细胞外囊泡ITGAM和ITGB2介导重症急性胰腺炎相关急性肺损伤

Extracellular Vesicle ITGAM and ITGB2 Mediate Severe Acute Pancreatitis-Related Acute Lung Injury.

作者信息Qian Hu, Shu Zhang, Yue Yang, Juan Li, Hongxin Kang, Wenfu Tang, Christopher J Lyon, Meihua Wan
PMID37022097
期刊ACS Nano
发布时间2023-04-25
DOI10.1021/acsnano.2c12722

实验完整度

包含体内小鼠模型(SAP/MAP)、原代PMVEC体外实验、蛋白组学/转录组学分析及工程化EVs功能验证,多个独立证据层级支持机制研究。

主要模型

小鼠SAP模型(雨蛙素腹腔注射和牛磺胆酸钠胰胆管逆行注射) 小鼠MAP模型(雨蛙素腹腔注射) 原代小鼠肺微血管内皮细胞(PMVECs) HEK293T细胞系

重点核对

SAP-EV注射剂量:文中未明确说明(in vivo实验中为100μg EVs/只) HYD-1肽浓度:75 μg/mL,37°C孵育30分钟 工程化EV(EVITGAM、EVITGB2、EVNCV)注射剂量:文中未明确说明(in vitro为20 μg/mL) SAP模型建立:2%牛磺胆酸钠以0.06 mL/h速率泵入4分钟 小鼠品系:C57BL/6(约25g),转基因小鼠为ROSA26-LSL-tdTomato x Pdx1-cre

摘要

据报道,由多种癌症分泌的细胞外囊泡(EVs)上表达的整合素可介导这些EVs的器官趋向性。我们之前的实验发现,重症急性胰腺炎(SAP)小鼠的胰腺组织过表达多种整合素,且这些小鼠的血清EVs(SAP-EVs)可介导急性肺损伤(ALI)。目前尚不清楚SAP-EV是否表达可促进其在肺中积聚从而促进ALI的整合素。在此,我们报道SAP-EV过表达多种整合素,并且将SAP-EV与整合素拮抗肽HYD-1预孵育可显著减轻其肺部炎症并破坏肺微血管内皮细胞(PMVEC)屏障。此外,我们报道,给SAP小鼠注射过表达其中两种整合素(ITGAM和ITGB2)的工程化EVs,可减弱胰腺来源EVs的肺部积聚,并同样减轻肺部炎症和内皮细胞屏障破坏。基于这些发现,我们提出胰腺EVs可介导SAP患者的ALI,且这种损伤反应可通过给予过表达ITGAM和/或ITGB2的EVs来减弱,由于SAP诱导的ALI缺乏有效疗法,这值得进一步研究。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SAP-EVs是否通过表面整合素介导其在肺部的积聚并损伤PMVECs,从而促进SAP相关急性肺损伤?
核心机制
SAP-EVs表面高表达ITGAM和ITGB2,通过整合素介导的相互作用黏附于PMVECs,促进EVs肺部积聚,并通过下调紧密连接蛋白VE-cadherin和ZO-1、上调ICAM-1以及促进IL-6和TNFα分泌来破坏内皮屏障和诱导炎症。
主要证据
体内外实验显示SAP-EVs较SC-EVs和MAP-EVs更易在肺部积聚;HYD-1阻断整合素或工程化EVs过表达ITGAM/ITGB2可减少SAP-EV积聚并减轻肺损伤;PMVECs中SAP-EV处理导致紧密连接破坏和炎症因子分泌增加。
研究意义
研究提出工程化EVs或纳米颗粒表面表达ITGB2和ITGAM可能作为预防或减轻SAP-ALI的有前景的治疗策略,但需进一步研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立SAP和MAP小鼠模型

模拟重症急性胰腺炎和轻症急性胰腺炎,以研究SAP相关急性肺损伤的机制。

C57BL/6小鼠通过胰胆管逆行注射2%牛磺胆酸钠建立SAP模型;通过腹腔注射50 μg/kg雨蛙素七次建立MAP模型。

2

分离血清EVs并进行蛋白组学分析

比较SAP-EVs、MAP-EVs和SC-EVs的蛋白组成,鉴定可能介导肺积聚的整合素。

使用ExoQuick沉淀法从血清中分离EVs,进行蛋白组学分析(TMT标记,LC-MS/MS),并通过RT-qPCR验证整合素mRNA水平。

3

验证SAP-EV对肺部的靶向性和损伤作用

确定SAP-EVs是否优先积聚于肺部并引起急性肺损伤相关表型。

将DIR标记的SC-EV、MAP-EV和SAP-EV尾静脉注射到SC或MAP小鼠中,检测肺组织中荧光信号、组织病理学和PMVEC紧密连接结构。

4

阻断整合素后评估SAP-EV致肺损伤作用

确定SAP-EVs上的整合素是否介导其在肺部的积聚和损伤效应。

将SAP-EVs与整合素拮抗肽HYD-1预孵育后注射至健康小鼠,检测肺组织病理、炎症因子和紧密连接蛋白表达;体外实验中用HYD-EVs孵育PMVECs。

5

生成过表达ITGAM或ITGB2的工程化EVs

构建特异性过表达整合素的EVs,用于评估ITGAM和ITGB2在SAP-EV肺积聚和损伤中的作用。

将ITGAM或ITGB2表达质粒或空载体转染HEK293T细胞,通过超速离心从无血清培养基中分离EVs,并通过Western blot验证蛋白表达。

6

在SAP小鼠模型中评估工程化EVs的治疗效果

验证过表达ITGAM或ITGB2的EVs是否能减少胰腺EVs的肺积聚并减轻肺损伤。

在Pdx1-cre;tdTomato转基因SAP小鼠中,尾静脉注射EVITGAM、EVITGB2或EVNCV后,检测肺组织中tdTomato荧光、组织病理学、紧密连接电镜和炎症因子水平。

