神经源性异位骨化中的器官间通讯:脑源性细胞外囊泡的作用

Interorgan communication in neurogenic heterotopic ossification: the role of brain-derived extracellular vesicles.

作者信息Weicheng Lu, Jianfei Yan, Chenyu Wang, Wenpin Qin, Xiaoxiao Han, Zixuan Qin, Yu Wei, Haoqing Xu, Jialu Gao, Changhe Gao, Tao Ye, Franklin R Tay, Lina Niu, Kai Jiao
PMID38383487
期刊Bone Res
发布时间2024-02-22
DOI10.1038/s41413-023-00310-8

实验完整度

高

研究包含体内动物模型(TBI+跟腱切断术)、体外细胞实验(成纤维细胞与BEVs共培养)、BEVs表征、功能验证(BEVs注射及GW4869抑制)、机制验证(HMGB1、NLRP3、CASPASE-1、GSDMD)及治疗干预(Ac-YVAD-cmk)。

主要模型

大鼠神经源性异位骨化模型(创伤性脑损伤联合跟腱切断术) L929小鼠成纤维细胞系 大鼠原代BEVs

重点核对

BEVs定量:血浆和肌腱中L1CAM+ CD63+ BEVs随时间变化 HMGB1在BEVs中的表达及含量 BEVs诱导成纤维细胞焦亡(N-GSDMD、CASPASE-1) BEVs注射后异位骨化的量化(BMD、BV) Ac-YVAD-cmk抑制焦亡及异位骨化

摘要

脑源性细胞外囊泡通过运输病原体引发继发性损伤,参与创伤性脑损伤后的器官间通讯。包裹在脑源性细胞外囊泡中的炎症小体相关蛋白可穿过血脑屏障到达远端组织。这些蛋白引发炎症功能障碍,如神经源性异位骨化。这种复发性疾病因发病机制相对未知且缺乏有效的预防干预策略而使患者高度衰弱。因此,建立了创伤性脑损伤联合跟腱切断术诱导的神经源性异位骨化大鼠模型以解决这两个问题。损伤肌腱的组织学检查显示异位钙化和成纤维细胞焦亡共存。在体外和体内进一步研究了脑源性细胞外囊泡、成纤维细胞焦亡和异位钙化之间的关系。静脉注射焦亡抑制剂Ac-YVAD-cmk在体内逆转了神经源性异位骨化的发展。本研究强调了脑源性细胞外囊泡在神经源性异位骨化发病机制中的作用,并为创伤性脑损伤后预防神经源性异位骨化提供了潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
脑源性细胞外囊泡是否参与创伤性脑损伤后神经源性异位骨化的发生,以及焦亡抑制剂能否预防其发生?
核心机制
BEVs携带HMGB1激活NLRP3炎症小体,促进CASPASE-1和N-GSDMD介导的成纤维细胞焦亡,焦亡导致钙磷浓度升高,创造促成骨微环境,促进异位骨化。
主要证据
体内模型(TBI+跟腱切断术)显示BEVs在损伤肌腱中积聚,成纤维细胞焦亡伴随钙沉积;体外BEVs与L929细胞共培养诱导焦亡和钙沉积;HMGB1在BEVs中高表达;注入BEVs加重异位骨化,GW4869抑制BEVs减少骨化;Ac-YVAD-cmk抑制焦亡逆转NHO。
研究意义
本研究为神经源性异位骨化的发病机制提供了见解,并表明焦亡抑制可能是一种预防策略,但临床有效性需进一步研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立神经源性异位骨化大鼠模型

建立创伤性脑损伤联合跟腱切断术的大鼠模型,以模拟NHO并检测异位骨化。

雄性SD大鼠(6周龄,150-170g)行双侧跟腱切断术和CCI手术,设置sham、HO和NHO组。术后不同时间点(1、3、5周)取材。

2

表征BEVs在NHO中的作用

检测BEVs在损伤肌腱和血浆中的水平,并表征其特性。

通过免疫荧光检测L1CAM和CD63共定位;通过超速离心和亲和纯化分离血浆BEVs;通过NTA、TEM、Western blot表征BEVs。

3

验证BEVs是NHO的诱发因素

验证BEVs是否足以诱导或加重异位骨化。

将BEVs静脉注射到仅行跟腱切断的大鼠中,3周后检测异位骨化;使用GW4869抑制BEVs分泌,观察骨化减少。

4

鉴定BEVs内容物

确定BEVs中致病蛋白。

通过质谱分析BEVs蛋白,发现HMGB1,并通过Western blot验证其含量。

5

证明BEVs诱导成纤维细胞焦亡

验证BEVs在体内和体外诱导成纤维细胞焦亡。

体内:TUNEL染色、NLRP3和CASPASE-1免疫组化、α-SMA和N-GSDMD共定位;体外:PKH26标记BEVs与L929共培养,检测焦亡标志。

6

验证BEVs诱导异位钙化

检测BEVs引起的成纤维细胞焦亡是否导致钙沉积。

体外五组:对照、总EVs、BEVs、BEV-depleted EVs、BEVs+CASPASE-1抑制剂;培养后Alizarin red染色和钙、磷浓度检测。体内:注射PKH26标记的BEVs到大鼠肌腱,检测钙沉积和元素分析。

