内质网应激传感器IRE1α解码非经典mRNA降解

Decoding non-canonical mRNA decay by the endoplasmic-reticulum stress sensor IRE1α.

作者信息Adrien Le Thomas, Elena Ferri, Scot Marsters, Jonathan M Harnoss, David A Lawrence, Iratxe Zuazo-Gaztelu, Zora Modrusan, Sara Chan, Margaret Solon, Cécile Chalouni, Weihan Li, Hartmut Koeppen, Joachim Rudolph, Weiru Wang, Thomas D Wu, Peter Walter, Avi Ashkenazi
PMID34911951
发布时间2021-12-15
DOI10.1038/s41467-021-27597-7

实验完整度

整合RNAseq/GROseq鉴定底物,体外纯化重组蛋白验证两种RNA酶模式,通过交联分级分离和R887A突变体在体外及细胞中验证寡聚化依赖的RIDDLE功能。

主要模型

MDA-MB-231人乳腺癌细胞系(WT和IRE1α KO) HCC1806人乳腺癌细胞系 纯化的重组人IRE1α-KR蛋白 AMO1和KMS27人多发性骨髓瘤细胞系

重点核对

MDA-MB-231细胞中IRE1α WT和KO基因型 Thapsigargin(Tg)浓度100 nM处理8小时 IRE1-KR-0P和IRE1-KR-3P磷酸化状态 R887A突变对IRE1α寡聚化的影响 Dox诱导shRNA敲低内源IRE1α的互补策略

摘要

肌醇需求酶1(IRE1)通过协调未折叠蛋白反应(UPR)来缓解内质网(ER)应激。IRE1跨越ER膜,并通过胞质激酶-内切核糖核酸酶模块发出信号。该内切核糖核酸酶通过在相似的RNA茎环端基序之间切除内含子来生成转录因子XBP1s,并通过调节性IRE1依赖性衰变(RIDD)消耗特定的细胞mRNA。矛盾的是,在哺乳动物中,RIDD似乎只靶向具有XBP1样端基序的mRNA,而在果蝇中,RIDD几乎没有序列限制。通过比较人类细胞中新生和总IRE1α控制的mRNA,我们不仅鉴定了含有经典端基序的RIDD底物,还鉴定了没有此类基序的靶标——通过我们称之为RIDDLE(缺乏端基序的RIDD)的过程降解。IRE1α显示出两种基本的内切核糖核酸酶模式:高度特异性的、端基序导向的切割,最低限度需要二聚体;以及更混杂的、不依赖端基序的加工,需要磷酸化寡聚体。一种寡聚体缺陷的IRE1α突变体在体外和细胞中均无法支持RIDDLE。我们的结果推进了当前对UPR机制的理解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
人IRE1α在ER应激下是否仅降解含XBP1样茎环端基序的mRNA,以及其RNA酶活性是否存在除经典RIDD之外的其他模式。
核心机制
IRE1α存在两种基本内切核糖核酸酶模式:端基序导向的切割(RIDD)最低限度需要二聚体,而端基序非依赖性的RIDDLE需要磷酸化寡聚体(如四聚体或六聚体)。
主要证据
通过RNAseq/GROseq整合分析鉴定54个潜在底物,体外用纯化的IRE1-KR-0P/3P验证切割模式,交联分级分离显示寡聚体执行RIDDLE,R887A突变体在体外和细胞中均丧失RIDDLE功能但保留内切基序切割。
研究意义
该发现更新了UPR的机制理解,揭示了IRE1α两种独立RNA酶模式及其磷酸化寡聚态基础,为靶向IRE1α的癌症治疗提供了新的概念框架。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

RNAseq和GROseq整合分析

区分转录调控与mRNA降解,鉴定IRE1α依赖性RNA衰变底物。

对WT和IRE1α KO MDA-MB-231细胞在Tg(100 nM)处理8小时后进行RNAseq和GROseq,比较总mRNA与新生转录变化,筛选出54个潜在底物。

