建立DVT小鼠模型并验证模型
构建狭窄诱导的DVT小鼠模型,模拟深静脉血栓形成,并验证模型成功。
对10周龄雄性C57BL/6J小鼠进行下腔静脉部分结扎诱导DVT,术后24小时通过肉眼可见血栓、血栓重量和长度记录,以及Il6、Vcam1、Vwf、Sele等分子标志物评估模型成功。
The EZH2 Inhibitor GSK126 Alleviates Thromboinflammation in Deep Vein Thrombosis by Suppressing TLR4 Signaling via H3K27me3 Modulation.
包含狭窄诱导的DVT小鼠模型、Tlr4基因敲除小鼠、外源性组蛋白H3注射、HUVEC细胞实验等体内外多个证据层级,进行了功能验证(血栓重量)和机制验证(TLR4、H3K27me3表达)。
狭窄诱导的深静脉血栓小鼠模型(C57BL/6J) Tlr4基因敲除小鼠(Tlr4−/−) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)
小鼠模型:10周龄雄性C57BL/6J小鼠(18-22g),部分结扎下腔静脉诱导DVT,术后24小时取材 GSK126给药:50 mg/kg,腹腔注射,术前连续7天 组蛋白H3给药:20 μg/小鼠,腹腔注射,术前24小时 HUVEC处理:LPS(1 μg/mL)刺激,GSK126(10 μM)预处理24小时,TAK-242(50 nM)联合处理 实验分组:野生型与Tlr4−/−小鼠各设DVT、DVT+H3、DVT+GSK126、DVT+H3+GSK126等组,每组最终6-10只
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建狭窄诱导的DVT小鼠模型,模拟深静脉血栓形成,并验证模型成功。
对10周龄雄性C57BL/6J小鼠进行下腔静脉部分结扎诱导DVT,术后24小时通过肉眼可见血栓、血栓重量和长度记录,以及Il6、Vcam1、Vwf、Sele等分子标志物评估模型成功。
检测GSK126是否减轻DVT小鼠的血栓负担和炎症反应。
给予GSK126(50 mg/kg,腹腔注射,术前7天)或对照,测量血栓重量、血浆CitH3水平、Tlr4 mRNA表达等。
验证Tlr4是否是细胞外组蛋白H3促进血栓形成和炎症的关键介质。
使用Tlr4−/−小鼠和野生型小鼠,结合外源性组蛋白H3注射,比较血栓重量、血栓重量长度比、血浆CitH3水平、炎症基因表达和内皮损伤。
评估Tlr4在组蛋白H3诱导的血小板活化中的作用。
通过流式细胞术检测血小板富集血浆中P选择素和整合素αIIbβ3的表达。
在HUVECs中验证GSK126是否通过下调TLR4抑制LPS诱导的炎症反应。
HUVECs分为对照组、LPS组、LPS+GSK126组、LPS+GSK126+TAK-242组,检测细胞活力、炎症因子分泌(IL-6、TNF-α)、TLR4及下游蛋白表达。
探究GSK126是否通过降低H3K27me3水平来抑制TLR4转录和下游NF-κB激活。
通过qPCR和Western blot检测TLR4 mRNA、TLR4蛋白、p-IκBα和H3K27me3水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 异氟烷 | -- | -- |
| 丝线缝合线 | -- | -- | |
| 组蛋白处理 | 含组蛋白H3的小牛胸腺组蛋白混合物 | Macklin | H920439 |
| 免疫荧光染色 | 柠檬酸盐抗原修复液 | Beyotime | P0090 |
| DAPI | Beyotime | C1005 | |
| 抗荧光淬灭封片剂 | Beyotime | P0126 | |
| 抗CD31抗体 | Invitrogen | MA1-80069 | |
| 抗VCAM-1抗体 | Invitrogen | PA5-86042 | |
| Cy3标记的山羊抗兔IgG | KPL | 072-01-15-06 | |
| DyLight 488标记的山羊抗小鼠IgG | KPL | 5230-0391 | |
| RT-qPCR | TRIzol裂解液 | Invitrogen | 15596026 |
| 氯仿 | Sinopharm | 10009618 | |
| 异丙醇 | Sinopharm | 10009268 | |
| Taq Pro通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q712-02 | |
| ABI 7500实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher | -- | |
| 流式细胞术 | FITC标记的抗CD61抗体 | Thermo Fisher | 11-0611-82 |
| PE标记的抗CD62P抗体 | Thermo Fisher | 12-0626-82 | |
| NovoCyte Advanteon流式细胞仪 | Agilent | -- | |
| 细胞培养与处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L2880 |
| GSK126 | -- | -- | |
| TAK-242 | MCE | HY-11109 | |
| 细胞活性检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | CK04 |
| ELISA检测 | IL-6 ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H6156 |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-H0109 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗TLR4抗体 | Cell Signaling Technology | 14358 | |
| 抗P选择素抗体 | Bioss | bs-0561R | |
| 抗ICAM-1抗体 | Bioss | bs-0608R | |
| 抗磷酸化IκBα抗体 | Proteintech | 82349-1-RR | |
| 抗H3K27me3抗体 | Proteintech | 61018 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | ZSGB-Bio | TA-09 | |
| 抗小鼠IgG-HRP | Abmart | M21001L | |
| 抗兔IgG-HRP | Abmart | M21002L | |
| 增强化学发光检测系统 | NCM Biotech | P10100 | |
| 统计分析 | GraphPad Prism 9.0 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、体重;DVT诱导手术细节(结扎位置、针头尺寸);术后时间 阅读提示:Methods: Construction of the DVT Mouse Model |
| 药物处理 | GSK126剂量、给药途径、给药频率和持续时间;组蛋白H3剂量和给药时间 阅读提示:Methods: Construction of the DVT Mouse Model; Supplementary Table S1 |
| 体外细胞实验 | HUVEC来源和代数;LPS浓度、刺激时间;GSK126和TAK-242浓度、预处理时间 阅读提示:Methods: Cell Culture; Figure 4 legend |
| 基因表达检测 | RNA提取方法、逆转录条件、qPCR程序、引物序列、内参基因 阅读提示:Methods: RT-qPCR; Table 1 |
| 蛋白表达检测 | 蛋白提取方法、抗体稀释比例、二抗信息、内参蛋白 阅读提示:Methods: Western Blot Detection |
| 流式细胞术 | 采血方式、抗凝剂、PRP制备条件、抗体稀释比例 阅读提示:Methods: Flow Cytometry Analysis; Supplementary Figure S2 |