IDEA平台的设计与优化
建立并优化基于EV的胞内蛋白递送平台,比较不同启动子和VSV-G共表达对递送效率的影响。
构建Cre报告系统,在HEK293F细胞中瞬时转染不同启动子(CAG、EF1a、CMV、PGK)驱动的Cre表达载体,共表达或不共表达VSV-G,纯化EV并检测对报告细胞的递送效率。
Engineered extracellular vesicles enable high-efficient delivery of intracellular therapeutic proteins.
包含体外细胞模型(Cre报告系统、STING通路检测)、多种同系肿瘤模型(MC38、B16.F10)及scRNA-seq机制分析,并进行了免疫细胞耗竭和联合治疗验证。
HEK293F细胞(EV生产细胞) 293T Cre-loxP报告细胞 MC38结肠癌同系小鼠模型 B16.F10黑色素瘤同系小鼠模型
EV生产细胞系:HEK293F VsV-G共表达在IDEA中的必要性 cGAS EVs的剂量(每次5×10^9颗粒) 肿瘤模型:MC38(5×10^5细胞)和B16.F10(1×10^6细胞) 给药方式:瘤内注射,时间点为第7、10、13天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立并优化基于EV的胞内蛋白递送平台,比较不同启动子和VSV-G共表达对递送效率的影响。
构建Cre报告系统,在HEK293F细胞中瞬时转染不同启动子(CAG、EF1a、CMV、PGK)驱动的Cre表达载体,共表达或不共表达VSV-G,纯化EV并检测对报告细胞的递送效率。
验证IDEA平台能否递送功能性胞内蛋白(Cre、β-catenin、cGAS)并激活下游信号。
用Cre EVs处理报告细胞检测重组效率;用β-catenin EVs处理TOPFlash报告细胞检测转录活性;用cGAS EVs处理THP1-Lucia ISG细胞和293T-STING-mNeonGreen细胞检测STING通路激活。
评估cGAS EVs在同系小鼠肿瘤模型中的治疗效果。
构建MC38和B16.F10同系小鼠肿瘤模型,瘤内注射cGAS EVs、对照EVs、游离cGAMP或PBS,监测肿瘤体积和生存期。
确定参与cGAS EVs抗肿瘤效应的关键免疫细胞类型。
使用抗体(抗CD4、抗CD8α、抗NK1.1、抗Ly6G)或氯膦酸盐脂质体耗竭CD4+T细胞、CD8+T细胞、NK细胞、巨噬细胞和中性粒细胞,观察对肿瘤生长和生存期的影响。
评估cGAS EVs与抗PD-1抗体联合治疗的协同抗肿瘤效果。
在MC38肿瘤模型中,联合瘤内注射cGAS EVs和腹腔注射抗PD-1抗体,监测肿瘤生长和生存期,并再次激发试验。
描绘cGAS EVs治疗后的肿瘤微环境细胞组成和基因表达变化。
从MC38肿瘤中分离CD45+免疫细胞,进行scRNA-seq,分析细胞亚群、差异表达基因、细胞轨迹和细胞间相互作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| Union-293培养基 | Union-Biotech | -- | |
| 细胞转染 | PEI转染试剂 | Yeasen | -- |
| EV分离 | Optima MAX-XP超速离心机 | Beckman Coulter | -- |
| MLA-50转子 | Beckman Coulter | -- | |
| EV表征 | ZetaView PMX110纳米颗粒追踪分析仪 | Particle Metrix | -- |
| 透射电镜 | 200目Formvar碳包覆铜网 | Ted Pella | 1GC300 |
| Tecnai F12透射电子显微镜 | FEI | -- | |
| 冷冻电镜 | 300目lacey碳网 | Ted Pella | 01883-F |
| Vitrobot Mark IV冷冻制样机 | FEI | -- | |
| Gatan 626冷冻样品杆 | Gatan | -- | |
| Tecnai G2 F20冷冻电子显微镜 | FEI | -- | |
| 荧光显微镜 | DMi8荧光显微镜 | Leica | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | TargetMol | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Biosharp | -- | |
| HRP标记二抗 | Proteintech | -- | |
| Cre抗体 | Meck-Millipore | 69050-3 | |
| β-catenin抗体 | Cell Signaling Technology | 8480S | |
| Alix抗体 | Cell Signaling Technology | 2171S | |
| CD63抗体 | Santa Cruz | sc-5275 | |
| TSG101抗体 | Servicebio | GB11618 | |
| Calnexin抗体 | Cell Signaling Technology | 2433S | |
| cGAS抗体 | Cell Signaling Technology | D1D3G | |
| p-STING抗体 | Thermo Fisher | PA5-105674 | |
| STING抗体 | Cell Signaling Technology | 13647S | |
| TBK1抗体 | Cell Signaling Technology | 3504S | |
| p-TBK1抗体 | Cell Signaling Technology | 5483S | |
| p-IRF3抗体 | Cell Signaling Technology | 29047S | |
