肠干细胞中炎症小体驱动的分化程序可防御沙门氏菌感染

An inflammasome-driven differentiation program in intestinal stem cells protects against Salmonella infection

作者信息S Lebon, A Habshush Menachem, N Davidzohn, A Katz, N Wigoda, T Braun, D Yahalomi, R Rotkopf, V Holiar, T Dadosh, S Levin-Zaidman, N Dezorella, I Goliand, M Kupervaser, S Leebhoff, N Blumberger, D Hoffman, M Grunewald, Y Levin, Y Haberman, M Hofree, M Biton
PMID42120792
发布时间2026-07
DOI10.1038/s41590-026-02514-6

实验完整度

结合体内小鼠感染模型、scRNA-seq、谱系示踪、类器官及基因敲除等多层级验证,明确功能与机制。

主要模型

C57BL/6J小鼠 Lgr5+肠干细胞 小鼠肠道类器官 人肠道类器官

重点核对

小鼠感染剂量:5×10^8 CFU 鼠伤寒沙门氏菌 SL1344 灌胃 细胞感染 MOI:10,感染 2 小时,庆大霉素处理 30 分钟清除胞外菌 时间点:感染后 12、24、72、144 小时 Pycard 缺失模型:Lgr5-CreERT2 或 Vil1-CreERT2 介导的条件性敲除 检测指标:Lgr5+ ISC 与潘氏细胞比例、隐窝 CFU、器官oid形成能力

摘要

肠干细胞(ISC)对于维持上皮更新和屏障完整性至关重要,但它们在协调针对肠道病原体的防御中的作用仍不清楚。在此,我们确定了一种干细胞内在的免疫机制,通过该机制,Lgr5+ ISC 能够检测胞内鼠伤寒沙门氏菌,并激活依赖炎症小体的分化程序。使用荧光标记的肠道沙门氏菌、单细胞转录组学、谱系示踪、类器官模型和遗传扰动,我们表明被入侵的 ISC 通过含有 CARD 的凋亡相关斑点样蛋白(ASC,由 Pycard 编码)介导的炎症小体信号传导,快速向富含抗微生物肽的潘氏细胞重编程。这种命运转换增强了上皮的抗微生物能力,并限制了病原体在隐窝中的持续存在。该反应具有沙门氏菌特异性,并在人肠道类器官中保守。此外,与入侵相关的转录特征在克罗恩病患者的 ISC 中富集。我们的发现揭示了 ISC 作为细菌入侵的主动传感器,并通过炎症小体信号传导启动上皮重塑,突显了干细胞可塑性作为一种前线先天免疫策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Lgr5+ 肠干细胞如何直接响应并防御肠道病原菌(如鼠伤寒沙门氏菌)的入侵?
核心机制
被沙门氏菌入侵的 Lgr5+ ISC 通过 ASC(由 Pycard 编码)介导的炎症小体信号通路,激活 Wnt、Notch 和 mTOR 信号,驱动干细胞向潘氏细胞分化,以清除病原体并增强上皮抗菌防御。
主要证据
结合体内小鼠感染、scRNA-seq、谱系示踪、类器官感染实验、Pycard 条件性敲除小鼠模型以及人肠道类器官实验,证明炎症小体激活促进 ISC 向潘氏细胞分化并限制沙门氏菌在隐窝中的持续存在。
研究意义
揭示肠干细胞作为细菌入侵主动传感器的先前未知的防御机制,为理解干细胞可塑性及炎症性肠病发病机制提供新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

小鼠感染模型建立

建立肠道沙门氏菌感染模型,用于研究肠上皮细胞的早期反应。

对 C57BL/6J 小鼠进行 5×10^8 CFU 鼠伤寒沙门氏菌 SL1344(GFP/RFP 标记)灌胃感染,并在感染后 0、12、24 小时收集小肠上皮细胞。

