可适应的血流动力学内皮细胞用于器官发生和肿瘤发生

Adaptable haemodynamic endothelial cells for organogenesis and tumorigenesis

作者信息Brisa Palikuqi, Duc-Huy T Nguyen, Ge Li, Ryan Schreiner, Alessandro F Pellegata, Ying Liu, David Redmond, Fuqiang Geng, Yang Lin, Jesus M Gómez-Salinero, Masataka Yokoyama, Paul Zumbo, Tuo Zhang, Balvir Kunar, Mavee Witherspoon, Teng Han, Alfonso M Tedeschi, Federico Scottoni, Steven M Lipkin, Lukas Dow, Olivier Elemento, Jenny Z Xiang, Koji Shido, Jason R Spence, Qiao J Zhou, Robert E Schwartz, Paolo De Coppi, Sina Y Rabbany, Shahin Rafii
PMID32908310
期刊Nature
发布时间2020-09
DOI10.1038/s41586-020-2712-z

实验完整度

包含体外管形成实验、体内皮下植入、脱细胞支架再内皮化、微流控装置血管化、类器官共培养、单细胞RNA-seq及ChIP-seq等多层级验证。

主要模型

人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人脂肪、心脏、主动脉、皮肤来源的成熟内皮细胞 SCID-beige小鼠皮下植入模型 脱细胞大鼠肠道支架 人正常结肠类器官、结直肠癌类器官

重点核对

ETV2瞬时表达(lentiviral transduction,MOI为3或6,表达水平为相对mRNA单位60-100) LEC基质成分及浓度(11 mg/ml层粘连蛋白/巢蛋白和0.2 mg/ml IV型胶原) 管形成实验细胞数(10^5细胞/孔)及培养基(StemSpan无血清培养基) 体内植入细胞数(2×10^6细胞/plug)及基质(LEC或Matrigel) RAP1抑制剂GGTI-298浓度(10 μM)

摘要

内皮细胞获得组织特异性特征以指导器官发育和再生。这种适应性在培养的成体内皮细胞中丧失,这些细胞不能以器官典型的方式血管化组织。在这里,我们表明,在无血清三维基质(由层粘连蛋白、巢蛋白和IV型胶原的混合物组成,即LEC基质)中培养的成熟人类内皮细胞中,胚胎限制性ETS变异转录因子2(ETV2)的短暂再激活将这些内皮细胞“重置”为可适应的血管生成细胞,形成可灌注且可塑的血管丛。通过染色质重塑,ETV2诱导小管生成通路,包括RAP1的激活,这促进了持久管腔的形成。在三维基质中(没有生物打印支架的限制),“重置”血管内皮细胞(R-VECs)在可扩展的微流控腔室内自组装成稳定、多层且分支的血管网络,能够运输人类血液。在体内,皮下植入小鼠的R-VECs自组织成持久的、被周细胞覆盖的血管,功能性吻合到宿主循环,并表现出持久的模式,没有畸形或血管瘤的证据。R-VECs与三维共培养类器官中的细胞直接相互作用,消除了器官芯片系统所需限制性合成半透膜的需求,因此提供了一个生理性的血管化平台,我们称之为“器官-血管网络”(Organ-On-VascularNet)。R-VECs能够灌注葡萄糖反应性胰岛素分泌的人类胰岛,血管化脱细胞的大鼠肠道,并使健康或癌变的人类结肠类器官分枝。利用单细胞RNA测序和表观遗传学分析,我们证明R-VECs建立了一个适应性血管生态位,以组织特异性方式差异性地调整并适应类器官和肿瘤类器官。我们的器官-血管网络模型将允许代谢、免疫和物理化学研究和筛选,以解读器官典型内皮细胞与实质细胞之间的串扰,识别内皮细胞异质性的决定因素,并可能导致治疗性器官修复和肿瘤靶向的进展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何使培养的成体内皮细胞恢复组织特异性适应性,以形成可灌注且可塑的血管网络,用于器官发生和肿瘤发生的建模?
核心机制
ETV2通过直接结合靶基因启动子并重塑染色质(增加H3K4me3和H3K27ac),上调RASIP1和RAP1 GEFs(RASGRP2、RASGRP3、RAPGEF5),激活RAP1信号,促进管腔形成和血管生成。
主要证据
RNA-seq和ChIP-seq显示ETV2结合并表观遗传启动管生成基因;RAP1-GTP水平升高;RAP1抑制剂或RASGRP3敲低破坏管形成;体内外血管形成及功能性吻合实验。
研究意义
该模型可用于代谢、免疫和物理化学研究,促进治疗性器官修复和肿瘤靶向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ETV2转导与R-VEC诱导

