建立小鼠后肢缺血模型并分组处理
在体内条件下诱导缺血性血管生成,比较CD8a+/+与CD8a−/−小鼠的血管恢复差异。
对8周龄雄性CD8a+/+和CD8a−/−小鼠进行单侧后肢缺血手术(股动脉结扎并移除),并设置假手术对照组。术后在多个时间点评估血流恢复和毛细血管形成。
CD8+ T Cells Negatively Modulate Ischemia-Induced Angiogenesis in Mice.
包含CD8a和IFN-γ基因敲除小鼠的体内功能缺失实验、重组IFN-γ回补实验、主动脉环离体实验及HUVEC细胞体外实验,涉及多层级验证。
小鼠后肢缺血模型 主动脉环培养模型 人脐静脉内皮细胞(HUVEC)
CD8a−/−和IFN-γ−/−基因敲除小鼠(C57BL/6背景) 单侧后肢缺血手术建模 rIFN-γ腹腔注射剂量:50,000 U/100 μL/只,每周2次,持续3周 EGCG灌胃剂量:25 mg/kg/天,术前3天开始至处死 激光多普勒血流仪检测时间点:0、4、7、14天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在体内条件下诱导缺血性血管生成,比较CD8a+/+与CD8a−/−小鼠的血管恢复差异。
对8周龄雄性CD8a+/+和CD8a−/−小鼠进行单侧后肢缺血手术(股动脉结扎并移除),并设置假手术对照组。术后在多个时间点评估血流恢复和毛细血管形成。
分析CD8+ T细胞缺失对缺血肌肉中VEGF/Erk1/2、NLRP3/caspase-1以及氧化应激和凋亡标志物的影响。
通过Western blot检测VEGF、p-Erk1/2、NLRP3、caspase-1蛋白水平,ELISA检测血浆VEGF和IL-18,化学发光法检测NADPH氧化酶活性,TUNEL(ssDNA)和Mac-3免疫染色检测凋亡和巨噬细胞浸润。
确定IFN-γ是否是CD8+ T细胞介导血管抑制的关键下游因子。
对IFN-γ+/+和IFN-γ−/−小鼠进行同样的缺血手术,并比较血流恢复、毛细血管密度和分子标志物。另外,对CD8a−/−小鼠给予重组IFN-γ,观察血管保护效应的丧失。
在离体条件下评估IFN-γ和EGCG对血管生成的影响。
收集野生型小鼠胸主动脉环,包埋于I型胶原凝胶中,加入VEGF(50 ng/mL)和不同处理(含或不含IFN-γ中和抗体,或EGCG),培养7天,观察微管形成。
探究活化CD8+ T细胞条件培养基对HUVEC血管生成功能的影响以及EGCG的保护作用。
用5% NTCM或5% ATCM(含rhVEGF 20 ng/mL)在低氧条件下培养HUVEC,分别进行管形成、迁移和凋亡检测,并评估EGCG(20 μM)的干预效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 重组小鼠干扰素-γ | APExBIO Technology | P1015 |
| 表没食子儿茶素-3-没食子酸酯溶液 | Sigma-Aldrich Chemicals | 989-51-5 | |
| 毛细血管密度检测 | DyLight 594标记的番茄凝集素 | Vector Laboratories | DL-1177-1 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio Life Sciences | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio Life Sciences | -- | |
| FluoroTrans-W膜 | Pall | -- | |
| 抗NLRP3抗体 | Cell Signaling Technology | #15101 | |
| 抗caspase-1抗体 | Cell Signaling Technology | #24232 | |
| 抗p-Erk1/2抗体 | Cell Signaling Technology | #4377 | |
| 抗Erk1/2抗体 | Cell Signaling Technology | #4695 | |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | #5174 | |
| 抗VEGF-A抗体 | Abcam | ab46154 | |
| ELISA | VEGF ELISA试剂盒 | R&D Systems | MMV00 |
| IL-18 ELISA试剂盒 | MLBIO | ml-1066842 | |
| IFN-γ ELISA试剂盒 | MLBIO | ml-002277 | |
| 巨噬细胞染色 | FITC标记的CD68单克隆抗体 | Bioss | bs-33056m |
| 凋亡检测 | 抗单链DNA抗体 | Dako | -- |
| 主动脉环培养 | Type I collagen | BD Biosciences | -- |
| 内皮细胞基础培养基-2 | Chambrex | -- | |
| 血管内皮生长因子 | Absin | abs01017 | |
| FITC标记的抗CD31抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 细胞培养 | T细胞激活/扩增试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-091-441 |
| 重组小鼠IL-2 | Miltenyi Biotec | 130-097-745 | |
| 重组人VEGF | absin | abs05164 | |
| 管形成 | 基质胶 | BD Biosciences | -- |
| 迁移实验 | Transwell小室 | Costar | -- |
| 流式凋亡检测 | FITC膜联蛋白V凋亡检测试剂盒 | Biolegend | 640914 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型的建立与分组处理 | 小鼠品系(CD8a+/+、CD8a−/−、IFN-γ+/+、IFN-γ−/−)、性别(雄性)、年龄(8周龄)、体重(18-23g)、缺血手术方法(股动脉结扎和切除)、麻醉方式(3%异氟烷)、分组随机化 阅读提示:见Materials and Methods第2.1节“Mice”和2.3节“Hindlimb Ischemic Angiogenesis Induction and Treatment” |
| 血流恢复评估 | 激光多普勒血流仪型号、测量时间点(0、4、7、14天)、结果表示为缺血/非缺血比值 阅读提示:见Materials and Methods第2.4节“Ischemic Hindlimb Perfusion Assay” |
| 毛细血管密度检测 | 凝集素类型(DyLight 594标记番茄凝集素)、固定和包埋方法、切片厚度、显微镜放大倍数(20×)、随机视野数量 阅读提示:见Materials and Methods第2.5节“Measurement of Capillary Density” |
| 分子表达检测 | western blot检测的抗体及稀释比例、上样蛋白量、内参(GAPDH);ELISA检测的指标(VEGF、IL-18、IFN-γ)及试剂盒品牌 阅读提示:见Materials and Methods第2.6节“Western Blot Analysis”和2.7节“Evaluation of the Plasma VEGF and IL-18 Levels” |
| 氧化应激检测 | NADPH氧化酶活性测定方法(光泽精化学发光法)、组织匀浆准备、测量时间参数 阅读提示:见Materials and Methods第2.8节“Oxidative Stress Production Assay” |
| 重组IFN-γ回补实验 | 给药剂量(50,000 U/100 μL/只)、给药途径(腹腔注射)、频率(每周2次)、持续总时间(3周) 阅读提示:见Materials and Methods第2.3节“Hindlimb Ischemic Angiogenesis Induction and Treatment”中的Exp.3 |
| EGCG治疗实验 | 浓度(25 mg/kg/day)、给药途径(灌胃)、体积(200 μL)、开始时间(术前3天)、持续到取样 阅读提示:见Materials and Methods第2.3节“Hindlimb Ischemic Angiogenesis Induction and Treatment”中的Exp.4 |