LMOD2与ACTC1的相互作用调控肌原性分化

LMOD2 interaction with ACTC1 regulates myogenic differentiation.

作者信息Kaiming Wang, Caihong Liu, Lei Yi, Sui Liufu, Wenwu Chen, Xiaolin Liu, Bohe Chen, Xin Xu, Jingwen Liu, Xibing Liu, Yulong Yin, Haiming Ma
PMID40745266
发布时间2025-07-31
DOI10.1186/s12864-025-11897-z

实验完整度

包含细胞体外敲除、转录组分析、双荧光素酶报告、Co-IP、体内慢病毒敲低等多个独立证据层级,且涉及功能与机制验证。

主要模型

C2C12细胞 HEK293T细胞 小鼠(C57BL/6j)体内模型 猪骨骼肌组织

重点核对

LMOD2基因敲除细胞系的构建及敲除效率验证(PCR和Sanger测序) 肌纤维类型标志物(MyHC-I、MyHC-2a、MyHC-2x、MyHC-2b)的表达变化 慢病毒介导的LMOD2敲低在小鼠体内的注射方法及肌肉质量评估 LMOD2与ACTC1相互作用的Co-IP验证

摘要

背景:骨骼肌是哺乳动物中最大的组织,在代谢和稳态中起着至关重要的作用。骨骼肌的发育和再生由一系列精细调控的基因表达变化组成。Leiomodin2(LMOD2)基因在心脏和骨骼肌中特异性表达。但LMOD2对骨骼肌发育的生理功能和机制尚不清楚。结果:在本研究中,我们检测了LMOD2在猪组织和C2C12细胞中的表达水平。LMOD2主要在心脏中表达,其次是骨骼肌。LMOD2的表达水平随着骨骼肌的生长逐渐降低,但在损伤后升高。LMOD2的表达水平随着C2C12细胞的增殖和分化逐渐增加。在功能上,LMOD2在C2C12细胞中敲除后,肌纤维类型发生改变,MyHC-I和MyHC-2b被抑制,而MyHC-2a和MyHC-2x被促进。LMOD2敲除对LMOD家族有不同的影响,LMOD1表达水平被促进,而LMOD3被抑制。LMOD2的缺失抑制了细胞活力和PAX7蛋白表达。在转录组水平上,LMOD2敲除后,增殖相关基因和肌肉收缩相关基因分别受到抑制。在分子网络方面,一系列实验表明MyoG是LMOD2的转录因子,而miR-335-3p可以负调控LMOD2的表达。我们利用蛋白质预测软件和RNA-seq筛选出ACTC1作为LMOD2的候选相互作用蛋白,Co-IP实验证实了LMOD2和ACTC1之间的关系。在体内,慢病毒介导的LMOD2敲低减少了肌肉质量。LMOD2敲低抑制了MyHC-I mRNA的表达,但对MyHC-2b没有影响。LMOD2敲低后MyHC-I、MyHC-2x和MyHC-2b的蛋白表达被抑制。结论:总的来说,我们的数据表明LMOD2敲除抑制成肌细胞增殖并改变肌纤维类型。MyoG是LMOD2的转录因子,而miR-335-3p可以负调控LMOD2的表达。此外,LMOD2和ACTC1相互作用调节肌原性分化。我们的研究为骨骼肌发育提供了一个新的靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LMOD2在骨骼肌成肌过程中的功能及其分子调控机制是什么?
核心机制
MyoG作为转录因子调控LMOD2表达,miR-335-3p负调控LMOD2,且LMOD2与ACTC1相互作用共同调节肌原性分化。
主要证据
利用CRISPR-Cas9敲除C2C12细胞中LMOD2,发现肌纤维类型改变、增殖受抑;双荧光素酶实验证实MyoG和miR-335-3p对LMOD2的调控;Co-IP证实LMOD2与ACTC1相互作用;体内慢病毒敲低LMOD2导致肌肉质量下降。
研究意义
该研究为骨骼肌发育提供了新的靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