2

底物验证与生物信息学分析

验证候选底物,分析其序列特征并开发预测算法。

通过RT-qPCR验证多个底物在不同细胞系和应激条件下的变化,免疫印迹检测蛋白水平,并开发gRIDD算法对底物进行分类。

3

体外RNA酶活性分析

明确IRE1α不同磷酸化状态下的RNA切割模式。

纯化IRE1-KR-0P和IRE1-KR-3P蛋白,用T7转录本进行切割实验,分析对含或不含端基序底物的处理。

4

寡聚化状态与RNA酶模式关联

测试IRE1α不同寡聚状态(单体、二聚体、寡聚体)的RNA酶功能。

用DSS交联IRE1-KR-3P,通过NativePAGE分离单体、二聚体和寡聚体,分别测试其RNA切割活性。

5

突变体功能验证

验证寡聚化对RIDDLE的必要性。

测试R887A突变体的磷酸化、寡聚化能力和RNA酶活性,在体外和细胞中比较WT和突变体的功能差异。

6

细胞功能互补实验

在细胞中验证RIDDLE的生物学相关性。

通过Dox诱导shRNA敲低内源IRE1α,稳定表达WT或R887A突变体,检测XBP1s剪接、RIDD和RIDDLE靶标mRNA水平及三维生长活力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI1640培养基----
胎牛血清Sigma--
GlutaMAXGibco--
青霉素-链霉素Gibco--
毒胡萝卜素Sigma67526-95-8
衣霉素--11089-65-9
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
Mirus TransIT-X2转染试剂Mirus--
RNeasy试剂盒Qiagen74104
RNeasy Plus试剂盒Qiagen74134
TruSeq RNA样本制备试剂盒v2Illumina--
NEBNext Ultra II RNA文库制备试剂盒NEBE7770S
NEBNext多重寡核苷酸NEBE7335S/E7500S
HiSeq2500测序仪Illumina--
Click-iT新生RNA捕获试剂盒InvitrogenC10365
Superscript VILO IV预混液Invitrogen--
Lambda蛋白磷酸酶NEBP0753S
TaqMan RNA-to-CT 1步法试剂盒Applied Biosystems4392938
QuantStudio 7 Flex实时荧光定量PCR系统ABI--
HiScribe T7快速高产RNA合成试剂盒NEBE2050S
RIPA裂解液Millipore--
蛋白酶和磷酸酶抑制剂Invitrogen78440
BCA蛋白定量试剂盒Thermofisher Scientific23227
iBLOT2转印系统Invitrogen--
IRE1α抗体Cell Signaling Technology3294
GAPDH抗体Cell Signaling Technology8884
Actin抗体Cell Signaling Technology5125
抗兔HRP二抗Jackson ImmunoResearch Laboratories711-035-152
抗鼠HRP二抗Jackson ImmunoResearch Laboratories715-035-150
DSS交联剂Thermo Fisher Scientific--
NativePAGE 4-16%预制胶Invitrogen--
4μ8C抑制剂----
化合物18----
CRUK-3激活剂----
G-98076激活剂----
RtcB连接酶NEBM0458S
SuperScript IV第一链合成系统Invitrogen18091050
pGEM-T Easy载体PromegaA1360
Zymo Mix & Go感受态细胞Zymo ResearchT3019
Zyppy-96孔质粒小提试剂盒Zymo ResearchD4042
Zymoclean凝胶RNA回收试剂盒Zymo ResearchR1011
Zymoclean凝胶DNA回收试剂盒Zymo ResearchD4001
CellTiter-Glo 3D细胞活力检测试剂盒PromegaG9683
多西环素Clonetech24390-14-5
G418----
RNAScope 2.5 LS试剂盒-红色Advanced Cell Diagnostics322150
Opal-570染料PerkinElmer--
Opal-690染料PerkinElmer--
Spectral DAPI染料PerkinElmerFP1490
Prolong Gold抗淬灭剂Life TechnologyP36930
Tissue Tek封片剂Sakura6419
Ni-NTA Superflow珠Qiagen--
TEV蛋白酶----
Q-HP阴离子交换柱GE Healthcare--
HiLoad 16/600 Superdex 200尺寸排阻色谱柱GE Healthcare--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
RNAseq/GROseq
细胞系(MDA-MB-231 WT和IRE1α KO),处理时间(8小时)和浓度(Tg 100 nM),生物学重复数(n=3)
阅读提示:Methods: RNAseq/GROseq
体外RNA切割实验
IRE1-KR蛋白磷酸化状态(0P/3P),底物RNA种类,反应条件(1 μg RNA, 1 μg 蛋白, 15分钟, 室温),抑制剂浓度(5 μM)
阅读提示:Methods: RNA cleavage assay
交联和寡聚化分析
DSS交联剂浓度(250 μM),孵育时间(1小时),蛋白浓度,以及后续NativePAGE分离条件
阅读提示:Methods: Crosslinking assay, Gel fractionation
细胞互补实验
细胞系(MDA-MB-231或HCC1806),Dox浓度(0.4 μg/ml),处理时间(7天),质粒转染方法(Mirus TransIT-X2),内源IRE1α敲低效率
阅读提示:Methods: Cellular IRE1α rescue, Viability assay
RIDD和RIDDLE检测
RT-qPCR引物设计(区分端基序和3'端),Taqman探针或定制引物,内参基因(GAPDH),数据处理方法(ΔΔCt)
阅读提示:Methods: RT-qPCR; Figure 5c