编码大鼠HER2胞外域的mRNA-LNP疫苗诱导强效CD8+ T细胞反应并提供预防性肿瘤保护

Robust CD8+ T cell responses induced by an mRNA-LNP vaccine encoding rat HER2 extracellular domain confer prophylactic tumor protection.

作者信息Kexin Li, Xiaoya Li, Cong Zhang, Suli Dai, Lei Li, Jun Wang, Hongtao Zhang, Lianmei Zhao
PMID41993212
发布时间2026-04-01
DOI10.3389/fimmu.2026.1737558

实验完整度

包含mRNA-LNP制备与表征、细胞系实验、小鼠预防模型、免疫学检测(流式、ELISA、ELISpot、杀伤实验)及安全性评估等多层级实验验证。

主要模型

BALB/c小鼠4T1-HER2乳腺癌预防模型 4T1-HER2细胞系(高表达HER2)

重点核对

疫苗剂量:10 μg/只,肌肉注射,第1、15、29天免疫 肿瘤攻击:2×10^5个4T1-HER2细胞皮下接种 抗PD-1给药:100 μg/只,腹腔注射,每7天一次,共3次 肿瘤体积测量:每2天一次,公式V=(L×W×H)×0.5236 样本量:预防实验每组3只,联合实验每组6只

摘要

背景:HER2阳性癌症面临耐药性、毒性和免疫耐受等挑战。靶向HER2的肽疫苗在临床上已失败,而核苷修饰的mRNA-脂质纳米颗粒(mRNA-LNP)疫苗在诱导强效抗肿瘤免疫方面显示出前景。本研究利用异源免疫(大鼠HER2胞外域,rHER2 ECD)来克服HER2耐受,开发了一种安全的mRNA-LNP疫苗,并探索其与抗PD-1疗法的协同作用。方法:我们合成了N1-甲基假尿苷(m1ψ)修饰的mRNA,分别编码单独的rHER2 ECD(rHER2 ECD mRNA-LNP)或rHER2 ECD与小鼠IFNγ的融合蛋白(rHER2 ECD-IFNγ mRNA-LNP),然后通过微流控混合将其封装到LNP中。BALB/c小鼠在第1、15、29天免疫,末次免疫后2周用过表达HER2的4T1(4T1-HER2)细胞攻击。通过肿瘤生长评估疗效,通过流式细胞术、ELISA、ELISpot和细胞毒性实验评估免疫反应,通过体重/器官重量和血清标志物评估安全性。结果:HER2 ECD mRNA-LNP表现出>80%的封装效率和窄的粒径分布。作为单一疗法,rHER2 ECD mRNA-LNP诱导高滴度的抗HER2抗体、多功能CD8+ T细胞(IFNγ+/TNFα+)和持久的记忆T细胞,实现87.0%的肿瘤抑制率。该抑制率显著高于rHER2 ECD-IFNγ mRNA-LNP变体(21.9%的肿瘤抑制率),后者诱导了抗IFNγ中和抗体。与抗PD-1单克隆抗体(mAb)联合使用进一步增强了肿瘤抑制,2/6的肿瘤未能建立。这种协同作用由肿瘤微环境(TME)中组织驻留记忆T(TRM)细胞的富集驱动,在CD4+ T细胞中达到15.2%,在CD8+ T细胞中达到12.9%。未观察到系统性毒性。结论:rHER2 ECD mRNA-LNP有效规避了HER2特异性免疫耐受。作为一个有效且安全的平台,它诱导强效的协调体液和细胞免疫,并通过TME中TRM细胞的富集显著增强检查点阻断的疗效,这凸显了其在HER2阳性癌症治疗中的巨大潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
异源rHER2 ECD mRNA-LNP疫苗能否克服HER2特异性免疫耐受并诱导有效的抗肿瘤免疫,以及与PD-1阻断联合是否能增强疗效?
核心机制
rHER2 ECD mRNA-LNP通过异源免疫原理打破HER2耐受,诱导强效的体液和CD8+ T细胞免疫;与抗PD-1联合通过富集肿瘤微环境中的组织驻留记忆T(TRM)细胞(而非增加T细胞数量)实现协同抗肿瘤作用。
主要证据
在4T1-HER2肿瘤模型中,rHER2 ECD mRNA-LNP单药实现87.0%肿瘤抑制,诱导高滴度抗HER2抗体、IFNγ+TNFα+双阳性CD8+ T细胞和记忆T细胞;联合抗PD-1后肿瘤抑制增强,2/6肿瘤未建立,且TME中TRM细胞比例显著升高。
研究意义
该mRNA-LNP平台为HER2阳性癌症的预防和早期治疗提供了有效且安全的策略,并为TRM介导的与免疫检查点抑制剂的协同作用提供了机制见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

