人类ACC标本神经特征分析
确定ACC中是否存在交感神经支配及其形态特征
对10例人唾液腺ACC和多种其他唾液腺肿瘤标本进行TH、VIP、NFH/Tubb3免疫荧光染色,并与H&E对比,量化瘤内大径TH+神经和神经发芽密度。
Sympathetic axonogenesis promotes adenoid cystic carcinoma progression
包含人类标本免疫荧光、体外增殖与共培养、两种原位PDX模型、药物/手术去神经、β2R敲低、批量及单细胞RNA-seq等多层级功能与机制验证。
人类唾液腺ACC标本 AH43a和AH45b ACC PDX细胞 原位小鼠唾液腺(SMG/PG)PDX模型 交感神经节(SG)共培养体系
交感神经密度及发芽的定量(TH+神经数/mm2) 去甲肾上腺素(NE)处理浓度及时间(体外增殖实验) 6-OHDA给药剂量及时间(100 mg/kg当天,250 mg/kg 48小时后) 普萘洛尔给药方式及剂量(腹腔注射10 mg/kg,每日,每周5天,饮水500 mg/liter) 手术交感神经切除术的确认(Horner's综合征)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定ACC中是否存在交感神经支配及其形态特征
对10例人唾液腺ACC和多种其他唾液腺肿瘤标本进行TH、VIP、NFH/Tubb3免疫荧光染色,并与H&E对比,量化瘤内大径TH+神经和神经发芽密度。
验证去甲肾上腺素能否直接促进ACC细胞增殖
使用AH43a和AH45b ACC PDX细胞,进行MTT增殖实验,检测NE单独或联合普萘洛尔处理后的细胞活力;Western blot检测NE处理后信号通路(pERK、pCREB等)变化。
在三维培养中验证交感神经释放的NE对ACC球体生长的影响
将小鼠交感神经节(SG)与ACC球体在Matrigel中共培养,或使用SG条件培养基处理,量化球体数量;用共聚焦显微镜观察神经突对球体的浸润;同时用ACC条件培养基处理SG,观察神经突生长。
建立原位ACC PDX模型并比较不同微环境对肿瘤生长的影响
将AH43a和AH45b细胞注射至小鼠下颌下腺(SMG)、腮腺(PG)或侧腹,3周后通过大体观察、超声和生物发光成像测量肿瘤体积,并评估交感神经支配模式。
验证抑制交感神经能否抑制ACC肿瘤生长
使用化学去神经(6-OHDA)、手术颈交感神经切除术、β2R阻断剂普萘洛尔或CRISPR介导的β2R敲低(sgADRB2)处理携带原位ACC PDX的小鼠,比较肿瘤体积、肿瘤内NE浓度、TH+神经百分比和CD31+微血管密度。
评估交感神经相关基因表达特征与ACC患者生存及转移的关系
利用两个批量RNA-seq数据集和单细胞RNA-seq数据,计算去甲肾上腺素能神经发育等通路的IPAS评分,进行生存分析、原发与转移灶比较,以及NE运输和β2R下游通路的相关性分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与肿瘤接种 | Matrigel基质胶 | Corning | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | 文中未明确说明 | -- |
| Ham's F12营养混合物 | 文中未明确说明 | -- | |
| 胎牛血清 | 文中未明确说明 | -- | |
| 青霉素和链霉素 | 文中未明确说明 | -- | |
| L-谷氨酰胺 | 文中未明确说明 | -- | |
| 非必需氨基酸 | 文中未明确说明 | -- | |
| 氢化可的松 | Stem Cell | -- | |
| 胰岛素-转铁蛋白-硒 | Gibco | -- | |
| 霍乱毒素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 人表皮生长因子 | Gibco | -- | |
| ROCK抑制剂Y27632 | SelleckChem | -- | |
| 3T3-J2条件培养基 | Kerafast | -- | |
| LentiCas9-EGFP | Addgene | 63592 | |
| pU6-sgRNA EF1apuro-T2A-BFP | Addgene | 60955 | |
| GentleMACS C管 | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | |
| 组织消化 | 胶原酶IV | Worthington Biochemical Corp. | -- |
| 分散酶II | Sigma-Aldrich | -- | |
| DNA酶I | Worthington Biochemical Corp. | -- | |
| 细胞分离 | Falcon 70微米细胞过滤器 | Corning | 352350 |
| 细胞培养 | 牛血清白蛋白 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 动物实验 | 6-羟基多巴胺 | Sigma-Aldrich | H4381 |
| 普萘洛尔 | Sigma-Aldrich | P0884 | |
| 东莨菪碱 | Sigma-Aldrich | S0929 | |
| 细胞培养 | 卡巴胆碱 | Sigma-Aldrich | C4382 |
| MTT试剂(3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四氮唑溴盐) | Sigma-Aldrich | M2128 | |
| 抗坏血酸 | Sigma-Aldrich | A2218 | |
| 细胞处理 | RNeasy mini试剂盒 | Qiagen | 74704 |
| RT-PCR | qScript cDNA预混液 | Quantabio | 95048-100 |
| PerfeCTa SYBR Green FastMix Low ROX | Quantabio | 95074-012 | |
| ViiA7实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| Western blot | Laemmli SDS缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | J60660-AC |
| 样品还原剂 | Thermo Fisher Scientific | NP0009 | |
| 4-15% Tris-甘氨酸凝胶 | Bio-Rad | 456-1086 | |
| 聚偏二氟乙烯(PVDF)膜 | Bio-Rad | 170-4273 | |
| Odyssey DLx成像仪 | LI-COR | -- | |
