抗体生成与亲和力测定
生成并表征SHR-1819抗体,验证其与人IL-4Rα的高亲和力结合。
用重组人IL-4Rα蛋白免疫C57BL/6小鼠,经杂交瘤筛选、人源化和亲和力成熟,最终获得SHR-1819。通过SPR和ELISA分别测定其结合动力学和结合活性。
Preclinical Development of SHR-1819, a Potent Humanized IL-4Rα Antibody for Treating Type 2 Inflammatory Diseases.
包含体外结合与细胞功能实验(SPR、ELISA、TF-1增殖、STAT6激活)、三个体内疾病模型(哮喘、AD、AR)以及药代动力学研究,并进行了功能与机制验证。
hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠 TF-1细胞 HEK-Blue IL-4细胞
SHR-1819与人IL-4Rα的结合亲和力(KD=1.32×10^-10 M) SHR-1819对hIL-4/hIL-13诱导的TF-1细胞增殖的抑制(IC50分别为6.05 ng/mL和16.59 ng/mL) 哮喘模型中SHR-1819的给药剂量(12.5或25 mg/kg)和给药方案(皮下注射,每3天一次) AD模型中SHR-1819的给药剂量(12.5或25 mg/kg)和给药方案(皮下注射,每3天一次) AR模型中SHR-1819的给药剂量(12.5、25或50 mg/kg)和给药方案(皮下注射,每3天一次)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成并表征SHR-1819抗体,验证其与人IL-4Rα的高亲和力结合。
用重组人IL-4Rα蛋白免疫C57BL/6小鼠,经杂交瘤筛选、人源化和亲和力成熟,最终获得SHR-1819。通过SPR和ELISA分别测定其结合动力学和结合活性。
验证SHR-1819对IL-4和IL-13诱导的细胞增殖和STAT6信号激活的抑制作用。
使用TF-1细胞和HEK-Blue IL-4细胞,检测SHR-1819对IL-4/IL-13诱导的增殖和STAT6激活的抑制效果。
评估SHR-1819对OVA诱导的哮喘模型小鼠的治疗效果。
在hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠中建立OVA诱导的哮喘模型,通过皮下注射SHR-1819,评估其对气道高反应性、血清IgE、BALF炎症细胞和肺组织病理的影响。
评估SHR-1819对恶唑酮诱导的AD模型小鼠的治疗效果。
在hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠中建立恶唑酮诱导的AD模型,通过皮下注射SHR-1819,评估其对耳肿胀、血清IgE和皮肤组织病理的影响。
评估SHR-1819对OVA诱导的过敏性鼻炎模型小鼠的治疗效果。
在hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠中建立OVA诱导的AR模型,通过皮下注射SHR-1819,评估其对打喷嚏和鼻痒频率、血清IgE和鼻组织病理的影响。
评估SHR-1819在hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠中的药代动力学特征。
给hIL-4/hIL-4Rα转基因小鼠单次皮下或静脉注射50 mg/kg SHR-1819,在不同时间点采集血液,用ELISA测定血清浓度,计算药代动力学参数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 抗体生成与亲和力测定 | Biacore 8K系统 | -- | -- |
| 抗体结合活性测定 | IL-4Rα蛋白 | Sino Biological | 10402-H08H |
| 细胞培养 | TF-1细胞 | ATCC | CRL-2003 |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | R&D | 215-GM-010 | |
| 白细胞介素-4 | R&D | 204-IL050 | |
| 细胞增殖检测 | Cell-titer Glo试剂盒 | Promega | G7572 |
| 细胞信号通路检测 | HEK-Blue IL-4细胞 | Invivogen | hkb-stat6 |
| 细胞培养 | 博来霉素 | Invivogen | ant-zn-05 |
| 杀稻瘟菌素 | Invivogen | ant-b1-05 | |
| 信号通路检测 | QUANTI-Blue底物 | -- | -- |
| 哮喘模型诱导 | 卵清蛋白 | Sigma-Aldrich | -- |
| 哮喘模型检测 | 乙酰甲胆碱 | -- | -- |
| 组织病理学检测 | 瑞氏-吉姆萨染色 | BaSO | -- |
| 细胞计数 | 台盼蓝 | Sigma-Aldrich | -- |
| 血清IgE检测 | 小鼠IgE预包被ELISA试剂盒 | Dakewe | -- |
| 药代动力学研究 | 生物素化IL-4R | -- | -- |
| Alexa Fluor 647标记的抗人IgG | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 结合亲和力测定 | SPR实验中的抗原固定、抗体浓度范围及流速;ELISA中抗原包被浓度和抗体稀释 阅读提示:Methods: Antibody Generation and Affinity Determination; Evaluation of IL-4Rα Binding Activity |
| 细胞增殖抑制 | TF-1细胞培养条件、IL-4浓度、抗体浓度梯度、孵育时间 阅读提示:Methods: Cellular Assays |
| STAT6激活抑制 | HEK-Blue IL-4细胞培养条件、抗体浓度梯度、孵育时间、SEAP检测方法 阅读提示:Methods: Cellular Assays |
| 哮喘模型体内疗效 | 动物品系及来源、OVA致敏和激发剂量及时间、SHR-1819剂量和给药方案、气道反应性测量方法、BALF细胞计数方法 阅读提示:Methods: OVA-Induced Asthma Model; Results: SHR-1819 Showed Therapeutic Effects in the OVA-Induced Asthma Model; Figure 3 |
| 特应性皮炎模型体内疗效 | 动物品系及来源、恶唑酮致敏和激发方案、SHR-1819剂量和给药方案、耳厚度测量时间点 阅读提示:Methods: Allergen-Induced AD Model; Results: SHR-1819 Exhibited Therapeutic Effects in the Oxazolone-Induced Atopic Dermatitis Model; Figure 4 |
| 过敏性鼻炎模型体内疗效 | 动物品系及来源、OVA致敏和激发方案、SHR-1819剂量和给药方案、症状记录方法、组织病理评分标准 阅读提示:Methods: Allergen-Induced AR Model; Results: SHR-1819 Demonstrated Therapeutic Effects in the OVA-Induced Allergic Rhinitis Model; Figure 5 |
| 药代动力学研究 | 动物品系及分组、给药途径和剂量、采样时间点、ELISA检测方法 阅读提示:Methods: Pharmacokinetic Study; Results: Pharmacokinetic Profile of SHR-1819 in hIL-4/hIL-4Rα Mice; Figure 6 |