分离S2特异性单克隆抗体
从SARS-CoV-2恢复期个体中分离靶向S2亚基的单克隆抗体。
通过单细胞分选从PBMCs中分离记忆B细胞,使用WH-1 S2蛋白或Delta刺突三聚体作为诱饵,随后重建抗体并通过ELISA筛选S2特异性结合。
The S2 subunit of spike encodes diverse targets for functional antibody responses to SARS-CoV-2.
研究包含两个独立证据层级:体外模型(细胞系、假病毒)和患者样本(PBMCs、血浆),并进行功能验证(中和、ADCC)和机制验证(表位定位、竞争ELISA),符合高水平标准。
HEK293T-ACE2细胞 CEM.NKr.Spike细胞 SARS-CoV-2恢复期个体PBMCs
单克隆抗体来源:两名恢复期个体(C20和C68)的PBMCs,采集时间为症状出现后30天 中和实验使用假病毒和HEK293T-ACE2靶细胞,筛选浓度10 μg/mL,剂量反应曲线起始浓度20-80 μg/mL ADCC实验使用原代PBMCs(两个供体)和表达刺突的CEM.NKr.Spike靶细胞,效应细胞与靶细胞比例10:1,抗体浓度5 μg/mL,孵育4小时 竞争ELISA使用WH-1刺突三聚体(1 μg/mL)和S2蛋白(昆虫细胞来源)作为抗原,阻断抗体浓度分别为2.5 μg/mL和25 μg/mL 表位定位使用PhIP-seq,Phage-DMS库(31 aa肽,30 aa重叠)和pan-CoV库(39 aa肽,19 aa重叠)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从SARS-CoV-2恢复期个体中分离靶向S2亚基的单克隆抗体。
通过单细胞分选从PBMCs中分离记忆B细胞,使用WH-1 S2蛋白或Delta刺突三聚体作为诱饵,随后重建抗体并通过ELISA筛选S2特异性结合。
评估S2单克隆抗体对SARS-CoV-2变异株和HCoV的结合广度。
通过ELISA检测抗体对多种刺突三聚体和S2蛋白的结合,包括不同VOC和HCoV。
确定S2单克隆抗体是否具有中和SARS-CoV-2及沙贝病毒的能力。
使用假病毒中和实验,筛选所有抗体的中和能力,并对C20.119进行剂量反应曲线测定。
确定S2单克隆抗体是否介导非中和性Fc效应功能。
通过流式细胞术检测NK细胞活化(CD107a和IFN-γ)和靶细胞死亡,评估抗体的ADCC活性。
通过竞争ELISA确定S2单克隆抗体共享的表位区域。
使用WH-1刺突三聚体或S2蛋白作为抗原,与已知表位的参考抗体进行竞争ELISA,并通过聚类分析分组。
鉴定S2单克隆抗体的线性表位。
使用PhIP-seq技术,用两个噬菌体展示肽库(Phage-DMS和pan-CoV)筛选抗体的结合肽段,并通过深度突变扫描确定关键结合残基。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 单细胞分选 | CD3-BV711抗体 | BD Biosciences | -- |
| CD14-BV711抗体 | BD Biosciences | -- | |
| CD16-BV711抗体 | BD Biosciences | -- | |
| CD19-BV510抗体 | BD Biosciences | -- | |
| IgM-FITC抗体 | BD Biosciences | -- | |
| IgD-FITC抗体 | BD Biosciences | -- | |
| WH-1刺突S2蛋白 | Acro Biosystems | S2N-C52E8 | |
| 重组抗体表达 | FreeStyle 293-F细胞 | Invitrogen | -- |
| ELISA | SARS-CoV-2 WH-1刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H4 |
| Delta刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H10 | |
| Omicron BA.1刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H26 | |
| Omicron BA.2刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H28 | |
| Omicron BA.4/BA.5刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H32 | |
| Omicron XBB刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H40 | |
| Omicron BQ.1.1刺突三聚体 | Sino Biological | 40589-V08H41 | |
| SARS-CoV-1刺突三聚体 | Acro Biosystems | SPN-S52Ht | |
| HCoV-HKU1刺突三聚体 | Acro Biosystems | SPN-H52H5 | |
| SARS-CoV-2 S1蛋白 | Sino Biological | 40591-V08H | |
| SARS-CoV-2 S2蛋白(昆虫细胞来源) | Sino Biological | 40590-V08B | |
| SARS-CoV-2 S2蛋白(哺乳动物细胞来源) | Sino Biological | 40590-V08H1 | |
| 流式细胞术 | 抗人IgG Fcγ片段特异性PE | Jackson Immuno | 109-115-098 |
| ADCC实验 | 抗CD107a APC抗体 | BioLegend | -- |
| 抗CD56 BV605抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗IFNγ-PE抗体 | BioLegend | -- | |
| 可固定活力染料eFluor 780 | eBioscience | -- | |
| IC固定/透化液 | Invitrogen | -- | |
| PhIP-seq | 蛋白A和蛋白G磁珠 | Invitrogen | -- |
| AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| Quant-iT PicoGreen染料 | Thermo Fisher | -- | |
| 测序 | Illumina MiSeq测序仪 | Illumina | -- |
| 流式细胞术 | Fortessa LSRII流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 分离S2特异性B细胞 | PBMCs采集时间(症状出现后30天),诱饵蛋白(WH-1 S2蛋白和Delta刺突三聚体) 阅读提示:Materials and methods: Single-cell sorting for spike-specific memory B cells |
| 结合ELISA | 抗体浓度(1 μg/mL),S2蛋白来源(昆虫或哺乳动物细胞),刺突三聚体种类和浓度 阅读提示:Materials and methods: Binding determined by direct enzyme-linked immunosorbent assays |
| 假病毒中和实验 | 靶细胞(HEK293T-ACE2),抗体浓度(筛选10 μg/mL,C20.119稀释曲线起始浓度),假病毒批次 阅读提示:Materials and methods: Spike-pseudotyped lentivirus neutralization |
| ADCC实验 | 效应细胞(PBMCs)供体,靶细胞(CEM.NKr.Spike),效应细胞与靶细胞比例(10:1),抗体浓度(5 μg/mL),孵育时间(4小时) 阅读提示:Materials and methods: SARS-CoV-2 Spike ADCC assay to detect activated NK cells |
| 竞争ELISA | 抗原(WH-1刺突三聚体或S2蛋白),阻断抗体浓度,生物素化抗体浓度,抗体对浓度 阅读提示:Materials and methods: Epitope groups defined by competition ELISAs |
| PhIP-seq | 肽库类型(Phage-DMS或pan-CoV),抗体浓度(10 ng/well),mAb或血浆用量 阅读提示:Materials and methods: Phage-display immunoprecipitation and deep sequencing |