16p11.2 相互基因组疾病在小鼠大脑和人类神经元模型中的组织和细胞类型特异性分子与功能特征

Tissue- and cell-type-specific molecular and functional signatures of 16p11.2 reciprocal genomic disorder across mouse brain and human neuronal models

作者信息Derek J C Tai, Parisa Razaz, Serkan Erdin, Dadi Gao, Jennifer Wang, Xander Nuttle, Celine E de Esch, Ryan L Collins, Benjamin B Currall, Kathryn O'Keefe, Nicholas D Burt, Rachita Yadav, Lily Wang, Kiana Mohajeri, Tatsiana Aneichyk, Ashok Ragavendran, Alexei Stortchevoi, Elisabetta Morini, Weiyuan Ma, Diane Lucente, Alex Hastie, Raymond J Kelleher, Roy H Perlis, Michael E Talkowski, James F Gusella
PMID36152629
发布时间2022-10-06
DOI10.1016/j.ajhg.2022.08.012

实验完整度

包含多个独立证据层级:小鼠多组织转录组、人类iPSC衍生细胞和类器官,以及功能验证(神经突动态、MEA电生理)和机制验证(scRNA-seq)。

主要模型

小鼠7qF3 CNV模型(皮层、小脑、纹状体、肝脏、棕色脂肪、白色脂肪) CRISPR工程化16p11.2 CNV hiPSC衍生的神经干细胞(NSC)和诱导神经元(iN) 16p11.2 CNV大脑类器官

重点核对

剂量效应:16p11.2区域基因表达水平随CNV剂量变化(缺失约0.75倍,重复约1.25倍) 组织来源:小鼠组织来自8周龄,脑组织(皮层、纹状体、小脑)及外周组织(肝、脂肪) 分化条件:NSC分化至第7代,iN分化至第24天,类器官培养至6个月 功能检测:neurite dynamics(IncuCyte)和MEA电生理记录条件 单细胞分析:10x Chromium scRNA-seq,细胞聚类和比例分析

摘要

16p11.2 相互基因组疾病由复发性拷贝数变异(CNVs)引起,涉及智力障碍、自闭症谱系障碍(ASD)和精神分裂症,但其机制尚不清楚。为了系统剖析分子效应,我们对携带 7qF3 同源区域 CNV 的小鼠模型中六个组织(皮层、小脑、纹状体、肝脏、棕色脂肪和白色脂肪)的 350 个文库进行了转录组分析,并对 CRISPR 工程化 16p11.2 CNV 的 54 个同基因神经干细胞、诱导神经元和大脑类器官模型进行了细胞、转录和单细胞分析。全转录组差异表达基因在很大程度上是组织、细胞类型和剂量特异性的,尽管缺失和重复之间以及跨组织共享的效应比预期更多。最广泛的影响在小脑中观察到(2,163 个差异表达基因),并且与小鼠小脑和人类诱导神经元中的突触通路富集最显著。通路和共表达分析确定了能量和 RNA 代谢为共享过程,并富集了 ASD 相关、功能缺失约束和脆性 X 信使核糖核蛋白靶基因集。有趣的是,相互的 16p11.2 剂量变化导致神经突和电生理特征的一致下降,类器官的单细胞分析显示兴奋性和抑制性 GABAergic 神经元的比例发生相互改变。我们的类器官分析中神经元比例和基因表达的变化最直接指向 calretinin GABAergic 抑制性神经元和兴奋性/抑制性平衡作为可能有助于 16p11.2 携带者神经发育和认知功能变化的破坏靶点。总的来说,我们的数据表明该基因组疾病涉及多种贡献性生物学过程的破坏,并且这种破坏的相对影响是上下文特异性的。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
16p11.2 相互基因组疾病(缺失和重复)如何在不同组织和细胞类型中导致分子和功能改变?
核心机制
16p11.2 CNV 导致能量代谢、RNA代谢、翻译和蛋白质靶向等共享生物学过程破坏,并在特定脑区和细胞类型中引起突触功能相关的转录改变;类器官中兴奋性/抑制性神经元比例改变,指向 calretinin GABAergic 抑制性神经元受损。
主要证据
小鼠多组织转录组(350个RNA-seq文库)和人类iPSC衍生NSC/iN及大脑类器官(54个模型)的RNA-seq、scRNA-seq、神经突动态和MEA电生理分析。
研究意义
研究揭示了16p11.2 CNV的效应是上下文依赖的,涉及多种生物学过程的破坏,并提示人类大脑类器官可作为进一步研究相关神经发育和认知表型的工具。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

