExoCe6+US、ExoR848+Ce6+US)进行瘤内注射和超声照射,记录肿瘤体积和体重变化。

5

肿瘤微环境免疫分析

分析治疗后的肿瘤微环境免疫细胞浸润和细胞因子水平变化。

通过流式细胞术、免疫荧光和qPCR检测肿瘤组织中成熟DC(CD80+CD86+)、CD8+ T细胞、Treg(CD4+Foxp3+)、M1/M2巨噬细胞比例以及炎症因子(Il-10、Tgf-β、Ifn-γ等)表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
二氢卟吩e6Cayman Chemical--
雷西莫特(R848)MedChemExpress--
透射电子显微镜JEOL Ltd.JEM2000EX
纳米粒度分析仪----
Nanodrop-2000分光光度计Thermo ScientificNanodrop-2000
RIPA裂解液Beyotime Biotechnology--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo--
抗GM130抗体Proteintech11308-1-AP
抗TSG101抗体Abcamab83
抗CD9抗体Abcamab92726
抗GAPDH抗体BBI Life SciencesD110016-0100
抗Hsp70抗体Abcamab2787
抗兔二抗CST7074
抗鼠二抗CST7076
DiI/DiR染料Invitrogen--
Hoechst 33342染色液Beyotime Biotechnology--
尼康A1共聚焦显微镜NikonA1
CCK-8试剂盒CoolaberSK2060
MULTISKAN MK3酶标仪Thermo Fisher ScientificMULTISKAN MK3
二氢乙啶(DHE)Beyotime Biotechnology--
FACS Canto II流式细胞仪BD BiosciencesFACS Canto II
Trizol试剂Invitrogen--
PrimeScript第一链cDNA合成试剂盒Takara--
miRcute第一链cDNA合成试剂盒Tiangen Biotech--
PrimeScript RT预混液Roche--
miRcute miRNA qPCR试剂盒Roche--
抗CD11c兔抗体ServicebioGB11059
抗CD3兔抗体ServicebioGB130140
抗CD4兔抗体ServicebioGB130642
抗CD8兔抗体ServicebioGB13014
抗Foxp3大鼠抗体ServicebioGB13445
抗F4/80兔抗体ServicebioGB11027
抗CD206兔抗体ServicebioGB13438
抗CD86兔抗体ServicebioGB13585
HRP标记山羊抗兔IgGServicebioGB23303
CY5标记山羊抗兔IgGServicebioGB27303
HRP标记山羊抗大鼠IgGServicebioGB23302
DAPI染色液ServicebioG1012
APC标记抗小鼠CD11c抗体ProteintechN418
FITC标记抗小鼠CD3抗体Proteintech145-2C11
PerCP标记抗小鼠CD4抗体BiolegendGK1.5
APC标记抗小鼠CD8抗体Proteintech53-6.7
FITC标记抗小鼠F4/80抗体Abcamab60343
APC标记抗小鼠CD206抗体BiolegendC068C2
PerCP标记抗小鼠CD86抗体BiolegendGL-1
APC标记抗小鼠Foxp3抗体Proteintech3G3
固定破膜试剂盒Multi Sciences Biotech--
CytoFLEX流式细胞仪Beckman CoulterCytoFLEX
GraphPad Prism 8.0软件GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
外泌体制备与表征
外泌体来源(HEK293T),分离方法(超速离心),药物浓度和孵育时间,负载率
阅读提示:Materials and methods: Exosome isolation; Preparation and characterization of ExoR848+Ce6; Loading capacity of exosomes
体外细胞实验
细胞系(DC2.4, RAW264.7, RM-1),外泌体浓度,超声参数(强度、频率、占空比、时间),处理时间
阅读提示:Materials and methods: Optimal parameters for SDT; ROS detection; Figure S3 and S4
动物模型建立
小鼠品系、性别、周龄,细胞接种数量和途径
阅读提示:Materials and methods: Animal tumor model; Figure 4(A)
体内治疗
治疗分组,外泌体剂量和注射次数,超声参数,肿瘤测量时间点
阅读提示:Materials and methods: In vivo tumor treatment; Figure 4
免疫分析
肿瘤取材时间,流式抗体和染色方案,免疫荧光抗体,qPCR引物和条件
阅读提示:Materials and methods: Flow cytometry analysis; H&E staining and immunofluorescence; Real-time qPCR; Supplementary Table 1