免疫原性细胞死亡和T细胞来源的IFN-γ引发肿瘤杀伤性巨噬细胞以增强OX40免疫治疗

Immunogenic tumor cell death and T-cell-derived IFN-γ elicit tumoricidal macrophages to potentiate OX40 immunotherapy.

作者信息Yanqin Liu, Jiliang Zhao, Kailu Yang, Qiongqiong Ma, Dongping Zhang, Lili Xu, Zhaoyuan Zhang, Zhongqian Yin, Jingru Chen, Yi Wang, Han Wang, Feilong Zhou, Minghui Han, Jie Wang, Fan Li, Yanqin Xu, Yi Yang, Wei Wang, Spencer Huggett, Alexander Chung, Jinping Gan, Bo Zhang, Ziying Zhou, Youjia Cao, Dan Ding, Meiyun Wang, Hongkai Zhang
PMID41895288
发布时间2026-04-21
DOI10.1016/j.xcrm.2026.102699

实验完整度

包含scRNA-seq、流式细胞术、体外巨噬细胞极化、多肿瘤模型体内疗效评估、细胞耗竭及基因敲除小鼠机制验证。

主要模型

MC38结肠癌小鼠模型(人源化OX40小鼠) B16黑色素瘤小鼠模型(人源化OX40小鼠) E.G7淋巴瘤小鼠模型(人源化OX40小鼠) KPC胰腺癌小鼠模型(人源化OX40小鼠)

重点核对

OX40人源化小鼠,6-8周龄雌性C57BL/6J背景 肿瘤细胞皮下接种剂量:MC38和E.G7为1×10^6,B16为5×10^5 Combo治疗:MPLA(1 μg/只)和IFN-γ(5 μg/只)瘤内注射,αOX40(2.5 mg/kg)腹腔注射 抗体治疗剂量:αOX40为5 mg/kg(响应模型评估),Combo中αOX40为2.5 mg/kg 肿瘤体积达到50-100 mm^3时开始治疗,每3天给药

摘要

Liu等人证明IFN-γ和DAMPs协同将肿瘤相关巨噬细胞(TAM)重编程为促炎性NOS2+表型,该表型与改善的OX40免疫治疗反应相关。此外,OX40激动剂介导的调节性T细胞(Treg)耗竭与这些NOS2+ TAM协同促进肿瘤根除。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
OX40激动剂抗体治疗抵抗的机制是什么,如何通过组合策略增强其抗肿瘤疗效?
核心机制
CD8+ T细胞来源的IFN-γ与免疫原性细胞死亡释放的DAMPs(如TLR4配体)协同,通过TLR4信号重编程肿瘤相关巨噬细胞为NOS2+肿瘤杀伤表型;OX40抗体介导的Treg耗竭进一步促进NOS2+巨噬细胞的极化,从而增强抗肿瘤免疫。
主要证据
scRNA-seq和流式细胞术显示OX40应答者肿瘤中NOS2+巨噬细胞富集;体外BMDM实验证明IFN-γ与肿瘤裂解液(含DAMPs)协同上调NOS2,且依赖于TLR4信号;Combo(MPLA+IFN-γ+αOX40)在多种小鼠肿瘤模型中提高治愈率;CD8+ T细胞或巨噬细胞耗竭显著削弱Combo疗效;Nos2敲除小鼠中Combo疗效受损。
研究意义
该研究提出的Combo策略为克服OX40抗体单药治疗局限性、增强OX40靶向免疫治疗疗效提供了潜在解决方案,并强调了机制引导的化疗联合OX40治疗的临床转化潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

基于双侧肿瘤模型区分OX40应答与不应答小鼠

建立对OX40治疗反应差异的体内模型,以比较分析肿瘤微环境差异。

在OX40人源化小鼠双侧皮下接种MC38细胞,给予低剂量OX40激动剂抗体(5 mg/kg),根据T/C%比值区分应答者(<40%)和不应答者(≥40%),切除一侧肿瘤用于scRNA-seq和流式分析,并监测对侧肿瘤。