mRNA-LNP疫苗制备与表征

构建并验证编码rHER2 ECD或rHER2 ECD-IFNγ的mRNA-LNP疫苗的物理化学特性。

通过体外转录合成m1ψ修饰的mRNA,封装于LNP;表征粒径、多分散指数、Zeta电位和封装效率。

2

预防性免疫与肿瘤攻击

评估疫苗在体内对HER2阳性肿瘤的预防效果。

BALB/c小鼠免疫3次,末次免疫后2周皮下接种4T1-HER2细胞,监测肿瘤生长。

3

抗体与细胞因子检测

评估疫苗诱导的体液免疫反应和抗原特异性细胞因子分泌。

ELISA检测血清抗HER2抗体滴度及脾细胞培养上清中IFNγ、TNFα、IL-2、IL-4水平。

4

T细胞亚群与功能分析

分析疫苗诱导的T细胞效应功能和记忆分化。

流式细胞术检测脾脏和肿瘤中CD4+、CD8+ T细胞频率、细胞内细胞因子及记忆亚群;ELISpot检测IFNγ分泌;体外杀伤实验评估细胞毒性。

5

与抗PD-1联合治疗

探索疫苗与PD-1阻断联合的抗肿瘤疗效及机制。

免疫后接种肿瘤,腹腔注射抗PD-1 mAb三次,评估肿瘤生长、TIL和TRM细胞。

6

安全性评估

评估疫苗和联合治疗的系统性毒性。

监测体重、器官重量及血清生化指标(肝、肾、心功能标志物)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
T7 RNA聚合酶New England BiolabsE2040S
N1-甲基假尿苷三磷酸TriLinkN-1081-10
m7G加帽试剂盒New England BiolabsM2080S
2'-O-甲基转移酶New England BiolabsM0366S
大肠杆菌Poly(A)聚合酶New England BiolabsM0276L
Monarch RNA纯化试剂盒New England BiolabsT2050L
Dlin-MC3-DMAAVT--
二硬脂酰磷脂酰胆碱AVT--
胆固醇SigmaC8667-1G
二肉豆蔻酰甘油-聚乙二醇2000AVT--
Nano S微流控仪Unigen Inc.--
D-Tube透析袋MaxiMillipore71509-3
NanoCoulter粒径分析仪RESUNTECH--
RPMI 1640培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
G418SolarbioG8161
支原体检测试剂InvivoGen--
肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec130-096-730
70 μm细胞筛网Miltenyi Biotec130-110-916
红细胞裂解液BiosharpBL503A
白细胞活化混合物BD Biosciences550583
布雷菲德菌素ABD Biosciences555029
BD Fc阻断剂BD Biosciences553142
转录因子缓冲液BD Biosciences562574
大鼠HER2蛋白Sino Biological80079-R08H
小鼠干扰素-γ ELISPOT试剂盒Abcamab64029
ELISA板LABSELECT31111B
牛血清白蛋白SolarbioA8010
HRP标记的亲和纯化山羊抗兔/鼠IgG抗体ProteintechSA00001-1/SA00001-2
TMB底物SolarbioPR1200
ELISA终止液SolarbioC1058
FlexA-200酶标仪----
小鼠IFN-γ ELISA试剂盒MultiSciencesEK280
小鼠TNF-α ELISA试剂盒MultiSciencesEK282
小鼠IL-2 ELISA试剂盒MultiSciencesEK202
小鼠IL-4 ELISA试剂盒MultiSciencesEK204
CCK-8试剂----
抗PD-1单克隆抗体HankeMabClone:

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
mRNA-LNP制备
LNP组分摩尔比(50:10:38.5:1.5)、mRNA与LNP质量比(0.06)、微流控混合参数
阅读提示:Methods Section 2.2, Table 1
免疫方案
疫苗剂量(10 μg/只)、注射途径(肌肉)、免疫时间(第1、15、29天)
阅读提示:Methods Section 2.5.1
肿瘤攻击
4T1-HER2细胞接种数量(2×10^5)、接种部位(右胁腹)、接种时间(末次免疫后2周)
阅读提示:Methods Section 2.5.2
联合治疗
抗PD-1剂量(100 μg/只)、给药途径(腹腔注射)、给药间隔(每7天一次,共3次)
阅读提示:Methods Section 2.5.1
免疫学检测
流式检测的刺激条件(白细胞活化混合物,4小时)、ELISpot刺激条件(2 μg/mL大鼠HER2蛋白,12小时)
阅读提示:Methods Sections 2.7, 2.9