短期AraC处理诱导耐药性
评估短期AraC处理是否足以导致AML细胞产生耐药性。
用IC95剂量的AraC处理HL60、NB4和MOLM14细胞1或3天,洗脱后培养至第14或28天检测AraC敏感性。
Rapid Transcription Dynamics Confers Cytarabine Resistance in Acute Myeloid Leukemia
包含体外细胞系实验、原代患者样本、体内异种移植模型及临床前药物组合验证,并进行了机制研究(smFISH、CRISPR)。
HL60细胞系 NB4细胞系 MOLM14细胞系 原代AML患者样本的Lin-CD34+ HSPC
AraC处理浓度:HL60为250 nmol/L,NB4和MOLM14为500 nmol/L,原代样本为1 μmol/L。 AraC处理时间:1天或3天。 RNA转录抑制剂预处理浓度:ActD 500 pmol/L,dBET6 5 nmol/L,CX5461 10 nmol/L,ellipticine 10 nmol/L。 体内模型中:dBET6剂量(HL60 150 μg/肿瘤/天,NB4 50 μg/肿瘤/天),AraC剂量(HL60 2 mg/肿瘤/天,NB4 3 mg/肿瘤/天),给药时间(dBET6第1-6天,AraC第4-6天)。 检测时间点:耐药性评估在第14天或第28天。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估短期AraC处理是否足以导致AML细胞产生耐药性。
用IC95剂量的AraC处理HL60、NB4和MOLM14细胞1或3天,洗脱后培养至第14或28天检测AraC敏感性。
检查AraC处理后RNA转录活跃度和RNA含量的变化。
使用EU标记检测新合成RNA,使用pyronin Y染色结合细胞周期分析检测G0-G1期细胞RNA含量。
验证AraC处理后RNA高表达的细胞是否具有更强的AraC耐药性。
通过流式分选获得PYHigh和PYLow细胞亚群,并检测其对AraC的敏感性。
测试在AraC处理前及同时给予RNA转录抑制剂是否能阻止RNA诱导和耐药性获得。
预处理RNA转录抑制剂(ActD、dBET6、CX5461、ellipticine)3天,再与AraC联合处理1天或3天,检测RNA水平变化及后续AraC敏感性。
在体内模型中评估AraC联合RNA转录抑制剂dBET6对白血病生长的抑制作用。
将HL60或NB4细胞皮下移植到NSG小鼠,给予dBET6和AraC单独或联合治疗,监测肿瘤生长。
识别AraC处理后快速激活的转录因子及其靶基因。
对AraC处理的HL60细胞进行RNA-seq和scRNA-seq,并进行GSEA分析转录因子靶基因富集。
以单分子分辨率检测AraC处理后转录因子的转录爆发频率和RNA含量变化。
使用smFISH检测HL60、NB4和原代AML样本中转录因子的mRNA数量、转录位点爆发频率等。
验证特定转录因子在AraC耐药性获得中的功能必要性。
通过CRISPR-Cas9敲除PU.1、GATA1(作为ARR-TF)以及HOXA11、LYL1(作为对照),检测AraC敏感性变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 阿糖胞苷 | MedChemExpress | HY-13605 |
| dBET6 | MedChemExpress | HY-112588 | |
| 玫瑰树碱 | MedChemExpress | HY-15753 | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Corning | 10-040-CV |
| 胎牛血清 | Gemini | 900-108 | |
| 青霉素-链霉素 | Corning | 30-002-CI | |
| 细胞活力测定 | CellTiter-Blue细胞活力测定试剂盒 | Promega | G8080 |
| RNA合成检测 | RNA合成检测试剂盒 | Abcam | ab228561 |
| 流式分析 | FACSymphony A5流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞分选 | FACSAria III流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- |
| FACSAria II流式细胞分选仪 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞周期分析 | 派洛宁Y | Sigma | P9172 |
| Hoechst 33342 | Invitrogen | H3570 | |
| RNA含量检测 | SYTO RNASelect染料 | Invitrogen | S32703 |
| 流式分析 | DAPI | Millipore | 10236276001 |
| Western blot | CD45 APC-Cy7抗体 | BioLegend | 304014 |