验证ETV2瞬时表达能否赋予成体内皮细胞血管生成潜力

用携带ETV2的慢病毒转导HUVECs、脂肪、心脏、主动脉等成体内皮细胞,在无血清培养基中培养,检测ETV2 mRNA和蛋白水平。

2

体外管形成实验

评估R-VECs在3D基质中自组装成持久、有管腔的血管网络的能力

将R-VECs或对照ECs接种于Matrigel或LEC基质上,培养数周,观察并量化管形成面积。

3

RAP1通路验证

验证RAP1激活是否介导ETV2诱导的管腔形成

检测R-VECs中RAP1-GTP水平,使用RAP1抑制剂GGTI-298或RASGRP3 shRNA敲低处理,评估对管形成的影响。

4

体内血管生成实验

评估R-VECs在体内能否形成功能性血管并吻合宿主循环

将R-VECs或对照ECs悬浮于LEC或Matrigel中皮下植入SCID-beige小鼠,1-5个月后回收,分析血管结构、吻合和渗漏性。

5

脱细胞肠道再内皮化

评估R-VECs能否再内皮化脱细胞组织的微血管网络

将R-VECs通过肠系膜动脉和静脉接种到脱细胞大鼠肠道,生物反应器培养7天,再植入免疫缺陷小鼠网膜,分析血管生成和吻合。

6

微流控装置中的血管化

评估R-VECs能否在大型微流控装置中形成血流动力学稳定的血管网络并支持血液灌注

将R-VECs与纤维蛋白凝胶注入微流控装置(5×3×1 mm)中,培养7天,进行人全血灌注实验。

7

胰岛共培养和功能分析

评估R-VECs能否血管化人类胰岛并维持其葡萄糖反应性胰岛素分泌功能

将人类胰岛与R-VECs或对照ECs共培养于微流控装置或Matrigel液滴中,进行葡萄糖刺激的胰岛素分泌实验。

8

类器官和肿瘤类器官共培养

评估R-VECs能否血管化正常和肿瘤类器官并适应组织特异性微环境

将R-VECs与人正常结肠类器官或结直肠癌类器官共培养于Matrigel或LEC液滴中,通过成像和单细胞RNA测序分析血管化和基因表达变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
M199培养基----
胎牛血清----
HEPES----
谷氨酰胺补充剂Thermo Fisher Scientific35050061
脂质混合物Thermo Fisher Scientific11905031
内皮细胞生长添加剂Alpha AesarJ64516-MF
基质胶Corning--
StemSpan培养基Stem Cell Technologies--
敲除血清Thermo Fisher Scientific10828028
成纤维细胞生长因子2Peprotech1000-18B
胰岛素样生长因子1Peprotech100-11
表皮生长因子PeprotechAF-100-15
干细胞因子Peprotech300-07
白细胞介素-6Peprotech200-06
层粘连蛋白和巢蛋白混合物Corning354259
IV型胶原蛋白Corning354245
多西环素----
MG132Selleck Chemicals--
RAP1抑制剂GGTI-298Tocris--
EdUThermo Fisher ScientificC10337
RAP1抗体Cell Signaling Technology2399
RASGRP3抗体Cell Signaling Technology3334
GAPDH抗体Cell Signaling Technology5174
AKT抗体Cell Signaling Technology34685
磷酸化AKT抗体Cell Signaling Technology4060
ETS1抗体Cell Signaling Technology14069
ETV2抗体Abcamab181847
抗人VEcad抗体BiolegendBV9
70-kDa葡聚糖Thermo Fisher Scientific--
成纤维细胞生长因子2Peprotech1000-18B
血管内皮生长因子APeprotech100-20
肝素SigmaH3149-100KU
牛纤维蛋白原Sigma--
牛凝血酶Sigma--
聚二甲基硅氧烷(Sylgard 184)Dow-Corning--
(3-缩水甘油氧丙基)三甲氧基硅烷Sigma440167
PKH26红色荧光染料SigmaMMIDI26-1KT
脱氧胆酸钠Sigma--
脱氧核糖核酸酶ISigma--
HEPESCorning25-060-Cl
肝素SigmaH3149-100KU
内皮细胞生长添加剂Merck324845
STELLUX Chemi人胰岛素ELISA试剂盒ALPCO--
基质胶(生长因子减少型)Corning354230
Noggin蛋白Peprotech250-38
R-spondin1蛋白R&D Systems3474-RS-050
表皮生长因子InvitrogenPMG8043
成纤维细胞生长因子2Peprotech1000-18B
肝素SigmaH3149-100KU
TrypLE Select酶Thermo Fisher Scientific--
Y27632Tocris Bioscience--
CellTracker荧光染料InvitrogenC34565
分散酶Roche38621000
Accutase酶----
10X Chromium单细胞仪器10X Genomics--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与ETV2转导
内皮细胞来源(HUVECs、脂肪、心脏、主动脉等)及培养条件;ETV2慢病毒转导MOI(3或6);ETV2表达水平(相对mRNA单位60-100)
阅读提示:Methods: Cell culture of ECs; Lentiviral transduction of ECs
体外管形成
基质类型(Matrigel或LEC);细胞数(10^5/孔);培养基(StemSpan无血清);培养氧浓度(5%)
阅读提示:Methods: Tube-formation assays; Figure 1 legend
体内植入
小鼠品系(SCID-beige);细胞数(2×10^6/plug);基质(LEC或Matrigel);生长因子添加(FGF2、VEGF-A、肝素)
阅读提示:Methods: In vivo experiments; Figure 1f legend
脱细胞肠道再内皮化
大鼠品系(Sprague Dawley);肠道脱细胞流程(Milli-Q水、脱氧胆酸钠、DNase I处理时间);细胞接种数(5×10^6);灌注速率(1 ml/min)
阅读提示:Methods: Intestinal tissue collection and decellularization; Bioreactor culture
微流控血管化
微流控装置尺寸(5×3×1 mm);细胞密度(3×10^6/ml);凝胶成分(纤维蛋白原5 mg/ml,凝血酶3 U/ml);培养时间(7天)
阅读提示:Methods: Vascular network formation in microfluidic devices