生信分析筛选DEGs
识别DKD肾小管中差异表达基因,关注PLK2。
从GEO数据库获取GSE30529数据集,包含10个糖尿病肾小管样本和12个非糖尿病样本,使用limma包筛选DEGs(|log2FC|>1, p<0.05),并用火山图和热图可视化。
Polo-like kinase2 regulates renal tubulointerstitial fibrosis via notch signaling pathway in diabetic kidney disease.
包含GEO数据集分析、动物模型、细胞实验、分子对接、Co-IP、功能验证和机制验证等多个独立证据层级。
C57BL/6J小鼠DKD模型(高脂饮食联合链脲佐菌素诱导) HK-2人肾近端小管上皮细胞系 HEK-293T细胞
DKD小鼠模型:C57BL/6J雄性小鼠,皮下注射STZ(50 mg/kg/天,连续5天),高脂饮食(D12492)4周,16周后评估 HG处理浓度:30 mM高糖处理HK-2细胞 si-PLK2转染浓度:50 nM,转染48小时 DAPT处理:Notch信号通路抑制剂,处理HG诱导的HK-2细胞 Co-IP检测:FLAG-PLK2转染HEK-293T细胞,抗Flag beads免疫沉淀
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
识别DKD肾小管中差异表达基因,关注PLK2。
从GEO数据库获取GSE30529数据集,包含10个糖尿病肾小管样本和12个非糖尿病样本,使用limma包筛选DEGs(|log2FC|>1, p<0.05),并用火山图和热图可视化。
建立糖尿病肾病小鼠模型,并检测PLK2和纤维化标志物的表达。
C57BL/6J小鼠高脂饮食4周后注射STZ,16周后检测血糖、体重、UACR、血肌酐,进行组织染色和分子检测。
验证PLK2在体外高糖条件下对肾纤维化的影响。
HK-2细胞用30mM高糖处理,检测PLK2和纤维化标志物表达;转染si-PLK2敲低PLK2,检测纤维化标志物变化。
证实PLK2与NOTCH1之间的蛋白相互作用。
使用GRAMM-X进行分子对接,分析PLK2和NOTCH1的结合位点;在HEK-293T细胞中共转染FLAG-PLK2,通过Co-IP验证相互作用。
验证PLK2通过Notch信号通路促进纤维化,并确认HES1的下游作用。
在HG诱导的HK-2细胞中敲低PLK2,检测Notch通路靶基因(NOTCH1, HEY1, HES1)表达;过表达HES1观察对纤维化标志物的影响;使用DAPT抑制Notch通路验证其对纤维化的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型构建 | 链脲佐菌素 | Biofroxx | -- |
| 动物模型构建(高脂饮食) | D12492高脂饲料 | HFK Bioscience | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | TaKaRa | -- |
| 逆转录 | PrimeScript RT Master Mix逆转录试剂盒 | Takara | -- |
| qRT-PCR | SYBR Premix Ex Taq定量PCR试剂 | Takara | -- |
| LightCycler 480实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| RNA质量检测 | NanoDrop微量分光光度计 | Thermo Fisher | -- |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Fdbio science | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Takara | -- |
| 蛋白电泳 | SDS-PAGE凝胶电泳 | Bio-Rad | -- |
| 蛋白转膜 | PVDF膜 | Millipore | -- |
| 封闭 | 脱脂奶粉 | Sigma | -- |
| Western blot检测 | 增强化学发光底物 | Fdbio science | -- |
| Western blot成像 | GelView 6000 Pro凝胶成像系统 | -- | -- |
| 免疫荧光 | DAPI染色液 | -- | -- |
| 免疫荧光显微镜 | Imager D2荧光显微镜 | ZEISS | -- |
| 免疫共沉淀 | 抗Flag磁珠 | Bimake | B26101 |
| 免疫组化 | 抗PLK2抗体 | Bioss | bs-12730R |
| 抗FN1抗体 | Proteintech | 15613-1-AP | |
| 抗CTGF抗体 | Proteintech | 25474-1-AP | |
| 抗αSMA抗体 | Proteintech | 14395-1-AP | |
| Western blot | 抗FN抗体 | Proteintech | 15613-1-AP |
| 抗CTGF抗体 | Proteintech | 25474-1-AP | |
| 抗αSMA抗体 | Proteintech | 14395-1-AP | |
| 抗PLK2抗体 | Abclonal | A7066 | |
| 抗NOTCH1抗体 | Abclonal | A7636 | |
| 抗HEY1抗体 | Proteintech | 19929-1-AP | |
| 抗HES1抗体 | Abclonal | A11718 | |
| 抗β-微管蛋白抗体 | Proteintech | 10094-1-AP | |
| Western blot二抗 | 山羊抗小鼠二抗 | Proteintech | SA00001-1 |
| 山羊抗兔二抗 | Proteintech | SA00001-2 | |
| 免疫荧光二抗 | 二抗(Invitrogen) | Invitrogen | A11008 |
| 免疫共沉淀 | 抗Flag抗体 | Proteintech | 20543-1-AP |
| 药物处理 | DAPT | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | C57BL/6J雄性小鼠,6-7周龄;高脂饮食(D12492)4周,STZ剂量50 mg/kg/天×5天;随机血糖>16.7 mmol/L确认模型;16周后处死;样本量:对照组和DM组各8只。 阅读提示:Methods 2.2 Animal modeling and grouping |
| 细胞培养与处理 | HK-2细胞培养于DMEM(5.5 mM葡萄糖)+10% FBS;高糖处理30 mM葡萄糖;si-PLK2转染浓度50 nM,48小时;过表达HES1质粒pcDNA3-HES1。 阅读提示:Methods 2.4 Cell culture and transfection |
| 分子相互作用 | 分子对接使用GRAMM-X,PDB结构;Co-IP使用FLAG-PLK2质粒转染HEK-293T细胞,anti-Flag beads。 阅读提示:Methods 2.8 Co-immunoprecipitation, 2.9 Molecular docking analysis |
| 通路抑制 | DAPT处理HG诱导的HK-2细胞,但文中未明确剂量和时间。 阅读提示:Methods 2.4 Cell culture and transfection; Results 3.6 |
| 检测指标 | qRT-PCR引物序列见表S1;Western blot抗体稀释比例;内参β-actin(qRT-PCR)和β-Tubulin(Western blot)。 阅读提示:Methods 2.5, 2.6; Table S1 |