LMOD家族在骨骼肌中的表达特征分析

评估LMOD1-3在猪组织和C2C12细胞增殖分化过程中的表达变化,以确定研究对象。

通过qRT-PCR和Western blot检测猪组织和C2C12细胞中LMOD1-3的表达,并观察肌肉损伤和发育过程中的蛋白变化。

2

LMOD2敲除细胞系的构建及表型分析

明确LMOD2缺失对成肌细胞增殖和肌纤维类型的影响。

利用CRISPR-Cas9构建LMOD2敲除的C2C12细胞系,通过qRT-PCR、Western blot和免疫荧光检测肌纤维类型标志物及增殖相关蛋白。

3

转录组测序分析LMOD2敲除的影响

在转录水平上揭示LMOD2敲除后差异表达基因及其富集通路。

对增殖期和分化期的LMOD2-KO和WT C2C12细胞进行RNA-seq,并进行GO、KEGG和GSEA分析。

4

上游调控因子MyoG和miR-335-3p的验证

验证MyoG是否为LMOD2的转录因子以及miR-335-3p是否直接靶向LMOD2。

通过敲低MyoG和MyoD1检测LMOD2表达,双荧光素酶报告实验验证MyoG和miR-335-3p对LMOD2的靶向调控。

5

LMOD2相互作用蛋白的筛选及验证

寻找与LMOD2相互作用的蛋白并验证其功能。

利用RNA-seq和STRING数据库筛选候选蛋白,并通过Co-IP验证LMOD2与ACTC1的相互作用,进而通过siRNA敲低ACTC1检测其对肌原性分化的影响。

6

体内验证LMOD2敲低对肌肉质量的影响

验证LMOD2在体内对骨骼肌质量和肌纤维类型的作用。

通过肌肉注射慢病毒介导的shRNA敲低小鼠骨骼肌中LMOD2,检测肌肉重量和肌纤维类型标志物的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
马血清Gibco--
C2C12细胞ATCC--
293T细胞ATCC--
脂质体2000Invitrogen--
TRIzol试剂Invitrogen--
SYBR Green试剂盒TransGen--
CCK-8试剂盒AFExBIO--
RIPA裂解液Beyotime--
LMOD1抗体Proteintech15117-1-AP
LMOD2抗体Affinity BiosciencesDF15006
LMOD3抗体Proteintech14948-1-AP
MyHC-I抗体Proteintech22280-1-AP
MYHC-2a抗体DSHB2F7
MyHC-2x抗体Proteintech67299-1-Ig
MyHC-2b抗体DSHBBF-F3
PAX7抗体Proteintech20570-1-AP
MyoD1抗体HuaBioER1913-45
MyoG抗体HuaBioHA721688
ACTC1抗体Proteintech11032-1-AP
MYH3抗体Biossbs-10905R
β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
GAPDH抗体Proteintech10494-1-AP
二抗BiodragonBF03001X和BF03008X
MyHC-I抗体Proteintech22280-1-AP
MyH-2b抗体Invitrogen14-6503-80
MyHC-2x抗体Proteintech67299-1-Ig
MyHC-2a抗体DSHB2F7
二抗Bioss; ZENBIObs-0296G-Cy3;
DAPI----
Leica SP8显微镜Leica--
Pierce™蛋白A/G琼脂糖珠Invitrogen--
心脏毒素BOYAO9012-91-3
LV3载体GenePharma--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本获取与处理
猪品种、年龄、采样部位;肌肉损伤模型注射剂量(40µM Cardiotoxin 1mL)及时间点(1、4、16天)
阅读提示:Methods中Sample Preparation
细胞培养
C2C12和293T细胞培养条件(DMEM+10%FBS或2%马血清,5%CO2,37℃)
阅读提示:Methods中Cell culture
基因敲除与敲低
CRISPR-Cas9靶向LMOD2外显子1的gRNA序列;siRNA序列(如si-ACTC1-1073);转染试剂及条件
阅读提示:Methods中Plasmids, siRNAs, and transfection、Generation of LMOD2 knockout C2C12 cells
表达检测
抗体稀释比例(如1:1000或1:500);qRT-PCR引物序列;内参基因选择(β-actin、GAPDH)
阅读提示:Methods中Western blot analysis、Total RNA extraction and quantitative Real-time PCR
功能实验
CCK-8实验细胞密度(1×10^6)和检测时间点(0、24、48h);免疫荧光染色固定和通透条件
阅读提示:Methods中Cell counting Kit-8 (CCK-8) assay、Immunofluorescence assay
体内实验
小鼠品系、性别、周龄(4周龄C57BL/6j雄性);慢病毒注射剂量、频率(每周一次共4周);肌肉收集时间
阅读提示:Methods中Lentiviruses mediated LMOD2 knockdown in skeletal muscles