建立慢性高血压大鼠模型
模拟慢性高血压状态,并评估其认知功能。
采用两肾两夹法建立RHRSP模型,测量收缩压,并通过Morris水迷宫评估认知功能。
TAK1 Improves Cognitive Function via Suppressing RIPK1-Driven Neuronal Apoptosis and Necroptosis in Rats with Chronic Hypertension.
包含体内动物模型(RHRSP、sham)、AAV介导的基因敲低/过表达、行为学测试、蛋白和免疫荧光检测,及体外HT-22细胞实验,多层级验证功能与机制。
易卒中型肾血管性高血压大鼠(RHRSP) 假手术对照大鼠(sham-operated rats) 小鼠海马神经元HT-22细胞 原代大鼠神经元(用于验证siRNA)
TAK1的表达水平 磷酸化RIPK1(Ser166)的水平 RIPK1抑制剂Nec-1s的处理 TNFα的诱导处理 AAV注射的剂量和体积
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟慢性高血压状态,并评估其认知功能。
采用两肾两夹法建立RHRSP模型,测量收缩压,并通过Morris水迷宫评估认知功能。
验证慢性高血压是否激活神经元凋亡和坏死性凋亡,并检测TAK1表达变化。
通过Western blot检测CC3、p-MLKL、TAK1和NEMO表达,通过免疫荧光共染检测CC3+NeuN+和p-MLKL+NeuN+细胞,以及TAK1在神经元中的表达。
调控神经元TAK1表达,观察其对神经元凋亡、坏死性凋亡和认知功能的影响。
向RHRSP大鼠侧脑室注射AAV-siTAK1或AAV-TAK1,4周后检测TAK1表达、凋亡和坏死性凋亡标志物,并进行水迷宫测试。
验证TAK1敲低诱导的神经元死亡是否由RIPK1介导。
对注射AAV-siTAK1的RHRSP大鼠给予Nec-1s(RIPK1抑制剂)或溶剂,14天后检测凋亡和坏死性凋亡标志物及认知功能。
在体外验证TAK1通过RIPK1依赖性机制抑制细胞死亡,并排除NF-κB通路的主要作用。
用TAK1抑制剂5Z-7-Oxozeaenol、RIPK1抑制剂Nec-1s、NF-κB抑制剂JSH-23及TNFα处理HT-22细胞,检测凋亡和坏死性凋亡标志物及细胞活力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物造模 | Sprague-Dawley (SD)大鼠 | 广东医学实验动物中心 | SCXK (广东) 2022-0002 |
| 血压测量 | BP-2010A尾袖血压计 | Softron | -- |
| 动物模型 | Nec-1s | MCE | HY-14622A |
| 动物处理 | TNFα | MCE | HY-P7108 |
| AAV制备 | Lipofiter™转染试剂 | Hanbio Biotechnology | HB-TRCF-1000 |
| 药物处理 | TNFα | MCE | HY-P7090A |
| Nec-1s | MCE | HY-14622A | |
| 5Z-7-Oxozeaenol | MCE | HY-12686 | |
| JSH-23 | MCE | HY-13982 | |
| 细胞培养 | HT-22细胞 | Procell | -- |
| DMEM培养基 | GIBCO | C11995500BT | |
| 胎牛血清 | ScienCell | 0025 | |
| 青霉素/链霉素 | ScienCell | 0503 | |
| 细胞活力分析 | CCK-8试剂盒 | DOJINDO | CK04 |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Solarbio | R0010 |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Roche | 4906837001 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | BCA-23225 |
| Western blot | PVDF膜 | Merck Millipore | ISEQ00010 |
| 脱脂牛奶 | CST | 9999s | |
| 抗cleaved caspase-3抗体 | CST | 9664S | |
| 抗caspase-3抗体 | CST | 9662S | |
| 抗Phospho-MLKL抗体 | CST | 37333S | |
| 抗MLKL抗体 | Abcam | ab184718 | |
| 抗GAPDH抗体 | CST | -- | |
| 抗TAK1抗体 | Abcam | ab109526 | |
| 抗NEMO抗体 | Abcam | ab178872 | |
| 抗Phospho-RIP (Ser166)抗体 | CST | 53286S | |
| 抗RIP抗体 | CST | 3493S | |
| 抗Phospho-RIP3抗体 | CST | 91702S | |
| 抗RIP3抗体 | CST | 10188S | |
| 抗Cleaved caspase-8抗体 | CST | 9496T | |
| 抗caspase-8抗体 | Abcam | ab32397 | |
| 抗Phospho-NF-κB p65抗体 | CST | 3033S | |
| 抗NF-κB p65抗体 | CST | 8242S | |
| 抗Phospho-JNK抗体 | CST | 4668S | |
| 抗JNK抗体 | CST | 9252S | |
| 抗Phospho-p38 MAPK抗体 | CST | 4511S | |
| 抗p38 MAPK抗体 | CST | 8690S | |
| HRP标记的抗兔抗体 | CST | 5571s | |
| Amersham Imager 600成像系统 | GE Healthcare | -- | |
| ImageJ软件 | -- | -- | |
| 免疫荧光 | 抗NeuN抗体 | Abcam | ab104224 |
| 抗Phospho-RIP抗体 | CST | 53286s | |
| 抗Phospho-MLKL抗体 | CST | 37333S | |
| 抗cleaved caspase-3抗体 | CST | 9664S | |
| 抗TAK1抗体 | Abcam | ab109526 | |
| 抗GFAP抗体 | Millipore | MAB3402X | |
| Alexa Fluor 647偶联的山羊抗小鼠IgG | CST | 4410S | |
| Alexa Fluor 488偶联的山羊抗兔IgG | CST | 4413S | |
| Olympus BX51荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| Nikon NIS-Elements软件 | Nikon | -- | |
| 给药 | 二甲基亚砜 | Sigma-Aldrich | D2650 |
| 微型渗透泵(Alzet 2002) | Alza Scientific Products | -- | |
| 统计 | GraphPad Prism软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | SD大鼠体重、两肾两夹法操作、收缩压测量时间点、RHRSP筛选标准(SBP>180 mmHg且无卒中症状) 阅读提示:Materials and Methods: Animal models and experimental design; Figure 1 |
| AAV注射 | AAV血清型(AAV9)、滴度、注射量、注射位点(Bregma坐标)、注射速率、注射后恢复时间 阅读提示:Materials and Methods: AAV preparation and intraventricular injection |
| Morris水迷宫 | 训练天数、平台位置、探针试验参数、统计指标(逃避潜伏期、目标象限时间、穿越平台次数) 阅读提示:Materials and Methods: Cognitive function assessment; Figure 9 |
| Western blot | 组织/细胞裂解、蛋白上样量、抗体稀释比、内参 阅读提示:Materials and Methods: Western blot analysis for in vivo experiment; Western blot analysis for in vitro experiment |
| 免疫荧光 | 切片厚度、抗体浓度、图像采集参数、定量分析区域 阅读提示:Materials and Methods: Immunofluorescent staining for in vivo experiment; Immunofluorescent staining for in vitro experiment |
| 体外细胞实验 | HT-22细胞培养条件、药物浓度(TNFα、5Z-7-Oxozeaenol、Nec-1s、JSH-23)、处理时间、CCK-8测定步骤 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture and drug treatment; Cell viability analysis |