Cas13对宿主RNA的内在靶向限制了其效用

Intrinsic targeting of host RNA by Cas13 constrains its utility

作者信息Zexu Li, Zihan Li, Xiaolong Cheng, Shengnan Wang, Xiaofeng Wang, Shixin Ma, Zhiyan Lu, Han Zhang, Wenchang Zhao, Zhisong Chen, Yingjia Yao, Cheng Zhang, Lumen Chao, Wei Li, Teng Fei
PMID37872368
发布时间2024-02
DOI10.1038/s41551-023-01109-y

实验完整度

研究包含细胞模型实验、蛋白-RNA互作组学(RIP-seq)、转录组分析(RNA-seq)、生化酶活检测和高通量筛选等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制解析。

主要模型

HEK293FT细胞 A549细胞 T47D细胞 LNCaP细胞

重点核对

Cas13表达载体(单载体与双载体慢病毒系统) 慢病毒感染时的MOI(高>2或低0.3-0.5) 嘌呤霉素筛选浓度(A549、T47D、LNCaP分别为1、1.5、3.5 μg/ml) RIP-seq和RNA-seq分析中的细胞系(HEK293FT)

摘要

Cas13可用于RNA的敲低、编辑、成像或检测以及基于RNA的基因治疗。在此,通过使用RNA免疫沉淀测序、转录组分析、生化分析、高通量筛选和机器学习,我们展示了Cas13可以通过先前未被认识的机制在哺乳动物细胞中内在靶向宿主RNA。与其已知的顺式/反式RNA切割活性不同,Cas13还可以通过转录本特异性、不依赖于CRISPR RNA序列且动态依赖于Cas13构象状态的机制切割宿主RNA,我们针对编码在单载体和双载体慢病毒系统中的几个Cas13家族效应子证明了这一点。此外,参与病毒过程且其转录本被Cas13内在靶向的宿主基因有助于限制Cas13的慢病毒递送和表达。我们的发现为适当使用慢病毒Cas13系统提供了指导,并强调在基于Cas13的应用中需要对内在RNA靶向保持警惕。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
研究旨在探究Cas13效应子在慢病毒载体系统中应用受限的原因及其潜在机制。
核心机制
Cas13能够通过不依赖于crRNA序列的、转录本特异性的内在RNA靶向机制切割宿主RNA,该机制涉及HEPN结构域和pre-crRNA加工活性,并受Cas13构象状态影响。
主要证据
RIP-seq和RNA-seq显示Cas13结合并调控大量基因,体外切割实验证实Cas13可直接切割特定内源RNA片段,且HSPA6等功能基因的调控影响慢病毒包装效率,高通量筛选验证了不同Cas13系统的性能差异。
研究意义
研究为慢病毒Cas13系统的选择和使用提供了规则建议,并强调在Cas13应用中需警惕其内在RNA靶向活性可能带来的意想不到的影响。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估单载体Cas13系统的慢病毒递送效率

比较不同Cas13效应子在慢病毒载体中的递送和表达效率。

将LwCas13a、PspCas13b和RfxCas13d克隆至lentiCRISPR v2载体中,包装慢病毒感染多种细胞,通过嘌呤霉素筛选评估存活细胞数,并通过qPCR检测慢病毒RNA和整合DNA水平。

2

评估双载体慢病毒Cas13系统

探究Cas13蛋白与sgRNA cassette分离表达对慢病毒递送的影响。

构建Cas13蛋白和sgRNA cassette分别位于不同载体的双载体系统,分别包装慢病毒感染细胞,评估存活细胞数、慢病毒RNA和DNA水平。

3

鉴定Cas13的内在RNA靶标

识别Cas13在细胞内结合的RNA靶标,并分析其与慢病毒缺陷的关联。

在HEK293FT细胞中瞬时表达不同Cas13组件,进行RIP-seq和RNA-seq分析,鉴定Cas13结合峰和差异表达基因,并进行GO富集分析。

4

验证Cas13对内在RNA的切割活性

在体外验证Cas13是否能够不依赖crRNA直接切割内源RNA片段。

纯化Cas13蛋白,与体外转录的候选RNA片段共孵育,通过凝胶电泳检测RNA切割情况。

5

评估Cas13系统在高通量筛选中的性能

比较不同Cas13系统在慢病毒介导的高通量筛选中的适用性。

设计靶向蛋白编码基因和lncRNA的sgRNA文库,构建单、双载体Cas13d和双载体Cas13b筛选系统,在A375细胞中进行细胞适应性筛选,分析crRNA丰度变化和核心必需基因的β score。