| 流式分析(原代样本) | 谱系FITC抗体混合物 | BioLegend | 348801 |
| CD235a FITC抗体 | BD Biosciences | 559943 | |
| CD34 PE抗体 | BD Biosciences | 555824 | |
| smFISH | 多聚赖氨酸 | Sigma-Aldrich | -- |
| ProLong Diamond防淬灭封片剂 | Invitrogen | P36935 | |
| Leica Thunder荧光显微镜 | Leica | -- | |
| Nikon Ti2-E荧光显微镜 | Nikon | -- | |
| CRISPR | pSpCas9(BB)-2A-GFP (PX458)载体 | Addgene | 48138 |
| 核转染系统 | Lonza | -- | |
| RNA提取 | RNeasy小提试剂盒 | QIAGEN | 74004 |
| qRT-PCR | SuperScript II逆转录酶 | Bio-Rad | 1708890 |
| Power SYBR Green PCR预混液 | Thermo Fisher | 4368577 | |
| ViiA7实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher | -- | |
| WES和RNA-seq文库构建 | Agilent SureSelect人类全外显子捕获试剂盒V6 | Agilent Technologies | 5190-8864 |
| DNA提取 | QIAamp DNA小提试剂盒 | QIAGEN | 51304 |
| RNA-seq | 生物分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| 原代样本培养 | StemSpan SFEM II培养基 | StemCell Technologies | 09605 |
| CC100生长因子混合物 | StemCell Technologies | 02690 | |
| 促血小板生成素 | R&D Systems | 288-TPN | |
| 细胞计数 | 台盼蓝 | Thermo Fisher | 15250061 |
| 动物实验 | 基质胶 | Corning | CLS356234-1EA |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(HL60、NB4、MOLM14)及培养基配方(RPMI 1640+10% FBS+1% PS),培养条件(37°C,5% CO2) 阅读提示:详见Methods中“Compounds and Cells”部分 |
| AraC处理 | AraC剂量(HL60 250 nmol/L,NB4/MOLM14 500 nmol/L),处理时间(1天或3天),对照为DMSO 阅读提示:详见Methods中“AraC Treatment”部分 |
| RNA合成检测 | EU标记浓度(1 mmol/L),脉冲时间(1小时),固定和透化步骤 阅读提示:详见Methods中“Nascent RNA Labeling by EU”部分 |
| RNA含量检测 | pyronin Y染色浓度(5 μg/mL),Hoechst 33342染色浓度(10 μg/mL),染色时间(45分钟+15分钟) 阅读提示:详见Methods中“RNA and Cell-Cycle Assay by Pyronin Y”部分 |
| 抑制剂处理 | RNA转录抑制剂浓度:ActD 500 pmol/L,dBET6 5 nmol/L,CX5461 10 nmol/L,ellipticine 10 nmol/L;预处理3天,联合处理1或3天 阅读提示:详见Results中“Suppression of mRNA Induction...”部分及图2图注 |
| 体内实验 | 小鼠品系(NSG),细胞接种数量(HL60 5×10^6,NB4 1×10^7),药物剂量(dBET6 150 μg/肿瘤/天(HL60)或50 μg/肿瘤/天(NB4),AraC 2 mg/肿瘤/天(HL60)或3 mg/肿瘤/天(NB4)),给药时间(dBET6第1-6天,AraC第4-6天) 阅读提示:详见Methods中“Murine Subcutaneous Tumor Model”部分 |
| 转录组分析 | RNA-seq和scRNA-seq的文库制备平台、测序深度、分析参数 阅读提示:详见Methods中“qRT-PCR and RNA-Seq”和“scRNA-seq”部分 |
| 单分子RNA FISH | 探针设计、杂交条件、显微镜设置 阅读提示:详见Methods中“smFISH”部分 |
| CRISPR敲除 | sgRNA序列、转染方法、克隆筛选 阅读提示:详见Methods中“Generation of CRISPR-Cas9–Mediated TF Knockout Cells”部分 |