ETV2转导与R-VEC诱导
验证ETV2瞬时表达能否赋予成体内皮细胞血管生成潜力
用携带ETV2的慢病毒转导HUVECs、脂肪、心脏、主动脉等成体内皮细胞,在无血清培养基中培养,检测ETV2 mRNA和蛋白水平。
Adaptable haemodynamic endothelial cells for organogenesis and tumorigenesis
包含体外管形成实验、体内皮下植入、脱细胞支架再内皮化、微流控装置血管化、类器官共培养、单细胞RNA-seq及ChIP-seq等多层级验证。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人脂肪、心脏、主动脉、皮肤来源的成熟内皮细胞 SCID-beige小鼠皮下植入模型 脱细胞大鼠肠道支架 人正常结肠类器官、结直肠癌类器官
ETV2瞬时表达(lentiviral transduction,MOI为3或6,表达水平为相对mRNA单位60-100) LEC基质成分及浓度(11 mg/ml层粘连蛋白/巢蛋白和0.2 mg/ml IV型胶原) 管形成实验细胞数(10^5细胞/孔)及培养基(StemSpan无血清培养基) 体内植入细胞数(2×10^6细胞/plug)及基质(LEC或Matrigel) RAP1抑制剂GGTI-298浓度(10 μM)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ETV2瞬时表达能否赋予成体内皮细胞血管生成潜力
用携带ETV2的慢病毒转导HUVECs、脂肪、心脏、主动脉等成体内皮细胞,在无血清培养基中培养,检测ETV2 mRNA和蛋白水平。
评估R-VECs在3D基质中自组装成持久、有管腔的血管网络的能力
将R-VECs或对照ECs接种于Matrigel或LEC基质上,培养数周,观察并量化管形成面积。
验证RAP1激活是否介导ETV2诱导的管腔形成
检测R-VECs中RAP1-GTP水平,使用RAP1抑制剂GGTI-298或RASGRP3 shRNA敲低处理,评估对管形成的影响。
评估R-VECs在体内能否形成功能性血管并吻合宿主循环
将R-VECs或对照ECs悬浮于LEC或Matrigel中皮下植入SCID-beige小鼠,1-5个月后回收,分析血管结构、吻合和渗漏性。
评估R-VECs能否再内皮化脱细胞组织的微血管网络
将R-VECs通过肠系膜动脉和静脉接种到脱细胞大鼠肠道,生物反应器培养7天,再植入免疫缺陷小鼠网膜,分析血管生成和吻合。
评估R-VECs能否在大型微流控装置中形成血流动力学稳定的血管网络并支持血液灌注
将R-VECs与纤维蛋白凝胶注入微流控装置(5×3×1 mm)中,培养7天,进行人全血灌注实验。
评估R-VECs能否血管化人类胰岛并维持其葡萄糖反应性胰岛素分泌功能
将人类胰岛与R-VECs或对照ECs共培养于微流控装置或Matrigel液滴中,进行葡萄糖刺激的胰岛素分泌实验。
评估R-VECs能否血管化正常和肿瘤类器官并适应组织特异性微环境
将R-VECs与人正常结肠类器官或结直肠癌类器官共培养于Matrigel或LEC液滴中,通过成像和单细胞RNA测序分析血管化和基因表达变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | M199培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| HEPES | -- | -- | |
| 谷氨酰胺补充剂 | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
| 脂质混合物 | Thermo Fisher Scientific | 11905031 | |
| 内皮细胞生长添加剂 | Alpha Aesar | J64516-MF | |
| 管形成实验 | 基质胶 | Corning | -- |
| StemSpan培养基 | Stem Cell Technologies | -- | |
| 敲除血清 | Thermo Fisher Scientific | 10828028 | |
| 成纤维细胞生长因子2 | Peprotech | 1000-18B | |
| 胰岛素样生长因子1 | Peprotech | 100-11 | |
| 表皮生长因子 | Peprotech | AF-100-15 | |
| 干细胞因子 | Peprotech | 300-07 | |
| 白细胞介素-6 | Peprotech | 200-06 | |
| 层粘连蛋白和巢蛋白混合物 | Corning | 354259 | |
| IV型胶原蛋白 | Corning | 354245 | |
| 细胞处理 | 多西环素 | -- | -- |
| 蛋白检测 | MG132 | Selleck Chemicals | -- |
| RAP1抑制剂GGTI-298 | Tocris | -- | |
| EdU | Thermo Fisher Scientific | C10337 | |
| Western blot | RAP1抗体 | Cell Signaling Technology | 2399 |
