下调miR-200c通过靶向MLCK介导的通路减轻血管紧张素II诱导的心脏肥大

Down-regulation of miR-200c attenuates AngII-induced cardiac hypertrophy via targeting the MLCK-mediated pathway.

作者信息Shan Hu, Mian Cheng, Xin Guo, Shun Wang, Beilei Liu, Hong Jiang, Congxin Huang, Gang Wu
PMID30680929
发布时间2019-04
DOI10.1111/jcmm.14135

实验完整度

包含体内大鼠主动脉缩窄模型和体外AngII诱导的心肌细胞模型,并通过功能获得/丧失实验、荧光素酶报告基因和生化检测验证机制。

主要模型

主动脉缩窄(AB)大鼠模型 AngII诱导的新生大鼠心肌细胞(NCMs)肥大模型 HEK 293细胞(用于荧光素酶报告基因实验)

重点核对

miR-200c mimics浓度为50 nmol/L, inhibitor浓度为100 nmol/L,转染时间6小时后更换培养基。 AngII处理浓度1 μmol/L,处理时间48小时。 ML-7(MLCK抑制剂)浓度10 μmol/L,处理时间48小时。 大鼠主动脉缩窄手术:6周龄雄性SD大鼠,7-0丝线结扎腹主动脉,22号针头,缩窄至外径约0.3 mm,术后4周分析。 细胞表面面积测定采用α-actinin免疫荧光染色,每组至少100个细胞。

摘要

背景:微小RNA已被证明通常参与心脏肥大(CH)。本研究旨在检验miR-200c通过靶向肌球蛋白轻链激酶(MLCK/MYLK)在CH进展中发挥重要作用的假设。方法和结果:通过大鼠主动脉缩窄(AB)诱导心脏肥大。用AngII处理新生大鼠心肌细胞(NCMs)诱导细胞肥大。使用超声心动图、组织学和分子测量来评估实验结果。还测量了凋亡水平和活性氧(ROS)。使用定量实时PCR(qRT-PCR)和Western blotting分别测量mRNA和蛋白质水平。目前的结果表明,在体内和体外,miR-200c的表达响应CH而增加。通过特异性抑制剂下调miRNA-200c可显著改善AngII处理引起的心脏肥大,并且心房利钠肽、脑利钠肽和β-肌球蛋白重链的mRNA水平同时降低。值得注意的是,在AngII诱导的肥大心肌细胞中观察到极少的凋亡和ROS积累。相反,使用特异性模拟物上调miR-200c逆转了这些效应。机制研究表明,MLCK基因是miR-200c的直接靶标;miR-200c水平的增加导致MLCK及其下游效应物p-MLC2的表达降低,而miR-200c抑制则增加了这些蛋白质的表达。此外,抑制MLCK削弱了敲低miR-200c产生的抗肥大作用。结论:我们的研究表明,miR-200c可能作为延缓肥大的潜在治疗靶点。我们还发现了miR-200c和MLCK之间的关系,确定MLCK是miR-200c的直接介质。关键词:凋亡,心脏肥大,miR-200c,肌球蛋白轻链激酶,活性氧。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
miR-200c是否在心脏肥大的发生发展中发挥作用,以及其是否通过靶向MLCK介导的机制实现。
核心机制
miR-200c直接靶向MLCK的3'UTR,负调控MLCK表达及其下游p-MLC2,从而促进心肌细胞肥大、凋亡和ROS生成。
主要证据
在AB大鼠和AngII处理的NCMs中,miR-200c上调,cMLCK下调;miR-200c抑制剂减轻肥大,miR-200c模拟物加重肥大;荧光素酶报告实验证实MLCK为直接靶点;ML-7抑制MLCK逆转了miR-200c抑制剂的作用。
研究意义
miR-200c可能是延缓心脏肥大的潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立心脏肥大模型

