模型建立
建立免疫检查点抑制剂相关心肌炎的小鼠模型。
通过给8-12周龄的雄性A/J小鼠腹腔注射150 μg抗PD-1单克隆抗体(克隆RMP1-14),每3天一次,共21天,诱导心肌炎。
Cardiac myosin-specific autoimmune T cells contribute to immune-checkpoint-inhibitor-associated myocarditis.
包含体外细胞表型分析、过继转移功能验证、动物体内模型及病理检测,多层级验证机制。
A/J小鼠模型 CD4+ T细胞过继转移模型
心肌肌球蛋白特异性T细胞的存在 PD-1抑制剂的给药方案 过继转移实验中的细胞处理和移植条件
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立免疫检查点抑制剂相关心肌炎的小鼠模型。
通过给8-12周龄的雄性A/J小鼠腹腔注射150 μg抗PD-1单克隆抗体(克隆RMP1-14),每3天一次,共21天,诱导心肌炎。
评估PD-1抑制剂诱导的心肌炎的表型和免疫细胞浸润情况。
通过组织学染色(H&E)、心电图、血清cTnI水平检测、TUNEL凋亡染色和流式细胞术分析免疫细胞浸润。
确定心脏浸润T细胞的活化状态和细胞因子表达谱。
通过流式细胞术检测心脏T细胞CD62L、CD44、CD69表达,以及FACS分选的T细胞经RT-qPCR检测细胞因子和免疫检查点基因表达。
鉴定心肌肌球蛋白特异性自身免疫T细胞在心肌炎中的作用。
使用Myhc338-348/H-2Dd和Myhc334-352/I-Ak四聚体染色,通过流式细胞术检测心脏和淋巴器官中的肌球蛋白特异性T细胞,并分析其基因表达。
验证心肌肌球蛋白特异性T细胞的致病性。
从免疫小鼠脾脏分离CD4+ T细胞,体外刺激后过继转移至亚致死辐照受体,并给予抗PD-1 mAb治疗,观察心肌炎发展。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 抗小鼠PD-1单克隆抗体(克隆RMP1-14) | Bio X Cell | BE0146 |
| 大鼠IgG2a同型对照(克隆2A3) | Bio X Cell | BE0089 | |
| 抗小鼠CTLA-4单克隆抗体(克隆UC-10-4F10-11) | Bio X Cell | BE0032 | |
| 信号阻断 | 纯化抗CD16/CD32抗体(克隆93) | Thermo Fisher | 14-0161-86 |
| 流式细胞术 | BUV563抗小鼠CD45抗体(克隆30-F11) | BD Biosciences | 612924 |
| APC抗小鼠NKp46抗体(克隆29A1.4) | BioLegend | 137607 | |
| FITC抗小鼠CD11b抗体(克隆M1/70) | BioLegend | 101205 | |
| BV785抗小鼠Ly6G抗体(克隆1A8) | BioLegend | 127645 | |
| PE-Cy7抗小鼠F4/80抗体(克隆BM8) | BioLegend | 123113 | |
| BV711抗小鼠CD64抗体(克隆X54-5/7.1) | BioLegend | 139311 | |
| Alexa Fluor 700抗小鼠Ly6C抗体(克隆HK1.4) | BioLegend | 128023 | |
| BUV395抗小鼠CD19抗体(克隆1D3) | BD Biosciences | 565965 | |
| PE-Dazzle 594抗小鼠CD3抗体(克隆17A2) | BioLegend | 100245 | |
| BV421抗小鼠TCRγδ抗体(克隆GL3) | BioLegend | 118119 | |
| BV605抗小鼠CD4抗体(克隆GK1.5) | BioLegend | 100451 | |
| BUV805抗小鼠CD8抗体(克隆53-6.7) | BD Biosciences | 612898 | |
| BV421抗小鼠CD62L抗体(克隆MEL-14) | BioLegend | 104435 | |
| PE-Cy7抗小鼠CD44抗体(克隆IM7) | BioLegend | 103029 | |
| BUV395抗小鼠CD69抗体(克隆H1.2F3) | BD Biosciences | 740220 | |
| BV711抗小鼠PD-1抗体(克隆29F.1A12) | BioLegend | 135231 | |
| BV605抗小鼠TIM-3抗体(克隆RMT3-23) | BioLegend | 119721 | |
| 细胞分离 | 小鼠CD4 (L3T4)微珠 | Miltenyi | 130-117-043 |
| 体内补充处理 | 完全弗氏佐剂 | MilliporeSigma | F5881 |
| 重组小鼠IL-12p70 | PeproTech | 210-12 | |
| 细胞培养 | 重组小鼠IL-23 | Sino Biological | CT028-M08H |
| 重组小鼠IL-1β | Sino Biological | 50101-MNAE | |
| 组织消化 | II型胶原酶 | Worthington | LS004177 |
| 脱氧核糖核酸酶I | Worthington | LS002139 | |
| 透明质酸酶 | MilliporeSigma | H3506 | |
| 细胞培养 | 正常大鼠血清 | Thermo Fisher | 31888 |
| RNA提取 | RNeasy Plus Micro试剂盒 | Qiagen | 74034 |
| RT-qPCR | iScript逆转录超混合液 | Bio-Rad | 7108841 |
| PowerUP SYBR Green预混液 | Thermo Fisher | A25742 | |
| 细胞活力测定 | LIVE/DEAD固定性Aqua死细胞染色试剂盒 | Thermo Fisher | L34966 |
| ELISA | 小鼠心肌肌钙蛋白I ELISA试剂盒 | Life Diagnostics | CTNI-1-US |
| 凋亡检测 | DeadEnd荧光TUNEL系统 | Promega | G3250 |
| 动物实验 | 雄性A/J小鼠 | Jackson Laboratory | 000646 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型建立 | 小鼠品系:A/J(雄性,8-12周龄);给药剂量:150 μg抗PD-1 mAb/只;给药方式:腹腔注射;给药频率:每3天一次,持续21天;对照组:大鼠IgG2a同型对照。 阅读提示:详见STAR★Methods中的Mice部分 |
| 组织学分析 | 组织固定、石蜡包埋、切片厚度(4 μm);H&E染色;心肌炎评分方法。 阅读提示:详见STAR★Methods中的Histology study部分 |
| 流式细胞术分析 | 抗体组合;染色步骤;四聚体染色(Myhc338-348-H-2Dd和Myhc334-352-I-Ak);Fc阻断。 阅读提示:详见STAR★Methods中的Flow cytometry部分 |
| RNA表达分析 | 使用RNeasy Plus Micro Kit提取RNA;iScript逆转录;SYBR Green实时PCR;内参基因HPRT。 阅读提示:详见STAR★Methods中的Real-time RT-PCR部分 |
| 过继转移实验 | 供体小鼠免疫方案:Myhc334-352肽免疫两次(第0天和第7天);脾细胞分离和体外刺激条件(50 μg/mL肽,20 ng/mL IL-23,10 ng/mL IL-1β,40 mM NaCl);CD4+ T细胞纯化;受体辐照剂量(500 cGy);细胞输注量(1×10^6细胞/只);抗PD-1 mAb治疗。 阅读提示:详见STAR★Methods中的Adoptive transfer of T cells部分 |