动物模型建立与分组处理
建立CDDP诱导的AKI小鼠模型,并评估MG的预防性保护作用
雄性C57BL/6小鼠随机分为四组:Control、MG、CDDP、CDDP+MG。MG组每日腹腔注射MG(20 mg/kg)连续4天,CDDP组于第2天单次腹腔注射CDDP(20 mg/kg),CDDP+MG组在第2天CDDP注射前1小时给予MG,并继续给药至第4天。第5天处死小鼠,采集血液和肾组织。
Magnolol Ameliorates Cisplatin-Induced Acute Kidney Injury with Activation of Nrf2-Associated Antioxidant Responses.
包含体内动物模型(C57BL/6小鼠CDDP诱导AKI),并进行组织学、免疫组化、TUNEL、Western blot、qPCR及生化分析等多层级验证,并涉及功能验证和机制探索(如Nrf2通路)。
C57BL/6小鼠CDDP诱导AKI模型 小鼠肾组织样本
MG剂量:20 mg/kg,腹腔注射,每日一次,从CDDP前1天开始,共4天 CDDP剂量:20 mg/kg,单次腹腔注射(第2天) 动物分组:Control、MG、CDDP、CDDP+MG,每组8只雄性C57BL/6小鼠 检测终点:CDDP给药后72小时(第5天)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立CDDP诱导的AKI小鼠模型,并评估MG的预防性保护作用
雄性C57BL/6小鼠随机分为四组:Control、MG、CDDP、CDDP+MG。MG组每日腹腔注射MG(20 mg/kg)连续4天,CDDP组于第2天单次腹腔注射CDDP(20 mg/kg),CDDP+MG组在第2天CDDP注射前1小时给予MG,并继续给药至第4天。第5天处死小鼠,采集血液和肾组织。
评估MG对CDDP诱导的肾功能障碍和肾小管损伤的影响
检测血清BUN和肌酐水平;肾组织H&E和PAS染色评估肾小管损伤评分;IHC检测NGAL表达;Western blot检测NGAL和KIM-1蛋白水平。
检测MG是否抑制CDDP诱导的系统性和肾脏局部炎症
ELISA检测血清和肾组织中TNF-α、IL-6、IL-1β蛋白水平;qPCR检测肾组织中相应细胞因子的mRNA水平。
明确MG对CDDP诱导的ER应激和MAPK通路活化的影响
qPCR检测IRE1α、XBP1、ATF6的mRNA水平;Western blot检测GRP78、p-PERK、p-eIF2α、CHOP及p-ERK、p-JNK、p-p38蛋白水平。
评估MG对CDDP诱导的肾小管细胞凋亡和铁死亡的影响
TUNEL染色检测凋亡;Western blot检测cleaved caspase-3、cleaved PARP-1、p53、Bax;IHC检测4-HNE;生化检测MDA和GSH水平;qPCR检测GPX4 mRNA;Western blot检测ACSL4、TFR1、SLC7A11蛋白。
验证MG是否恢复CDDP抑制的Nrf2抗氧化信号
提取肾组织核蛋白,Western blot检测核内Nrf2水平;qPCR检测下游靶基因HO-1、NQO1、catalase的mRNA表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 厚朴酚 | Sigma-Aldrich | PHL89317 |
| 顺铂 | Sigma-Aldrich | P4394 | |
| 阿佛丁 | Sigma-Aldrich | T48402 | |
| 生化分析 | 尿素氮比色检测试剂盒 | Invitrogen | EIABUN |
| 肌酐比色检测试剂盒 | Invitrogen | EIASCR | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | R&D Systems | MTA00B-1 | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | R&D Systems | M6000B-1 | |
| IL-1β ELISA试剂盒 | R&D Systems | MLB00C-1 | |
| 氧化应激检测 | MDA定量试剂盒 | Sigma-Aldrich | MAK085 |
| GSH检测试剂 | Enzo Life Sciences | ADI-900-160 | |
| 免疫组化 | NGAL抗体 | Invitrogen | PA5-79590 |
| 4-HNE抗体 | Bioss | BS-6313R | |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Abcam | ab6721 | |
| TUNEL染色 | TUNEL检测试剂盒 | Roche Diagnostics | 11684795910 |
| DAPI | -- | -- | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | 89901 |
| 核分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 78833 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23225 | |
| 抗兔IgG二抗 | Cell Signaling Technology | 7074 | |
| 抗小鼠IgG二抗 | Cell Signaling Technology | 7076 | |
| 增强化学发光试剂 | Thermo Fisher Scientific | 32106 | |
| qPCR | TRIzol试剂 | Sigma-Aldrich | T9424 |
| PrimeScript RT试剂盒 | TaKaRa | RR037A | |
| Power SYBR Green PCR预混液 | Thermo Fisher Scientific | 4367660 | |
| 实时荧光定量PCR仪 | TaKaRa | -- | |
| 图像采集与分析 | 共聚焦激光扫描显微镜 | Nikon | -- |
| IMT i-Solution软件 | IMT i-Solution | -- | |
| ImageJ软件 | NIH | -- | |
| 统计分析 | GraphPad-Prism软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与分组处理 | 动物品系、性别、年龄、来源;分组数量;MG和CDDP的剂量、给药途径、给药时间;处死时间 阅读提示:见2.1 Animal Experiments部分,及图1和图2图注 |
| 肾功能和组织学检测 | BUN和肌酐检测试剂盒批次;肾小管损伤评分标准;IHC抗体稀释度和孵育条件;视野数量和放大倍数 阅读提示:见2.2和2.3部分,及图1-3图注 |
| 炎症因子检测 | ELISA试剂盒的灵敏度范围;qPCR引物序列和反应条件;样本量和内参基因 阅读提示:见2.2和2.6部分,及图4图注 |
| ER应激和MAPK信号检测 | ER应激标志物和磷酸化MAPK抗体的特异性和稀释度;一抗和二抗孵育条件;内参蛋白选择 阅读提示:见2.5部分和补充表S1,及图5图注 |
| 凋亡和铁死亡检测 | TUNEL试剂盒说明书;4-HNE抗体的稀释度;MDA和GSH检测试剂盒的操作步骤;铁死亡相关蛋白抗体的验证 阅读提示:见2.4和2.5部分,及图6-7图注 |
| Nrf2信号检测 | 核蛋白提取试剂盒的使用;Nrf2抗体亲和力;下游靶基因引物序列 阅读提示:见2.5和2.6部分,及图8图注 |