| RASGRP3抗体 | Cell Signaling Technology | 3334 | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 5174 | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 34685 | |
| 磷酸化AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060 | |
| ETS1抗体 | Cell Signaling Technology | 14069 | |
| ETV2抗体 | Abcam | ab181847 | |
| 体内实验 | 抗人VEcad抗体 | Biolegend | BV9 |
| 70-kDa葡聚糖 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 成纤维细胞生长因子2 | Peprotech | 1000-18B | |
| 血管内皮生长因子A | Peprotech | 100-20 | |
| 肝素 | Sigma | H3149-100KU | |
| 微流控装置 | 牛纤维蛋白原 | Sigma | -- |
| 牛凝血酶 | Sigma | -- | |
| 聚二甲基硅氧烷(Sylgard 184) | Dow-Corning | -- | |
| (3-缩水甘油氧丙基)三甲氧基硅烷 | Sigma | 440167 | |
| 血液灌注 | PKH26红色荧光染料 | Sigma | MMIDI26-1KT |
| 脱细胞支架 | 脱氧胆酸钠 | Sigma | -- |
| 脱氧核糖核酸酶I | Sigma | -- | |
| HEPES | Corning | 25-060-Cl | |
| 肝素 | Sigma | H3149-100KU | |
| 内皮细胞生长添加剂 | Merck | 324845 | |
| 胰岛共培养 | STELLUX Chemi人胰岛素ELISA试剂盒 | ALPCO | -- |
| 类器官共培养 | 基质胶(生长因子减少型) | Corning | 354230 |
| Noggin蛋白 | Peprotech | 250-38 | |
| R-spondin1蛋白 | R&D Systems | 3474-RS-050 | |
| 表皮生长因子 | Invitrogen | PMG8043 | |
| 成纤维细胞生长因子2 | Peprotech | 1000-18B | |
| 肝素 | Sigma | H3149-100KU | |
| TrypLE Select酶 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Y27632 | Tocris Bioscience | -- | |
| 共培养 | CellTracker荧光染料 | Invitrogen | C34565 |
| 单细胞测序 | 分散酶 | Roche | 38621000 |
| Accutase酶 | -- | -- | |
| 测序 | 10X Chromium单细胞仪器 | 10X Genomics | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与ETV2转导 | 内皮细胞来源(HUVECs、脂肪、心脏、主动脉等)及培养条件;ETV2慢病毒转导MOI(3或6);ETV2表达水平(相对mRNA单位60-100) 阅读提示:Methods: Cell culture of ECs; Lentiviral transduction of ECs |
| 体外管形成 | 基质类型(Matrigel或LEC);细胞数(10^5/孔);培养基(StemSpan无血清);培养氧浓度(5%) 阅读提示:Methods: Tube-formation assays; Figure 1 legend |
| 体内植入 | 小鼠品系(SCID-beige);细胞数(2×10^6/plug);基质(LEC或Matrigel);生长因子添加(FGF2、VEGF-A、肝素) 阅读提示:Methods: In vivo experiments; Figure 1f legend |
| 脱细胞肠道再内皮化 | 大鼠品系(Sprague Dawley);肠道脱细胞流程(Milli-Q水、脱氧胆酸钠、DNase I处理时间);细胞接种数(5×10^6);灌注速率(1 ml/min) 阅读提示:Methods: Intestinal tissue collection and decellularization; Bioreactor culture |
| 微流控血管化 | 微流控装置尺寸(5×3×1 mm);细胞密度(3×10^6/ml);凝胶成分(纤维蛋白原5 mg/ml,凝血酶3 U/ml);培养时间(7天) 阅读提示:Methods: Vascular network formation in microfluidic devices |