USP2介导的PPARγ稳定性通过油酸促进肝细胞癌进展和M2巨噬细胞极化

USP2-mediated PPARγ stabilization promotes hepatocellular carcinoma progression and M2 macrophage polarization via oleic acid

作者信息Jing Cao, Kui Chen, Kuan Hu, Xingyu Mi, Yilin Pan, Desheng Xiao, Shuang Liu, Liang Xiao, Ledu Zhou, Yongguang Tao, Jianing Tang
PMID41193183
发布时间2025-11-04
DOI10.1136/jitc-2025-012721

实验完整度

包含患者来源类器官筛选、细胞系功能实验、动物模型(皮下移植瘤、DEN诱导及基因敲除小鼠)、单细胞测序、代谢组学及机制验证(Co-IP、CUT&RUN、质谱)等多个独立证据层级。

主要模型

HCC患者来源类器官(PDOs) HCC细胞系(LM3、Hep3B、Hepa1-6等) 小鼠皮下移植瘤模型 DEN诱导的原发性肝癌小鼠模型

重点核对

ML364剂量(5 mg/kg/2天,腹腔注射)及处理时间(12周) 细胞系(LM3、Hep3B)及处理浓度(2 μM和5 μM ML364) 共培养系统中THP-1巨噬细胞或BMDMs与HCC细胞的比例 油酸浓度及处理时间(文中未明确说明具体浓度和时长) PPARγ K142位点突变及USP2 C276A突变体的使用

摘要

背景 肝细胞癌(HCC)是一种侵袭性肝癌,预后不良。去泛素化酶(DUBs)是肿瘤进展的关键调节因子,但DUBs在HCC中的功能意义仍知之甚少。 方法 使用HCC患者来源的类器官(PDOs)、HCC细胞系和动物模型来评估靶向泛素特异性蛋白酶(USP)2抑制的抗癌反应。我们通过单细胞RNA测序和流式细胞术分析了USP2表达与免疫细胞浸润的相关性。机制上,我们建立了体外共培养系统并分析了代谢数据,以寻找肿瘤细胞USP2与微环境中巨噬细胞之间的桥梁。我们进行了免疫荧光、免疫共沉淀、CUT&RUN、ELISA和质谱分析来探索分子通路。 结果 我们发现靶向USP2的抑制剂(ML364)对HCC PDOs显示出有效的抗癌反应。靶向USP2显著抑制HCC的脂质代谢并诱导细胞铁死亡。单细胞RNA测序分析和多重免疫组化分析表明,HCC中USP2的高表达与M2巨噬细胞的浸润相关。机制上,USP2通过去除K142位点的K48连接泛素链去泛素化并稳定过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)。PPARγ促进脂肪酸生物合成相关基因(ATP-柠檬酸裂解酶、乙酰辅酶A羧化酶和ACSS2)的转录和脂肪酸(包括油酸)的从头合成。HCC细胞来源的油酸通过增强巨噬细胞的脂肪酸氧化促进M2巨噬细胞极化。极化的M2巨噬细胞进一步分泌白细胞介素-10(IL-10),这创造了一个IL-10/STAT3/USP2正反馈回路,持续激活USP2表达。 结论 我们的数据表明,USP2是介导HCC细胞与肿瘤相关巨噬细胞相互作用的关键分子,可能是HCC有前景的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在探索去泛素化酶USP2在肝细胞癌进展和肿瘤微环境中巨噬细胞极化中的作用及其分子机制。
核心机制
USP2通过去泛素化稳定PPARγ(去除K48连接泛素链,位点K142),PPARγ上调脂肪酸合成基因ACLY、ACACA和ACSS2,促进油酸合成,油酸增强巨噬细胞脂肪酸氧化促进M2极化,M2分泌IL-10激活STAT3进而上调USP2,形成正反馈环路。
主要证据
通过类器官药物筛选、细胞功能实验、代谢组学、蛋白质组学、体内模型(皮下移植瘤、DEN诱导模型、基因敲除小鼠)以及共培养系统,证实USP2促进肿瘤生长和M2极化,并逆转表型。
研究意义
USP2作为介导HCC细胞与肿瘤相关巨噬细胞相互作用的关键分子,可能成为HCC的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