| 免疫荧光 | Hoechst染料 | Thermo Fisher Scientific | H1399 |
| 正常山羊血清 | Millipore | S26LITER | |
| Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | BP151-500 | |
| 吐温20 | Thermo Fisher Scientific | BP337-500 | |
| 组织处理 | 肝素 | BD | 306515 |
| 冷冻包埋剂 | Milestone Medical | 6703MILE01 | |
| 10%缓冲福尔马林 | Thermo Fisher Scientific | SF-100 | |
| 免疫荧光 | Mowiol封片剂 | Sigma-Aldrich | 81381 |
| 细胞培养 | 35毫米玻璃底培养皿 | MatTek | P35G-1.5-20-C |
| 成像 | Pannoramic 250 Flash扫描仪 | 3DHistech | -- |
| Pannoramic共聚焦扫描仪 | 3DHistech | -- | |
| 成像分析 | ImageJ/Fiji软件 | National Institutes of Health | -- |
| Photoshop软件 | Adobe | -- | |
| 小动物成像 | Vevo 2100小动物超声成像系统 | FUJIFILM VisualSonics Inc. | -- |
| IVIS Spectrum小动物活体成像系统 | PerkinElmer | -- | |
| 生物发光成像 | pLVX-EF1α-IRES-LucZsGreen1质粒 | 文中未明确说明 | 631982 |
| 细胞培养 | Zeiss体视显微镜 | Zeiss | -- |
| Olympus SZ61体视显微镜 | Olympus | -- | |
| Axio Observer Z1倒置显微镜 | Zeiss | -- | |
| 共聚焦成像 | Leica SP8激光扫描共聚焦显微镜 | Leica microsystems | -- |
| 细胞培养 | 96孔板 | Corning | 353910 |
| 24孔板 | Corning | 353047 | |
| 异丙醇 | Thermo Fisher Scientific | BP2618 | |
| 抗体 | 抗NFH抗体 | Abcam | ab8135 |
| 抗VIP抗体 | Abcam | ab22736 | |
| 抗CD31抗体 | Abcam | ab124432 | |
| 抗TRPV1抗体 | Abcam | ab203103 | |
| 抗S100抗体 | Abcam | ab52642 | |
| 抗TH抗体 | 文中未明确说明 | -- | |
| 抗Tubb3抗体 | BioLegend | 801202 | |
| Alexa Fluor二抗 | Invitrogen | A11034, | |
| 抗磷酸化ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9101 | |
| 抗磷酸化RB抗体 | Cell Signaling Technology | 9308 | |
| 抗磷酸化CREB抗体 | Cell Signaling Technology | 9198 | |
| 抗磷酸化Bcl2抗体 | Cell Signaling Technology | 2827 | |
| 抗磷酸化cJun抗体 | Invitrogen | PA5-17890 | |
| 抗GAPDH抗体 | Millipore | MAB374 | |
| IRDye800CW山羊抗兔抗体 | LI-COR | 925-32211 | |
| IRDye680RD山羊抗小鼠抗体 | LI-COR | 925-68070 | |
| 组织消化 | GentleMACS Octo组织处理器 | Miltenyi Biotec | 130-096-427 |
| 组织匀浆 | GentleMACS M管 | Miltenyi Biotec | -- |
| 细胞培养 | 0.22微米过滤器 | Nalgene | 596-3320 |
| 组织处理 | 组织脱水机 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 人ACC标本神经分析 | 人ACC和对照肿瘤类型、样本量、TH+大径神经和神经发芽的定量标准(如/mm2) 阅读提示:Results 第一段及Figure1图注 |
| 体外增殖实验 | NE处理浓度、时间、细胞接种密度(3×10^3/孔)、血清饥饿时间(24小时)、MTT孵育时间(4小时) 阅读提示:Materials and methods - MTT assay |
| 交感神经节共培养 | SG来源(NSG或NSG.B6-P0tdTomato)、ACC细胞数量(25-50细胞)、Matrigel体积(5μl)、共培养时间(7-10天)、球体计数方法 阅读提示:Materials and methods - SG co-culture |
| 原位PDX模型 | 细胞注射量(5×10^4)、注射部位(SMG, PG, flank)、小鼠品系(NSG)、观察时间(3周) 阅读提示:Materials and methods - Animal experiments |
| 去神经处理 | 6-OHDA剂量和时间(100 mg/kg当天,250 mg/kg 48h后)、普萘洛尔剂量(10mg/kg/天,5天/周)及饮水浓度(500mg/L)、手术步骤及确认(Horner's综合征) 阅读提示:Materials and methods - Animal experiments |
| β2R敲低 | CRISPR敲低方法(lentiCas9-EGFP和pU6-sgRNA载体)、筛选方法(流式分选EGF+ BFP+)、验证(RT-PCR) 阅读提示:Materials and methods - ACC PDX models and cell culture |
| 转录组分析 | 批量RNA-seq数据集(SRP109264, SRP096726, PRJNA601423, PRJNA287156)、IPAS评分计算、生存分析分组方法(最低P值)、单细胞RNA-seq数据库(GSE210171, phs003070.v1) 阅读提示:Materials and methods - Characterizing sympathetic-related pathways in bulk and single-cell RNA-seq of ACC |