PCV2感染通过抑制生发中心亮区B细胞与辅助细胞的相互作用来抑制其分化

PCV2 Infection Represses the Differentiation of Light Zone Germinal Center B Cells by Inhibiting Their Interaction with Helper Cells.

作者信息Tengfei Shi, Qian Du, Jiasai Kang, Haoshu Zhang, Xinru Xu, Yang Wang, Dewen Tong, Yong Huang
PMID41011514
发布时间2025-09-18
DOI10.3390/microorganisms13092184

实验完整度

研究包含scRNA-seq、流式细胞术、RT-qPCR、Western blot及小鼠模型,涵盖体外和体内验证,且包含功能验证与机制验证。

主要模型

BALB/c小鼠PCV2感染模型 小鼠脾脏B细胞

重点核对

PCV2感染剂量:105 TCID50/500 μL,腹腔注射 感染时间:28天 对照组:PBS注射 样本量:每组3只小鼠(流式和测序) 检测指标:B细胞亚群比例、功能基因表达、细胞间相互作用

摘要

猪圆环病毒2型(PCV2)是猪群中最常见的免疫抑制病毒之一,损害猪群疫苗的保护效力。先前的研究表明,PCV2感染会降低宿主疫苗接种所诱导的免疫记忆和抗体分泌。在本研究中,我们利用小鼠脾脏细胞的单细胞mRNA测序表明,PCV2感染减慢了生发中心(GC)亮区B细胞向记忆B细胞和浆细胞的分化。我们发现,尽管PCV2感染导致小鼠脾脏淋巴细胞耗竭,但剩余的脾脏B细胞被感染激活。PCV2感染小鼠中初始B细胞的百分比下降主要是由于分化而非死亡。同时,记忆B细胞和浆细胞的百分比增加,但功能基因表达没有显著增强。聚焦于GC B细胞,我们发现PCV2感染激活了暗区GC B细胞的增殖,但未激活亮区GC B细胞的分化。此外,PCV2感染未显著改变Prdm1的转录水平,而Bach2的水平则显著降低。进一步分析显示,在PCV2感染小鼠的脾脏中,亮区GC B细胞与树突状细胞、巨噬细胞和滤泡辅助T细胞之间的相互作用减弱。总之,本研究发现PCV2感染损害了B细胞向功能性记忆B细胞和浆细胞的分化。这可能是PCV2感染损害疫苗效率的一个重要且以前未被认识的原因。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PCV2感染如何影响B细胞分化及功能,从而损害疫苗诱导的体液免疫?
核心机制
PCV2感染减弱了亮区生发中心B细胞与树突状细胞、巨噬细胞和滤泡辅助T细胞的相互作用,抑制了Bach2表达,阻碍了B细胞向记忆B细胞和浆细胞的分化。
主要证据
scRNA-seq和流式细胞术显示,PCV2感染导致暗区GC B细胞增殖增加,但亮区GC B细胞分化受阻,Bach2表达降低,与辅助细胞的相互作用减弱。
研究意义
研究揭示了PCV2感染损害疫苗效率的新机制,为理解PCV2诱导的体液免疫抑制和疫苗研发提供了基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