2

上皮细胞单细胞转录组分析

解析感染早期肠上皮细胞组成和转录程序的动态变化。

通过流式分选 EpCAM+ 细胞并进行 10x Chromium scRNA-seq 分析,鉴定细胞类型,比较感染组与对照组的细胞比例和差异表达基因。

3

入侵上皮细胞鉴定与转录组分析

特异性分析被沙门氏菌入侵的上皮细胞的转录特征和细胞组成。

利用 GFP 标记的沙门氏菌,通过流式分选 EpCAM+GFP+ 细胞进行 scRNA-seq,并利用 16S rRNA 探针和 CLEM 验证细菌存在。

4

Lgr5+ ISC 谱系示踪

追踪 Lgr5+ ISC 及其子代在感染中的分化命运。

使用 Lgr5-CreERT2;Rosa26LSL-tdTomato 小鼠进行谱系示踪,结合 scPulse-seq 和免疫荧光分析 tdTomato+ 细胞的分化轨迹。

5

离体类器官感染模型

验证 ISC 对沙门氏菌的直接内在反应,排除免疫细胞影响。

分离小鼠小肠隐窝并感染沙门氏菌(MOI=10),然后培养形成类器官,通过 qPCR 和流式细胞术检测 Paneth 细胞分化。

6

炎症小体功能验证

验证 ASC/炎症小体在 ISC 分化中的必要性。

使用 Pycard 条件性敲除小鼠(Lgr5-CreERT2 或 Vil1-CreERT2),或在人类类器官中使用 CRISPR-Cas9 敲除 PYCARD,感染沙门氏菌后检测 Paneth 细胞分化。

7

体内保护效果评估

评估 ISC 特异性的炎症小体防御反应在限制细菌播散中的作用。

在 PycardΔIEC 小鼠中感染沙门氏菌 144 小时后,测量肠道隐窝和脾脏中的细菌载量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
他莫昔芬文中未明确说明--
基质胶Corning--
Jagged-1 多肽Ana-SpecAS-65155
庆大霉素文中未明确说明--
Z-VAD-FMKSelleckS7023
VX-765Sigma--
IntestiCult 类器官生长培养基(人)Stemcell06010
IntestiCult 分化培养基(人)Stemcell100-0214
抗EpCAM抗体BioLegend118218
抗CD45抗体BioLegend103177
抗CD24抗体BioLegend101814
抗溶菌酶抗体AgilentEC 3.2.1.17
抗E-钙粘蛋白抗体BD Biosciences610182
抗Olfm4抗体Cell Signaling Technology39141
抗Ki67抗体Thermo Fisher Scientific14-5698-82
抗裂解caspase 3抗体Cell Signaling Technology9661
抗GFP抗体Cell Signaling Technology2956
抗RFP抗体Rockland600-401-379
TUNEL检测试剂盒Abcamab66110
RNAScope 多通道荧光试剂盒Advanced Cell Diagnostics--
Chromium 单细胞3'试剂盒10x Genomics--
NovaSeq 6000Illumina--
timsTOF UltraBruker Daltonics--
nanoElute2Bruker--
LSM900 共聚焦显微镜Zeiss--
Tecnai SPIRIT 透射电子显微镜Thermo Fisher Scientific--
TrypLE ExpressGibco--
Maxima 逆转录酶Life Technologies--
Fast SYBR green 预混液Thermo Fisher Scientific--
QuantiBlueInvivogenrep-qbs
MycoBlue 支原体检测试剂盒Vazyme BiotechD101-01

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠感染
感染剂量:5×10^8 CFU;感染途径:灌胃;菌株:SL1344
阅读提示:Methods - Mice infection
上皮细胞分离与感染细胞分选
庆大霉素浓度:100 μg/ml 处理30分钟;分选标志物:EpCAM、CD45、GFP
阅读提示:Methods - Epithelial cell dissociation and crypt isolation; Fig. 1a,b
离体类器官感染
MOI=10;感染时间:2小时;庆大霉素处理:100 μg/ml
阅读提示:Methods - In vitro infection of mouse small intestine crypts; Fig. 3a
谱系示踪
他莫昔芬剂量:2 mg/20 g体重;标记细胞:Lgr5+ ISC及其子代
阅读提示:Methods - Lineage tracing and scPulse sequencing; Fig. 2a,b
炎症小体功能验证
Pycard 敲除诱导:他莫昔芬注射5次;抑制剂:Z-VAD-FMK(20 μM)或 VX-765(30 μM)
阅读提示:Methods - Pycard deletion in intestinal epithelial cells; Fig. 4a,d,i