小鼠模型转录组分析

评估16p11.2同源区域7qF3 CNV对多个组织转录组的影响

对101只小鼠(12缺失、31重复、58野生型)的六个组织(皮层、纹状体、小脑、肝脏、白色脂肪、棕色脂肪)进行RNA-seq分析,共350个文库。

2

人类细胞模型生成与分化

生成同基因hiPSC系并分化出NSC、iN和类器官,以研究16p11.2 CNV的细胞类型特异性效应

使用CRISPR SCORE方法生成16p11.2缺失和重复hiPSC系,并通过MACS选择TRA-1-60阳性细胞,分化为NSC、iN和大脑类器官。

3

转录组分析

鉴定CNV引起的差异表达基因和共表达模块

对小鼠组织、NSC、iN和类器官进行RNA-seq和scRNA-seq,使用DESeq2和WGCNA分析差异表达和共表达网络。

4

神经元功能分析

评估CNV对iN神经元形态和电生理功能的影响

使用IncuCyte系统测量iN的神经突长度和分支点,使用MEA记录自发神经元活动。

5

类器官单细胞分析

分析CNV对类器官细胞组成和基因表达的影响

对6个月类器官进行scRNA-seq,鉴定细胞类型并分析比例变化和共表达模块。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Matrigel hESC级基质胶Corning08-774-552
Essential 8培养基GibcoA1517001
pSpCas9(BB)-2A-Puro质粒--Addgene plasmid 48139
Amaxa Nucleofector II电转仪Lonza--
ReLeSR细胞解离试剂STEMCELL Technologies05873
mFreSR冻存液STEMCELL Technologies05855
Accutase细胞解离液----
TO-PRO-3活细胞染料Invitrogen--
BD FACSAria II流式细胞分选仪BD--
CytoScan HD芯片ThermoFisher--
MiniMACS分选器Miltenyi Biotec130-090-312
Anti-TRA-1-60微珠Miltenyi Biotec130-100-832
PSC神经诱导培养基试剂盒ThermoFisherA1647801
聚凝胺Sigma107689
多西环素ClontechNC0424034
多西环素Millipore SigmaD9891
嘌呤霉素Sigma--
多聚鸟氨酸Sigma-AldrichP4957
层粘连蛋白Sigma-AldrichL2020
人脑源性神经营养因子Pro-SpecCYT-207
人神经营养因子3PeproTech450-03
Countess II自动细胞计数仪InvitrogenAMQAF1000
阿糖胞苷SigmaC1768-100MG
Corning 7007 96孔超低吸附板Corning7007
Corning 3473 24孔低吸附板Corning3473
Corning 3471 6孔低吸附板Corning3471
Worthington木瓜蛋白酶解离系统Worthington BiochemicalLK003153
IncuCyte ZOOM活细胞成像系统Sartorius--
IncuCyte NucLight Rapid Red试剂Sartorius--
CytoView MEA板Axion BioSystems--
BrainPhys神经元培养基STEMCELL Technologies--
Axion Maestro Pro多电极阵列系统Axion BioSystems--
Trizol试剂Invitrogen--
Agilent 2200 TapeStationAgilent--
ERCC RNA加标混合物Thermo Fisher--
链特异性mRNA文库制备试剂盒Illumina--
文库定量试剂盒Kapa BiosystemsKK4854
Chromium单细胞3'文库与凝胶微珠试剂盒v310x GenomicsPN-1000075
Chromium单细胞B芯片10x GenomicsPN-1000073
高灵敏度D1000 ScreenTapeAgilent5067-5582
通用KAPA文库定量试剂盒RocheKK4824

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型
CNV类型(缺失/重复),小鼠品系(B6129S),性别(雌雄),年龄(8周),组织(皮层、纹状体、小脑、肝脏、白色脂肪、棕色脂肪)
阅读提示:Methods: Mouse models for 16p RGD, samples, and underlying datasets
hiPSC培养和基因编辑
hiPSC系(GM08330),培养条件(Matrigel包被、Essential 8培养基),CRISPR guide RNA序列,转染方法(Amaxa Nucleofector II),筛选(puromycin)
阅读提示:Methods: CRISPR/Cas9 genome editing and cell-model development
NSC分化
分化试剂盒(PSC Neural Induction Medium kit),分化时间(至第7代),培养条件(Matrigel包被)
阅读提示:Methods: Selection and differentiation of TRA-1-60-positive hiPSCs
iN分化
Ngn2 lentivirus诱导,doxycycline浓度(2 μg/mL),puromycin浓度(1 μg/mL),BDNF(10 mg/L)和NT-3(10 mg/L),细胞密度(2.5×10^5 cells/well),分化时间(至第24天)
阅读提示:Methods: Selection and differentiation of TRA-1-60-positive hiPSCs
类器官生成
起始细胞数(9,000 cells/well),Matrigel包埋,培养时间(6个月),旋转培养(orbital shaker)
阅读提示:Methods: Generation of cerebral organoids and dissociation for single-cell RNAseq
神经突动态测量
细胞密度(17,000 cells/well),成像频率(每小时),持续时间(7天),分析软件(IncuCyte NeuroTrack)
阅读提示:Methods: Neurite dynamics measurement
MEA电生理
细胞密度(60k cells/well),记录时间(day 25起),记录时长(15分钟),培养基(BrainPhys),分析软件(Axion's Integrated Studio Navigator)
阅读提示:Methods: Microelectrode array (MEA) electrophysiology
scRNA-seq
10x Chromium平台,3'试剂盒v3,目标细胞回收(5,000 cells),测序平台(Illumina NovaSeq S4)
阅读提示:Methods: Generation of single-cell RNAseq libraries