6

开发机器学习模型预测crRNA特异性慢病毒缺陷

识别导致单载体Cas13d系统慢病毒缺陷的crRNA序列特征。

基于单载体Cas13d筛选数据,使用lasso回归模型分析早期缺失的靶向非必需基因的crRNA序列特征,并通过5折交叉验证评估模型性能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
lentiCRISPR v2Addgene52961
lentiGuide-puroAddgene52963
lenti-Cas9-blastAddgene52962
pcDNA3.1-HAAddgene128034
DMEM培养基SEVEN Biotech--
胎牛血清ExCell--
青霉素-链霉素Solarbio--
Neofect DNA转染试剂Neofect--
Lipofectamine 2000Invitrogen11668019
pCMVR8.74----
pMD2.G----
慢病毒滴度试剂盒Applied Biological Materials (Abm)--
HisPur钴树脂Thermo Fisher89964
Zeba旋转脱盐柱Thermo Fisher89890
Amicon Ultra-15离心过滤装置MilliporeUFC905008
BCA蛋白定量试剂盒MeilunbioMA0082
T7 RNA聚合酶Lucigen--
RNA清洁与浓缩-5试剂盒Zymo Research--
Qubit荧光计Thermo Fisher--
UNIQ-10柱Trizol总RNA提取试剂盒Sangon--
MultiScribe逆转录酶Thermo Fisher--
2X UltraSYBR混合物CWBIO--
RIPA裂解缓冲液Beyotime--
蛋白酶抑制剂Roche--
FLAG抗体InvitrogenMA1-91878
GAPDH抗体Santa Cruzsc-25778
RPL13A多克隆抗体SolarbioK008723P
LY6E多克隆抗体SolarbioK006299P
PYCR3多克隆抗体SolarbioK110275P
DHRSX多克隆抗体Sino Biological202580-T08
HSPA6多克隆抗体Sino Biological202533-T34
IFIT2多克隆抗体Sino Biological205259-T08
OASL多克隆抗体SolarbioK006805P
IgG抗体Santa Cruzsc-2025
Protein G磁珠Invitrogen10004D
TRIzol LS试剂Life Technologies--
TruSeq链式mRNA LT样品制备试剂盒Illumina--
抗HA磁珠BeyotimeP2121
抗FLAG磁珠BeyotimeP2115
EndoFree Maxi-prep质粒提取试剂盒TIANGEN4992194
Q5高保真DNA聚合酶New England Biolabs--
Illumina PE150测序平台Novogene--
MGI DNBSEQ-T7 PE150测序平台Novogene--
DNA模板Synbio Technologies--
GraphPad Prism--8.4.0
ImageJ----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
慢病毒感染
MOI(高>2或低0.3-0.5)、细胞类型、嘌呤霉素筛选浓度、感染后收集时间(48小时)
阅读提示:方法部分 'Lentivirus production and infection' 和 'Quantification of antibiotic-resistant cells, lentiviral RNA and DNA'
RIP-seq
细胞系(HEK293FT)、转染质粒、甲醛交联浓度和时间(0.3%甲醛,10分钟)、抗体使用
阅读提示:方法部分 'RIP-seq'
体外RNA切割实验
Cas13蛋白浓度(200 nM)、RNA底物量(200 ng)、反应缓冲液(1× CutSmart)、反应时间和温度(37°C,2小时)
阅读提示:方法部分 'Cas13 cleavage assays'
高通量筛选
细胞系(A375)、MOI(约0.3)、嘌呤霉素筛选浓度(1 μg/ml)、筛选时间点(Day 5和Day 33)、细胞覆盖率(约300X)
阅读提示:方法部分 'Pooled genome-wide Cas13 screens for cell fitness gene transcripts'