2

比较应答与不应答肿瘤中的免疫细胞组成和巨噬细胞状态

识别与OX40治疗反应相关的免疫细胞亚群和巨噬细胞表型。

对切除的肿瘤进行scRNA-seq和流式细胞术,分析免疫细胞亚群、T细胞活化状态及巨噬细胞M1/M2极化,并比较应答与不应答组之间的差异。

3

验证IFN-γ和DAMPs协同驱动NOS2+巨噬细胞极化

探究微环境中驱动NOS2+巨噬细胞分化的关键信号。

使用BMDM与活化的CD8+ T细胞上清(IFN-γ来源)和肿瘤细胞冻融裂解液(DAMPs来源)共培养,通过IFN-γ中和抗体和TLR4抑制剂(TAK242)处理,检测NOS2表达;并用MPLA和IFN-γ直接刺激BMDM验证协同作用。

4

评估Combo(MPLA+IFN-γ+OX40抗体)在多种肿瘤模型中的疗效

确定MPLA、IFN-γ与OX40抗体联合能否增强抗肿瘤疗效。

在MC38、B16、E.G7和KPC荷瘤人源化OX40小鼠中,给予MPLA和IFN-γ瘤内注射及OX40抗体腹腔注射,监测肿瘤生长和生存期,并评估治愈后的免疫记忆。

5

确定Combo疗效依赖的关键免疫细胞(CD8+ T细胞和巨噬细胞)

阐明Combo疗法抗肿瘤效应所必需的免疫细胞亚群。

通过抗体介导的细胞耗竭实验,分别清除CD8+ T细胞、NK细胞或巨噬细胞,观察对Combo疗效的影响。

6

验证巨噬细胞NOS2依赖性肿瘤杀伤功能

证明NOS2+巨噬细胞通过NOS2依赖机制直接杀伤肿瘤细胞。

从治疗小鼠的肿瘤或脾脏中分离巨噬细胞,与MC38肿瘤细胞共培养检测杀伤功能;使用NOS2抑制剂L-NIL处理或Nos2敲除小鼠来源的BMDM,评估NOS2在杀伤中的作用。

7

分析OX40抗体介导的Treg耗竭对巨噬细胞极化的影响

解析OX40抗体的Treg耗竭功能在Combo疗效中的必要性及其对巨噬细胞极化的影响。

在Fcer1g KO和FcgrIIb KO小鼠中评估Combo疗效,比较不同Fc段OX40抗体(mIgG2a vs hIgG1)联合MPLA和IFN-γ的效果,并通过体外Treg与BMDM共培养及肿瘤组织免疫荧光分析Treg对NOS2+巨噬细胞极化的影响。