7

测试焦亡抑制剂的预防作用

评估CASPASE-1抑制剂Ac-YVAD-cmk对NHO的预防效果。

在NHO模型大鼠中静脉注射Ac-YVAD-cmk,3周后检测异位骨化程度及焦亡水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
异氟烷----
番红O和固绿Sigma-AldrichS8884
茜素红SMilliporeSigma--
DAPIInvitrogen--
QuickBlock™一抗稀释液BeyotimeP0262
NLRP3抗体AffinityDF15549
CASPASE-1 p20抗体AffinityAF4005
山羊血清BeyotimeC0265
磷酸盐缓冲液BeyotimeP1020
抗兔IgG二抗MXBKit-5010
DAB显色液MXBDAB-4033
α-SMA抗体AffinityBF9212
N-GSDMD抗体AffinityDF13758
L1CAM抗体Biossbs-1996R
CD63抗体Proteintech67605-1-Ig
F4/80抗体AffinityDF2789
CD4抗体AffinityDF16080
Ly6G抗体Biorbytorb322983
Alexa Fluor 488亲和纯化驴抗小鼠IgGPlantChemMed BiologyPC-80014
Alexa Fluor 594亲和纯化驴抗兔IgGPlantChemMed BiologyPC-80009
TUNEL染色试剂盒BeyotimeC1091
Hoechst/PI染色试剂盒BeyotimeCA1120
乙酸铀酰----
柠檬酸铅----
六甲基二硅氮烷Electron Microscopy Sciences--
抗L1CAM抗体Abcamab272733
二抗ProteintechSA00014-9
生物素化L1CAM抗体Biossbs-1996R-Bio
链霉亲和素-琼脂糖UltraLink树脂Yeasen20512ES08
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物Thermo Fisher Scientific78440
木瓜蛋白酶SigmaP4762
BCA蛋白定量试剂盒SolarbioPC0020
RIPA裂解液BeyotimeP0013F
PVDF膜MerckIEVH85R
TSG101抗体AbcamAb125011
CD9抗体AbcamAb92726
CD63抗体Santa CruzSc-5275
L1CAM抗体BiossBS-1996R
Calnexin抗体Proteintech10427-2-AP
抗兔IgGCell Signaling Technology7074
抗小鼠IgGSigma-AldrichA9044
增强化学发光HRP底物MilliporeWBKLS0100
DMEM培养基PricellaPM150421
胎牛血清PlantChemMed BiologyPC-00001
青霉素链霉素溶液PlantChemMed BiologyPC-86115
PKH26Sigma-AldrichPKH26GL-1KT
鬼笔环肽Sigma-Aldrich49409-10NMOL
Ac-YVAD-cmkMedChemExpressHY-16990
GW4869Sigma-AldrichD1692
吲哚美辛Solarbio53-86-1
HMGB1抗体AffinityAF7020
β-actin抗体Cell Signaling Technology4970S
Orbitrap Eclipse Tribrid质谱仪Thermo Fisher Scientific--
电感耦合等离子体发射光谱仪Agilent--
OCT包埋剂Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
大鼠品系、性别、年龄、体重;手术步骤(跟腱切断术和CCI);CCI参数(速度、深度);麻醉方法;分组及对照;术后镇痛
阅读提示:Methods 'Rat models'
BEVs分离与表征
血浆分离步骤;超速离心参数(转速、时间);L1CAM亲和纯化步骤;BEVs浓度测定(BCA法);BEVs纯度(标志物表达)
阅读提示:Methods 'Plasma BEVs isolation'和'Characterization of BEVs'
体外细胞实验
细胞系(L929)、培养条件(培养基、血清浓度、CO2);BEVs浓度(500μg/dish);共培养时间(24h、3天、7天);分组(对照、EVs、BEVs、BEV-depleted、BEVs+抑制剂);抑制剂浓度
阅读提示:Methods 'Cell culture'、'Exosome labeling and cellular uptake assay'、'Western blot analysis of fibroblast pyroptosis in response to BEVs'
体内BEVs注射
BEVs来源、注射剂量(100μL,6μg/μL)、注射途径(静脉)、注射时间;取材时间点
阅读提示:Methods 'Fluorescence imaging analysis of BEV distribution'
焦亡抑制实验
Ac-YVAD-cmk剂量(1μg/只)、给药途径(静脉)、频率(每周三次);GW4869剂量(250μg/100g体重)、给药途径(静脉)、频率(每周两次);吲哚美辛剂量(3mg/kg)、给药途径(口服)
阅读提示:Methods 'Ac-YVAD-cmk Injections'、'GW4869 administration'、'Indomethacin administration'
结果检测
micro-CT参数(能量、电流、分辨率);骨形态参数(BMD、BV、Tb.Th、Tb.N);组织学染色方法;免疫组化和免疫荧光抗体及稀释;统计方法
阅读提示:Methods 'Micro-CT'、'Histological evaluation'、'Immunohistochemistry'、'Statistical analysis'