抗体的体外功能性表征
评估gD特异性单克隆抗体的抗原结合、中和作用和效应功能(ADCC、ADCP、补体沉积)
通过ELISA和流式细胞术检测抗体与重组gD-2和细胞表面gD-1的结合;通过空斑减少实验测定中和滴度;通过报告细胞系检测FcγRIIIA激活、吞噬实验和补体沉积实验评估效应功能。
Effector functions are required for broad and potent protection of neonatal mice with antibodies targeting HSV glycoprotein D.
研究包含体外中和、ADCC、ADCP、补体沉积实验,以及体内生存、病毒载量和生物发光成像实验,并使用Fc突变抗体和FcγR基因敲除小鼠进行功能验证。
新生C57BL/6J小鼠 FcγR−/−新生小鼠 Vero细胞 HEK293T细胞 THP-1细胞 Jurkat-Lucia NFAT-CD16细胞
HSV-1感染剂量1×10^4 PFU,HSV-2感染剂量300 PFU,途径为鼻内接种 抗体给药剂量40 μg或10 μg,腹腔注射 FcγR−/−小鼠与野生型小鼠的对比 HSV8、UB-621、CH42 AAA及其Fc功能敲除突变体的中和和效应功能差异 病毒载量检测时间为感染后5天,使用空斑实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估gD特异性单克隆抗体的抗原结合、中和作用和效应功能(ADCC、ADCP、补体沉积)
通过ELISA和流式细胞术检测抗体与重组gD-2和细胞表面gD-1的结合;通过空斑减少实验测定中和滴度;通过报告细胞系检测FcγRIIIA激活、吞噬实验和补体沉积实验评估效应功能。
确定不同gD特异性mAb在致死性HPV-1和HSV-2感染模型中的保护效果及Fc效应功能的贡献
2日龄C57BL/6J或FcγR−/−小鼠腹腔注射40 μg或10 μg mAb,然后鼻内接种致死剂量的HSV-1或HSV-2,监测生存率;部分实验将病毒与抗体预先孵育形成免疫复合物后攻毒。
评估抗体处理后不同器官中的病毒载量,以确定效应功能对病毒播散和清除的影响
在感染后第5天,处死小鼠,经心灌注后收集脑、三叉神经节、肝、脾、肺等器官,通过空斑实验测定病毒滴度。
实时监测HSV-1复制和播散,评估Fc效应功能对病毒控制的影响
2日龄小鼠鼻内感染表达荧光素酶的HSV-1 17syn+ΔLux,1天后腹腔注射10 μg mAb,然后每天进行生物发光成像,持续至第8天。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 试剂与抗体 | 山羊抗人IgG Fc交叉吸附二抗HRP | Invitrogen | 31413 |
| 流式细胞术 | 山羊抗人IgG (H+L)交叉吸附二抗AlexaFluor™ 647 | ThermoFisher Scientific | A-21445 |
| 补体沉积 | 山羊抗豚鼠C3生物素 | ICL Labs | GC3-60B-Z |
| 抗体 | CH42 AAA | Dr. M. Anthony Moody (Duke University) | -- |
| CH42 NA | This manuscript | -- | |
| UB-621 | United Biopharma | -- | |
| HSV8 | ZabBio | -- | |
| HSV8 LALA PG | ZabBio | -- | |
| 病毒株 | HSV-1 17syn+ | Brown et al. | -- |
| HSV-2 G | Ejercito et al. | -- | |
| HSV-1 17syn+/Dlux | Luker et al. | -- | |
| 细菌培养 | DH5a | New England BioLabs | C2987H |
| NEB® Stable感受态大肠杆菌(高效率) | New England BioLabs | C3040H | |
| 补体来源 | LowTox豚鼠补体 | CedarLane Labs | CL4051 |
| 生物发光成像 | D-荧光素钾盐 | Gold Biotechnology | LUCK-1g |
| 抗原 | HSV-2 gD-306胞外域 | Dr. Gary Cohen, Nicola et al. | -- |
| Fc受体结合实验 | 重组人Fcγ受体 | Duke Human Vaccine Institute, Boesch et al. | -- |
| 重组小鼠FcγRI | Sino Biological | 50086-M27H-B | |
| 重组小鼠FcγRIIb | Sino Biological | 50030-M27H-B | |
| 重组小鼠FcγRIII | Sino Biological | 50326-M27H-B | |
| 重组小鼠FcγRIV | Sino Biological | 50036-M27H-B | |
| 流式细胞术 | 链霉亲和素-R-藻红蛋白 | Invitrogen | S866 |
| 细胞刺激 | eBioscience细胞刺激混合物(500x) | Invitrogen | 00-4970-93 |
| 报告基因检测 | QUANTI-Luc | Invivogen | rep-qlc1 |
| 细胞系 | VeroE6 | ATCC | RRID: |
| THP-1单核细胞 | ATCC | RRID: | |
| Jurkat-Lucia NFAT-CD16 | Invivogen | jktl-nfat-cd16 | |
| Expi293F细胞 | ThermoFisher | A14527; | |
| HEK293T | ATCC | CRL-3216; | |
| 表达HSV-1 gD的HEK293T细胞 | This manuscript | -- | |
| 实验动物 | 小鼠:C57BL/6J | The Jackson Laboratories | RRID: |
| 小鼠:B6.129P2-Fcer1gtm1Rav N12 | Taconic | Model | |
| 质粒 | pLenti-DsRed-IRES-EGFP载体 | Rousseaux et al. | RRID: |
| HSV-1 st17 DNA | McGeoch et al. | NCBI:txid10299 | |
| 软件 | GraphPad Prism 9 | GraphPad Software INC | RRID:SCR_002798 |
| FlowJo 10 | BD Life Sciences | RRID: | |
| 其他 | MagPlex微球 | Luminex Corp | MC100XX |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体处理与攻毒 | 抗体剂量(40或10 μg)、给药途径(腹腔)、攻毒剂量(HSV-1: 1×10^4 PFU;HSV-2: 300 PFU)、攻毒途径(鼻内)、小鼠品系(C57BL/6J或FcγR−/−)、攻毒时年龄(2日龄) 阅读提示:STAR★Methods中的'Mouse procedures and viral challenge'部分 |
| 病毒载量检测 | 检测时间(感染后5天)、器官(脑、三叉神经节、肝、脾、肺)、病毒滴度测定方法(Vero细胞空斑实验) 阅读提示:STAR★Methods中的'Mouse procedures and viral challenge'部分 |
| 生物发光成像 | 病毒株(HSV-1 17syn+ΔLux)、给药时间(感染后1天)、抗体剂量(10 μg)、成像时间(感染后1-8天)、底物(D-荧光素钾盐15 mg/mL,20 μL) 阅读提示:STAR★Methods中的'Mouse procedures and viral challenge'部分和图6 |
| 体外中和实验 | 病毒量(50 PFU)、抗体稀释系列、细胞(Vero)、孵育时间(1小时)、培养时间(48-72小时) 阅读提示:STAR★Methods中的'Viral neutralization'部分 |
| ADCC报告实验 | 靶细胞(HEK293T表达gD)、效应细胞(Jurkat-Lucia NFAT-CD16)、抗体浓度(20 μg/mL起始)、孵育时间(过夜) 阅读提示:STAR★Methods中的'CD16 activation assay (ADCC)'部分 |