7

体外验证工程化EVs对PMVECs的保护作用

在细胞水平上验证工程化EVs是否能抑制SAP-EV的摄取、炎症反应和紧密连接破坏。

将PMVECs与PKH26标记的SAP-EVs及PKH67标记的EVITGAM、EVITGB2或EVNCV共孵育,检测EV摄取、细胞因子分泌、紧密连接蛋白表达和细胞间连接形态。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
牛磺胆酸钠盐水合物SigmaT4009
雨蛙素Yeasen Biotechnology60321ES03
异氟烷RWD Life ScienceR510-22
24G静脉留置针Weihai Jierui Medical Products--
微量泵Lande Medical Equipment--
ExoQuickTM外泌体沉淀溶液System BiosciencesEXOQ5A
小鼠肺解离试剂盒Miltenyi Biotec130-095-927
CD45微磁珠Miltenyi Biotec130-052-301
CD90.2微磁珠Miltenyi Biotec130-121-278
CD326微磁珠Miltenyi Biotec130-105-958
DMEM-F12培养基----
内皮细胞生长添加剂ScienCellSC1052
青霉素-链霉素溶液BiochannelBC-CE-007
胎牛血清Gibco10099141
DIR荧光染料UmibioUR21017
PKH26荧光染料UmibioUR52302
PKH67荧光染料UmibioUR52303
DAPI染色液Solarbio Life ScienceC0065
鬼笔环肽Yeasen Biotechnology40736ES75
抗CD68抗体Abcamab201340
抗vWF抗体Abcamab287962
抗SPC抗体Affinity BiosciencesDF6647
抗S100A4抗体Abcamab197896
小鼠IL-6 ELISA试剂盒DLDEVELOP--
小鼠TNFα ELISA试剂盒DLDEVELOP--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime BiotechnologyP0010S
TMT标记试剂ThermoFisherA44522
C18反相色谱柱Waters--
Orbitrap Exploris 480质谱仪ThermoFisher--
PVDF膜Milipore--
封闭液Epizyme BiotechPS108
抗VE-钙黏蛋白抗体Abcamab205336
抗ZO-1抗体Abcamab216880
抗ICAM-1抗体Abcamab222736
抗β-连环蛋白抗体Affinity--
抗ITGAM抗体CST#17800
抗ITGB2抗体CST#72607
抗TSG101抗体Abcamab125011
抗CD9抗体AbclonalA1703
抗Calnexin抗体Abcamab227310
抗Syntenin抗体Abcamab19903
pCMV3-HA-mITGB2质粒Sino BiologicalMG50359-NY
pCMV3-mITGAM-t2-Flag质粒Sino BiologicalMG57042-CF
pCMV3-C-Flag-NCV质粒Sino BiologicalCV012
TurboFect转染试剂Thermo FisherR0531
Opti-MEM培养基Gibco51985034
Rosa26-LSL-tdTomato小鼠Shanghai Model Organisms Company--
快速组织PCR试剂盒FermentasK1091
Taq Plus预混液(2X)VazymeP212
100bp DNA梯状标记物Takara3422A
GraphPad Prism 9GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
SAP模型:2%牛磺胆酸钠逆行注射,速率0.06 mL/h,持续4分钟;MAP模型:雨蛙素50 μg/kg腹腔注射7次,间隔1小时;小鼠品系和体重(C57BL/6,约25g或22-24g)
阅读提示:Methods: Mouse MAP and SAP Model Establishment
EV分离
血清EV分离使用ExoQuickTM;细胞EV分离采用超速离心(120,000g,75分钟)
阅读提示:Methods: Isolation of EVs
EV注射与示踪
EV注射剂量(100 μg/只),荧光标记染料(DIR, PKH26, PKH67),注射途径(尾静脉)
阅读提示:Methods: Tracking of EVs in Vivo and in Vitro
细胞实验
PMVEC分离方法(磁珠分选),培养条件(DMEM-F12, 10% FBS),EV处理浓度(20 μg/mL)和时间(24小时)
阅读提示:Methods: Isolation of Primary Mouse PMVECs and Tracking of EVs in Vivo and in Vitro
蛋白组学分析
TMT标记,LC-MS/MS仪器型号(Orbitrap Exploris 480),数据分析软件(Proteome Discoverer)
阅读提示:Methods: Proteomic Analysis of Plasma EVs
工程化EV制备
HEK293T细胞系(ATCC CRL-11268),转染试剂(TurboFect),质粒信息(pCMV3-HA-mITGB2, pCMV3-mITGAM-t2-Flag),EV分离(超速离心)
阅读提示:Methods: Genetic Modification of HEK293T Cells