建立电子平衡模型
通过计算代谢转化的电子产生或消耗来预测细胞代谢重编程的策略。
基于电子守恒定律,定义代谢物的还原度Y,并建立电子平衡模型Φ(δ)=0。
Inhibiting both proline biosynthesis and lipogenesis synergistically suppresses tumor growth
包含体外细胞代谢示踪、P5CS基因敲除、体内移植瘤和转基因小鼠模型等多个证据层级,且通过回补和抑制剂实验验证机制。
HeLa细胞系 4T1细胞系 P5CS条件敲除小鼠 MMTV-PyMT乳腺癌小鼠模型
低氧条件:0.5%氧气 电子传递链抑制剂:抗霉素A(1 μM) P5CS敲除细胞系(HeLa/P5CS-KO和4T1/P5CS-KO) ACC1抑制剂PF-05175157(5或10 μM) HMGR抑制剂洛伐他汀(1 μM)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过计算代谢转化的电子产生或消耗来预测细胞代谢重编程的策略。
基于电子守恒定律,定义代谢物的还原度Y,并建立电子平衡模型Φ(δ)=0。
验证低氧或ETC抑制下细胞代谢是否符合模型预测的电子平衡策略。
使用HeLa和4T1细胞,在低氧(0.5% O2)或抗霉素A处理下,进行13C-葡萄糖和13C-谷氨酰胺示踪,检测糖酵解、PPP(磷酸戊糖途径)、还原性羧化、脯氨酸合成和脂质合成相关的代谢物标记及水平。
检验电子积累是否作为代谢重编程的驱动力。
使用α-酮丁酸降低NADH/NAD+比值,检测低氧下脯氨酸合成和脂质生成的标记变化。
验证脯氨酸合成和脂肪生成在低氧下是否互相补偿。
通过CRISPR/Cas9敲除HeLa和4T1细胞的P5CS,或用ACC1抑制剂PF-05175157处理,检测细胞增殖和代谢标记变化。
验证同时抑制脯氨酸合成和脂肪生成能否抑制体内肿瘤生长。
将P5CS敲除和对照的4T1和HeLa细胞接种到裸鼠,使用PF-05175157和洛伐他汀单独或联合处理,测量肿瘤体积。
评估P5CS缺失对正常发育和肿瘤发生的影响。
利用CRISPR/Cas9生成P5CSfl/fl小鼠,与EIIa-Cre小鼠杂交获得P5CSΔ/Δ小鼠,再与MMTV-PyMT小鼠杂交,观察肿瘤发生。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | -- | -- |
| 人血浆样培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | BioInd | -- | |
| 代谢物示踪 | [U-13C]-葡萄糖 | Cambridge Isotope Laboratories | -- |
| [1,6-13C]-葡萄糖 | Cambridge Isotope Laboratories | -- | |
| [3-2H]-葡萄糖 | Cambridge Isotope Laboratories | -- | |
| [U-13C]-谷氨酰胺 | Cambridge Isotope Laboratories | -- | |
| 药物处理 | PF-05175157 | ChemicalBook | -- |
| 洛伐他汀 | MedChem Express | -- | |
| 细胞增殖检测 | Hoechst 33345 | -- | -- |
| Cell Titer-Glo发光细胞活力检测试剂盒 | Promega | 7570 | |
| Western blot | 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-lg |
| 抗HIF1α抗体 | Proteintech | 20960-1-AP | |
| 抗GOT1抗体 | Proteintech | 14886-1-AP | |
| 抗GOT2抗体 | Proteintech | 14800-1-AP | |
| 抗MDH1抗体 | Proteintech | 15904-1-AP | |
| 抗MDH2抗体 | Proteintech | 15462-1-AP | |
| 抗P5CS抗体 | Proteintech | 17719-1-AP | |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Li-Cor | P/N | |
| 代谢物分析 | TSQ Quantiva三重四极杆质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Dionex UltiMate 3000 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Synergi Hydro-RP 100A 2.1 × 100-mm色谱柱 | Phenomenex | -- | |
| 脂质分析 | Cortecs C18色谱柱 | Waters | -- |
| 非靶向代谢组学 | 1290 Infinity液相色谱 | Agilent Technologies | -- |
| TripleTOF 6600 | AB Sciex | -- | |
| ACQUIY UPLC BEH 1.7-µm色谱柱 | Waters | -- | |
| 代谢物浓度测定 | M-100自动生物传感器分析仪 | Shenzhen Siemen Technology Co., Ltd | -- |
| NADH/NAD+测定 | NAD/NADH-Glo检测试剂盒 | Promega | G9072 |
| NADPH/NADP+测定 | NADP/NADPH-Glo检测试剂盒 | Promega | G9082 |
| 读数 | Synergy H1多功能酶标仪 | BioTek | -- |
| 显微成像 | NIS-element AR Nikon ECLIPSE Ti显微镜 | Nikon | -- |
| 转染 | Lipofectamine-3000 | Invitrogen | -- |
| 动物实验 | 雌性裸鼠 | Experimental Animal Center of Nanjing Biomedical Research Institute | -- |
| RNA-seq | Agilent 2100生物分析仪 | Agilent | -- |
| Illumina Hiseq 4000测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与低氧处理 | 细胞系来源,培养基(DMEM或HPLM)成分,培养气体条件,低氧浓度(0.5% O2),处理时间(8-48小时) 阅读提示:Materials and methods: Cell culture, Metabolite isotope tracing |
| ETC抑制处理 | 抗霉素A使用浓度(1 μM),处理时间(8小时) 阅读提示:Materials and methods: Cell culture,图例 |
| 代谢物示踪 | 同位素标记底物([U-13C]-葡萄糖、[U-13C]-谷氨酰胺等),标记物浓度,标记时间(8小时或48小时),培养基中标记底物与未标记底物的比例 阅读提示:Materials and methods: Metabolite isotope tracing |
| 细胞增殖实验 | 细胞接种密度(2×10^3或1×10^5),培养板规格(24孔或12孔),处理条件(低氧或抗霉素A),处理时间(3天或7天) 阅读提示:Materials and methods: Cell proliferation assay |
| P5CS基因敲除 | sgRNA序列,转染方法(Lipofectamine-3000),单克隆筛选方法(流式分选),敲除验证(Western blot和测序) 阅读提示:Materials and methods: Generation of P5CS-knockout cell lines |
| 体内肿瘤实验 | 细胞注射数量(2×10^6),注射部位(皮下腹股沟),药物剂量(PF-05175157 50或100 mg/kg,洛伐他汀15或30 mg/kg),给药途径(腹腔注射),给药频率(每日或每隔一日),治疗开始时间(肿瘤体积约80 mm^3) 阅读提示:Materials and methods: Animal experiments |