建立心脏肥大模型
在体内和体外诱导心脏肥大,以研究miR-200c的表达变化。
对大鼠进行主动脉缩窄手术,对新生大鼠心肌细胞进行AngII处理。
Down-regulation of miR-200c attenuates AngII-induced cardiac hypertrophy via targeting the MLCK-mediated pathway.
包含体内大鼠主动脉缩窄模型和体外AngII诱导的心肌细胞模型,并通过功能获得/丧失实验、荧光素酶报告基因和生化检测验证机制。
主动脉缩窄(AB)大鼠模型 AngII诱导的新生大鼠心肌细胞(NCMs)肥大模型 HEK 293细胞(用于荧光素酶报告基因实验)
miR-200c mimics浓度为50 nmol/L, inhibitor浓度为100 nmol/L,转染时间6小时后更换培养基。 AngII处理浓度1 μmol/L,处理时间48小时。 ML-7(MLCK抑制剂)浓度10 μmol/L,处理时间48小时。 大鼠主动脉缩窄手术:6周龄雄性SD大鼠,7-0丝线结扎腹主动脉,22号针头,缩窄至外径约0.3 mm,术后4周分析。 细胞表面面积测定采用α-actinin免疫荧光染色,每组至少100个细胞。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
在体内和体外诱导心脏肥大,以研究miR-200c的表达变化。
对大鼠进行主动脉缩窄手术,对新生大鼠心肌细胞进行AngII处理。
检测miR-200c在心脏肥大模型中的表达水平。
通过qRT-PCR检测心肌组织和NCMs中miR-200c的表达。
验证miR-200c对心肌细胞肥大的影响。
将miR-200c模拟物或抑制剂转染至NCMs,然后进行AngII处理,评估细胞表面积和肥大标志物mRNA水平。
评估miR-200c对凋亡和氧化应激的影响。
使用流式细胞术检测凋亡,使用DCFH-DA探针检测ROS,并测量MDA和SOD。
验证MLCK是否为miR-200c的直接靶基因。
构建野生型和突变型MLCK 3'UTR荧光素酶报告质粒,与miR-200c mimics共转染HEK 293细胞,检测荧光素酶活性。
检测miR-200c对MLCK信号通路蛋白表达的影响。
通过Western blot检测MLCK、MLC2和p-MLC2的表达。
证明miR-200c抑制剂的作用依赖于MLCK。
用miR-200c抑制剂和ML-7共同处理细胞,评估心肌细胞肥大标志物。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 水合氯醛 | -- | -- |
| 细胞培养 | II型胶原酶 | Sigma | -- |
| 胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| DMEM/F-12培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 溴脱氧尿苷 | Sigma | -- | |
| 青霉素/链霉素 | HyClone | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 2000 | Invitrogen | -- |
| OPTI-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 血管紧张素II | -- | -- |
| ML-7 | Sigma | -- | |
| 免疫荧光 | 抗α-actinin一抗 | Sigma | -- |
| Alexa Fluor-555二抗 | Molecular Probes | -- | |
| DAPI | Sigma-Aldrich | -- | |
| 凋亡检测 | FITC-膜联蛋白V/PI凋亡试剂盒 | Beyotime | -- |
| 流式分析 | 流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| ROS检测 | DCFH-DA试剂盒 | Beyotime | -- |
| MDA检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| SOD检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 荧光素酶报告实验 | pmirGLO荧光素酶载体 | Promega | -- |
| pRL-SV40海肾荧光素酶对照载体 | Promega | -- | |
| 双荧光素酶报告系统 | Promega | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Transcriptor First Strand cDNA合成试剂盒 | Roche | -- | |
| SYBR Green PCR预混液 | Roche | -- | |
| ABI-7900实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- | |
| MLCK抗体 | Bioss | bs-9865R | |
| MLC2抗体 | Enzo Life Science | F109.3E1 | |
| p-MLC2抗体 | Cell Signaling Technology | 3671 | |
| 裂解的caspase-3抗体 | Novus Biologicals | NB100-56113 | |
| Bax抗体 | Cell Signaling Technology | 2772 | |
| Bcl-2抗体 | Abcam | ab59348 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab37168 | |
| FluorChem E成像系统 | Cell Biosciences | -- | |
| 统计分析 | SPSS 22.0软件 | SPSS | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体内动物模型 | 大鼠品系、年龄、性别、体重(6周龄雄性SD大鼠,200-250g),主动脉缩窄手术具体操作(麻醉剂量、丝线规格、针头大小、缩窄程度),术后时间(4周)。 阅读提示:见2.1节,图1图注。 |
| 细胞培养和诱导 | 新生大鼠心肌细胞分离方法(酶浓度、消化时间),培养基成分,AngII处理浓度(1 μmol/L)和时间(48小时)。 阅读提示:见2.4和2.5节。 |
| 转染条件 | miRNA mimics/inhibitor浓度(50 nmol/L/100 nmol/L)、转染试剂用量(Lipofectamine 2000 5 μL)、转染时间(6小时)、血清饥饿时间(12小时)。 阅读提示:见2.5节。 |
| 凋亡检测 | Annexin V/PI染色用量(5 μL FITC-Annexin V和1 μL PI),孵育时间(15分钟),流式细胞仪型号(FACSCalibur)。 阅读提示:见2.7节,图3图注。 |
| ROS检测 | DCFH-DA浓度(10 μmol/L)和孵育时间(30分钟),MDA和SOD检测试剂盒品牌(Beyotime)。 阅读提示:见2.8节,图4图注。 |
| 荧光素酶报告实验 | HEK 293细胞,报告质粒构建(野生型/突变型MLCK 3'UTR),共转染时间(48小时),miR-200c mimics浓度(50 nmol/L)。 阅读提示:见2.9节,图5图注。 |
| Western blot | 抗体稀释比例(MLCK 1:1000, MLC2 1:2000, p-MLC2 1:1000等),蛋白上样量,一抗孵育条件(4℃过夜)。 阅读提示:见2.11节。 |