在体内和体外诱导心脏肥大,以研究miR-200c的表达变化。

对大鼠进行主动脉缩窄手术,对新生大鼠心肌细胞进行AngII处理。

2

检测miR-200c表达

检测miR-200c在心脏肥大模型中的表达水平。

通过qRT-PCR检测心肌组织和NCMs中miR-200c的表达。

3

功能获得与丧失实验

验证miR-200c对心肌细胞肥大的影响。

将miR-200c模拟物或抑制剂转染至NCMs,然后进行AngII处理,评估细胞表面积和肥大标志物mRNA水平。

4

凋亡和氧化应激检测

评估miR-200c对凋亡和氧化应激的影响。

使用流式细胞术检测凋亡,使用DCFH-DA探针检测ROS,并测量MDA和SOD。

5

靶基因验证

验证MLCK是否为miR-200c的直接靶基因。

构建野生型和突变型MLCK 3'UTR荧光素酶报告质粒,与miR-200c mimics共转染HEK 293细胞,检测荧光素酶活性。

6

下游蛋白表达分析

检测miR-200c对MLCK信号通路蛋白表达的影响。

通过Western blot检测MLCK、MLC2和p-MLC2的表达。

7

逆转实验

证明miR-200c抑制剂的作用依赖于MLCK。

用miR-200c抑制剂和ML-7共同处理细胞,评估心肌细胞肥大标志物。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
水合氯醛----
II型胶原酶Sigma--
胰蛋白酶Gibco--
DMEM/F-12培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
溴脱氧尿苷Sigma--
青霉素/链霉素HyClone--
Lipofectamine 2000Invitrogen--
OPTI-MEM培养基Gibco--
血管紧张素II----
ML-7Sigma--
抗α-actinin一抗Sigma--
Alexa Fluor-555二抗Molecular Probes--
DAPISigma-Aldrich--
FITC-膜联蛋白V/PI凋亡试剂盒Beyotime--
流式细胞仪BD Biosciences--
DCFH-DA试剂盒Beyotime--
MDA检测试剂盒Beyotime--
SOD检测试剂盒Beyotime--
pmirGLO荧光素酶载体Promega--
pRL-SV40海肾荧光素酶对照载体Promega--
双荧光素酶报告系统Promega--
TRIzol试剂Invitrogen--
Transcriptor First Strand cDNA合成试剂盒Roche--
SYBR Green PCR预混液Roche--
ABI-7900实时荧光定量PCR仪Applied Biosystems--
RIPA裂解液Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
聚偏二氟乙烯膜Millipore--
MLCK抗体Biossbs-9865R
MLC2抗体Enzo Life ScienceF109.3E1
p-MLC2抗体Cell Signaling Technology3671
裂解的caspase-3抗体Novus BiologicalsNB100-56113
Bax抗体Cell Signaling Technology2772
Bcl-2抗体Abcamab59348
GAPDH抗体Abcamab37168
FluorChem E成像系统Cell Biosciences--
SPSS 22.0软件SPSS--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体内动物模型
大鼠品系、年龄、性别、体重(6周龄雄性SD大鼠,200-250g),主动脉缩窄手术具体操作(麻醉剂量、丝线规格、针头大小、缩窄程度),术后时间(4周)。
阅读提示:见2.1节,图1图注。
细胞培养和诱导
新生大鼠心肌细胞分离方法(酶浓度、消化时间),培养基成分,AngII处理浓度(1 μmol/L)和时间(48小时)。
阅读提示:见2.4和2.5节。
转染条件
miRNA mimics/inhibitor浓度(50 nmol/L/100 nmol/L)、转染试剂用量(Lipofectamine 2000 5 μL)、转染时间(6小时)、血清饥饿时间(12小时)。
阅读提示:见2.5节。
凋亡检测
Annexin V/PI染色用量(5 μL FITC-Annexin V和1 μL PI),孵育时间(15分钟),流式细胞仪型号(FACSCalibur)。
阅读提示:见2.7节,图3图注。
ROS检测
DCFH-DA浓度(10 μmol/L)和孵育时间(30分钟),MDA和SOD检测试剂盒品牌(Beyotime)。
阅读提示:见2.8节,图4图注。
荧光素酶报告实验
HEK 293细胞,报告质粒构建(野生型/突变型MLCK 3'UTR),共转染时间(48小时),miR-200c mimics浓度(50 nmol/L)。
阅读提示:见2.9节,图5图注。
Western blot
抗体稀释比例(MLCK 1:1000, MLC2 1:2000, p-MLC2 1:1000等),蛋白上样量,一抗孵育条件(4℃过夜)。
阅读提示:见2.11节。