类器官药物筛选

筛选靶向去泛素化酶的抗肝癌化合物

建立6例HCC患者来源类器官,使用22种靶向DUB的抑制剂处理,评估细胞活力。

2

体外细胞功能验证

验证ML364或USP2敲低对肝癌细胞恶性表型的影响

MTT/CCK8、集落形成、侵袭实验检测细胞活力、增殖和侵袭;检测游离脂肪酸(FFA)和甘油三酯(TG)水平。

3

体内肿瘤模型验证

评估ML364或USP2敲低在体内的抗肿瘤效果

构建皮下移植瘤模型和DEN诱导的原发性肝癌模型,给予ML364处理,检测肿瘤生长、肺转移、AFP水平。

4

机制研究:USP2与PPARγ的相互作用

阐明USP2调控PPARγ稳定性的分子机制

通过免疫共沉淀、质谱、分子对接、突变体实验、泛素化实验,确定USP2与PPARγ相互作用及去泛素化位点。

5

巨噬细胞极化共培养

验证USP2通过油酸影响巨噬细胞M2极化

将HCC细胞与THP-1巨噬细胞或BMDMs共培养,流式检测M2标记,检测FAO和ATP水平,外源油酸回复实验,抑制FAO验证。

6

转录调控机制

鉴定PPARγ下游靶基因和STAT3对USP2的转录调控

通过荧光素酶报告基因、CUT&RUN-qPCR确定PPARγ结合ACLY、ACACA、ACSS2启动子区域;通过启动子截短和突变确定STAT3结合位点。

7

免疫微环境分析

评估USP2表达与肿瘤免疫浸润的关系

单细胞RNA测序分析、多重免疫组化、流式检测CD8+ T细胞浸润,联合抗PD-1治疗。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
类器官培养试剂盒Absin--
DMEM培养基Life Technologies--
胎牛血清Life Technologies--
RPMI 1640培养基Life Technologies--
佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯Sigma-Aldrich--
ML364MCEHY-100900
抗小鼠PD-1抗体Bio X CellBE0146
PPARγ抗体Proteintech16643-1-AP
USP2抗体Proteintech10392-1-AP
β-Actin抗体Proteintech66009-1-Ig
Flag抗体Proteintech66008-4-Ig
Myc抗体Proteintech60003-2-Ig
HA抗体Proteintech510642-AP
游离脂肪酸检测试剂盒BeyotimeS0215S
甘油三酯检测试剂盒BeyotimeS0219S
谷胱甘肽检测试剂盒Beyotime--
High活性pG-MNase CUT&RUN检测试剂盒VazymeHD101-01
PVDF膜Millipore--
ChemiDoc MP成像系统Bio-Rad--
Fortessa流式细胞仪BD Biosciences--
可固定活力染料510BD Biosciences564406
Fc受体封闭液BD Biosciences553142
anti-CD45-APC-Cy7抗体BD Biosciences557659
anti-APC-CD206抗体BD Biosciences565250
anti-FITC-CD11b抗体eBioscience11-0112-82
anti-PE-CF594-F4/80抗体BD Biosciences565613

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
类器官药物筛选
PDOs来源、培养条件、ML364处理浓度和时间(10 μM,48小时)
阅读提示:Methods中“Cell culture and screen of DUB inhibitors”部分
细胞处理
ML364浓度(2 μM、5 μM)和时间(48小时)
阅读提示:Results中“Targeting USP2 inhibits HCC progression and suppresses lipid metabolism”部分及图2
体内动物模型
ML364剂量(5 mg/kg/2天)和给药方式(腹腔注射),DEN诱导剂量(25 mg/kg)和时间(14天龄)
阅读提示:Methods中“Tumorigenesis models”部分
共培养系统
Transwell孔径(0.4 μm)、细胞比例、ML364处理浓度和时间
阅读提示:Methods中“Cell culture and screen of DUB inhibitors”部分及图3图例
油酸处理
油酸浓度和处理时间(文中未明确说明具体浓度和时长)
阅读提示:Results中“Targeting USP2 suppressed macrophage polarization towards the M2 phenotype via oleic acid”部分及图3图例