小鼠感染模型建立与表型分析

建立PCV2感染的小鼠模型,观察病毒复制和脾脏病理变化。

BALB/c小鼠腹腔注射PCV2或PBS,检测血清和器官病毒载量,进行脾脏组织学观察。

2

单细胞转录组分析

鉴定脾脏细胞类型和B细胞亚群,比较PCV2感染组和对照组的细胞组成变化。

取脾脏制备单细胞悬液,进行10x Genomics scRNA-seq,使用Seurat进行聚类和注释。

3

流式细胞术验证B细胞亚群比例

验证PCV2感染对B细胞亚群比例的影响。

脾脏淋巴细胞染色,检测初始B细胞、GC B细胞、记忆B细胞、浆细胞及GC B细胞亚群。

4

功能基因表达检测

评估PCV2感染对B细胞功能基因表达的影响。

流式分选初始B细胞、GC B细胞、LZ GC B细胞,提取RNA或蛋白,进行RT-qPCR和Western blot。

5

细胞间相互作用分析

分析PCV2感染对B细胞与辅助细胞间信号交流的影响。

使用CellChat分析scRNA-seq数据推断细胞间配体-受体相互作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清ExCellFSP500
病毒RNA/DNA提取试剂盒Ver.5.0Takara9766
通用SYBR Green快速qPCR预混液ABclonalRK21203
IV型胶原酶----
木瓜蛋白酶----
脱氧核糖核酸酶I----
红细胞裂解液Miltenyi Biotec130-094-183
死细胞去除磁珠Miltenyi Biotec130-090-101
10x Genomics Chromium单细胞3'试剂盒(V3)10x Genomics--
Illumina NovaSeq 6000测序系统Illumina--
小鼠脾脏淋巴细胞分离试剂盒SolarbioP8860
染色缓冲液Biolegend420201
PE/Cyanine7抗B220抗体Biolegend103222
PE抗CD138抗体Biolegend142503
PerCP/Cyanine5.5抗CD38抗体Biolegend102721
APC抗GL7抗体Biolegend144617
FITC抗CD86抗体Biolegend105109
APC/Cyanine7抗CXCR4抗体Biolegend146523
FITC抗Ki67抗体Biolegend151211
APC抗IgD抗体ElabscienceE-AB-F1189E
FITC抗IgM抗体ElabscienceE-AB-F1190C
FITC抗IgG抗体Biolegend406001
抗ZNF318抗体Biorbytorb1088967
APC抗兔IgG抗体R&D SystemsF0111
固定液BiossCO3-02001
胞内染色透化洗涤缓冲液BiolegendB205349
无RNA酶DNA酶Roche4716728001
HiScript RT SuperMix qPCR反转录预混液VazymeR323-01
RIPA裂解液----
蛋白上样缓冲液BeyotimePP117-01
抗MHC II类抗体abcamab139365
抗MYC抗体abcamab195207
抗AICDA抗体ImmunowayYT5566
抗BACH2抗体ImmunowayYN16971
HRP抗大鼠IgG H&L抗体abcamab205720
HRP抗兔IgG H&L抗体Thermo Fisher31460

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
病毒制备与感染
PCV2毒株(GenBank MH492006),感染剂量105 TCID50/500 μL腹腔注射,对照组PBS 500 μL,感染周期28天
阅读提示:材料与方法:病毒、细胞和动物;小鼠实验;图1A
单细胞测序
小鼠脾脏单细胞悬液制备,细胞活力(对照组93.4%,PCV2组94.4%),细胞浓度(1060 cells/μL对照,1070 cells/μL PCV2),捕获细胞数(9665对照,6477 PCV2),测序平台和深度(NovaSeq 6000,20,000 reads/cell)
阅读提示:材料与方法:组织解离与单细胞悬液制备;Chromium 10x Genomics文库和测序
流式细胞术
抗体克隆号及荧光标记(如B220, CD138, CD38, GL7, CD86, CXCR4),染色条件(室温避光30分钟),细胞分选和检测仪器(BD FACSAria III, Agilent NovoCyte),数据分析软件(De Novo)
阅读提示:材料与方法:流式细胞术检测和分离细胞;表1及正文
RT-qPCR
引物序列(表S2),内参基因Gapdh,反应条件(预变性95°C 3min;95°C 5s,60°C 30s,45循环)
阅读提示:材料与方法:定量RT-PCR;表S2
Western blot
裂解液(RIPA含PMSF),上样缓冲液,抗体信息(见表),封闭条件(5% BSA,2小时),一抗孵育(4°C过夜),二抗孵育(室温2小时)
阅读提示:材料与方法:Western blotting