| NF-κB抗体 | Cell Signaling Technology | 8242S | |
| IRF3抗体 | Biolegend | 655701 | |
| p-NF-κB抗体 | Servicebio | GB113882 | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 66009-1-Ig | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| RT-qPCR | FastPure细胞/组织总RNA提取试剂盒 | Vazyme | -- |
| 逆转录试剂盒 | Takara | -- | |
| SYBR Green PCR预混液 | Takara | -- | |
| LightCycler实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 流式细胞术 | LSRFortessa流式细胞仪 | BD | -- |
| 可固定活力染料 | Invitrogen | -- | |
| 动物实验 | 抗PD-1抗体 | Bioxcell | BE0146 |
| 免疫细胞耗竭 | 抗CD4抗体 | Bioxcell | BE0003 |
| 抗CD8α抗体 | Bioxcell | BE0061 | |
| 抗NK1.1抗体 | Bioxcell | BE0036 | |
| 抗Ly6G抗体 | Bioxell | BE0075 | |
| Clophosome®-A脂质体 | FormuMax | F70101C | |
| 对照脂质体 | FormuMax | F70101 | |
| 免疫荧光 | CD45抗体 | Servicebio | GB113886 |
| CD4抗体 | Servicebio | GB15064 | |
| CD8抗体 | Servicebio | GB114196 | |
| F4/80抗体 | Servicebio | GB113373 | |
| Ly6G抗体 | Servicebio | GB11229 | |
| iNOS抗体 | Servicebio | GB11119 | |
| CD206抗体 | Servicebio | GB113497 | |
| NK1.1抗体 | Cell Signaling Technology | 39197 | |
| tdTomato/RFP抗体 | ROCKLAND | 600-401-379 | |
| 肿瘤组织处理 | MACS组织保存液 | Miltenyi Biotec | 130-100-008 |
| 小鼠肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-730 | |
| 细胞分选 | CD45微磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-110-618 |
| MS分选柱 | Miltenyi Biotec | -- | |
| scRNA-seq | Chromium Next GEM单细胞3'试剂盒v3.1 | 10x Genomics | 1000268 |
| 构建载体 | pCMV-MMLVgag-3xNES-Cas9质粒 | Addgene | 181752 |
| pCAG-Cre质粒 | Addgene | 13775 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| EV生产 | HEK293F细胞培养条件(Union-293培养基,175 rpm摇晃),转染试剂PEI,转染时间72小时,EV纯化方法(超速离心+SEC) 阅读提示:Materials and methods, Cell culture, Isolation and purification of EVs |
| 体外递送效率 | Cre-loxP报告细胞类型(293T),EV剂量(不同数量),孵育时间48小时,检测GFP+细胞比例 阅读提示:Materials and methods, Flow cytometric analysis; Figure 1D |
| STING通路激活 | THP1-Lucia ISG细胞处理13小时,STING-GFP易位实验处理4小时,cGAS EVs浓度(文中未明确说明具体浓度) 阅读提示:Materials and methods, Luciferase reporter assay, STING-GFP trafficking assay; Figure 2G |
| 体内肿瘤模型 | MC38细胞注射量5×10^5,B16.F10细胞注射量1×10^6,肿瘤体积达到50-70 mm³时开始治疗,瘤内注射剂量5×10^9颗粒/次,共3次(第7、10、13天),游离cGAMP剂量2.5 μg 阅读提示:Materials and methods, In vivo studies; Figure 3A |
| 免疫细胞耗竭 | 耗竭抗体剂量(初始250 μg,后续250 μg每3天),巨噬细胞耗竭使用Clophosome-A脂质体(初始180 μL,后续100 μL每3天),耗竭效率验证 阅读提示:Materials and methods, Depletion of immune cells in vivo |
| scRNA-seq | 肿瘤采集时间(第10天),CD45+细胞分选,10x Genomics试剂盒版本,测序平台(Illumina NovaSeq 6000),数据分析参数(CellRanger 7.0.1,DoubletDetection,Scrublet,Scanpy) 阅读提示:Materials and methods, Single-cell sequencing and data processing |