8

探索化疗药物诱导ICD从而增强OX40抗体疗效

寻找临床可及的化疗药物以增强OX40治疗,通过促进NOS2+巨噬细胞极化。

用环磷酰胺(CTX)或5-氟尿嘧啶(5-FU)处理MC38肿瘤细胞并与BMDM共培养,检测NOS2表达;在体内将CTX或5-FU与OX40抗体联合,评估抗肿瘤疗效和肿瘤中NOS2+巨噬细胞比例。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基PricellaPM150210
RPMI 1640培养基PricellaPM150110
胎牛血清Gibco16000-044
青霉素-链霉素PricellaPB180120
HEPESPricellaPB180325
β-巯基乙醇SolarbioM8211
L-谷氨酰胺PricellaPB180419
Brilliant Violet 510™抗小鼠CD45抗体Biolegend103137
FITC抗小鼠CD3抗体Biolegend100204
PerCP/Cyanine5.5抗小鼠CD4抗体Biolegend100540
Brilliant Violet 510™抗小鼠CD8α抗体Biolegend100751
PE/Dazzle™ 594抗小鼠IFNγ抗体Biolegend505845
Pacific Blue™抗小鼠/人CD11b抗体Biolegend101224
PE/Cyanine7抗小鼠F4/80抗体Biolegend123113
PE/Dazzle™ 594抗小鼠CD206抗体Biolegend141732
TruStain FcX™抗小鼠CD16/32抗体Biolegend101320
PE抗小鼠NOS2(iNOS)抗体Biolegend696806
APC抗人/小鼠颗粒酶B抗体Biolegend372204
PE抗小鼠FOXP3抗体Biolegend126404
Brilliant Violet 605™抗小鼠Ly-6G抗体Biolegend127639
兔抗钙网蛋白抗体Biossbs-5913R
InVivoMab抗小鼠NK1.1抗体BioXcellBE0036
InVivoMab抗小鼠CD8α抗体BioXcellBE0004-1
InVivoMab抗小鼠CD4抗体BioXcellBE0003-1
InVivoMab抗小鼠CSF1R抗体BioXcellBE0213
抗小鼠IFNγ抗体BioXcellBE0054
TotalSeq™-C0301抗小鼠Hashtag抗体Biolegend155861
TotalSeq™-C0302抗小鼠Hashtag抗体Biolegend155863
TotalSeq™-C0303抗小鼠Hashtag抗体Biolegend155865
F4/80 (D2S9R) XP®兔单克隆抗体Cell Signaling70076T
CD4 (D7D2Z)兔单克隆抗体Cell Signaling25229T
FoxP3 (D6O8R)兔单克隆抗体Cell Signaling12653T
iNOS (E1W4J)兔单克隆抗体Cell Signaling68186
eBioscience™细胞增殖染料eFluor™ 670Invitrogen65-0840
瑞沙托维(TAK-242)SelleckS7455
OVA肽(257-264)GenScriptRP10611
小鼠M-CSF重组蛋白Peprotech315-02-10UG
细胞染色缓冲液Biolegend420201
MPLAs VaccigradeInvivoGenvac-mpls
重组小鼠IFN-γ蛋白Sino Biological50709-MNAH
L-NILMCEHY-12116
CFSE细胞分裂追踪试剂盒Biolegend423801
抗F4/80磁珠(超纯,小鼠)Miltenyi Biotec130-110-443
小鼠IFN-γ预包被ELISPOT试剂盒Dakewe221000
小鼠CD45(TIL)磁珠Miltenyi Biotec130-110-618
死细胞去除试剂盒Miltenyi Biotec130-090-101
Chromium单细胞5'试剂盒(v2化学双索引)10x GenomicsPN-1000263
SPARKeasy细胞RNA试剂盒SparkJade BiotechnologyAC0205
小鼠丙氨酸氨基转移酶(ALT)ELISA试剂盒Jianglai BiotechnologyJL12668
小鼠天冬氨酸氨基转移酶(AST)ELISA试剂盒Jianglai BiotechnologyJL13392
CD8a(Ly-2)磁珠,小鼠Miltenyi Biotec130-117-044
CD4(L3T4)磁珠,小鼠Miltenyi Biotec130-117-043
HifairI第一链cDNA合成SuperMix(qPCR)Yeasen Biotechnology11141ES60
True-Nuclear™转录因子缓冲液套装Biolegend424401
eBioscience™ 7-AAD活力染色液Invitrogen00-6993-50
Zombie Aqua™可固定活力试剂盒Biolegend423106

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
BMDM极化实验
BMDM分化条件:M-CSF浓度和时间(50 ng/mL,6天);刺激条件:MPLA 100 ng/mL和IFN-γ 20 ng/mL共24小时。
阅读提示:STAR★Methods:Generation of murine bone marrow-derived macrophages (BMDMs) 和 In vitro macrophages and tumors co-culture assay
动物模型和治疗方案
小鼠品系(OX40人源化,6-8周龄雌性);细胞接种量(MC38 1×10^6等);治疗时间和剂量(肿瘤体积50-100 mm^3时开始,MPLA 1 μg/只、IFN-γ 5 μg/只瘤内注射,αOX40 2.5 mg/kg腹腔注射,每3天一次)。
阅读提示:STAR★Methods:Evaluation of combo therapy efficacy in multiple humanized OX40 mouse tumor models
体内耗竭实验
耗竭抗体种类和剂量(抗CD8α 300 μg,抗NK1.1 200 μg,抗CSF1R 500 μg);给药时间(治疗前24小时或指定时间点)。
阅读提示:STAR★Methods:Depletion studies to determine the contribution of immune cell subsets to combo therapy efficacy
体外杀伤实验
共培养比例和时长(效应细胞与靶细胞比例(如10:1或1×10^6巨噬细胞与1×10^5肿瘤细胞));NOS2抑制剂L-NIL浓度(200 μM);检测时间(36或48小时)。
阅读提示:STAR★Methods:In vitro macrophages and tumors co-culture assay