负载脑源性神经营养因子的小细胞外囊泡经鼻给药治疗脑缺血

Intranasal delivery of BDNF-loaded small extracellular vesicles for cerebral ischemia therapy

作者信息Xin Zhou, Xiaohui Deng, Mengfan Liu, Meiting He, Wenhui Long, Zhibin Xu, Kun Zhang, Tao Liu, Kwok-Fai So, Qing-Ling Fu, Libing Zhou
PMID36958402
发布时间2023-05-01
DOI10.1016/j.jconrel.2023.03.033

实验完整度

包含体外细胞实验(MSC培养与sEV制备)、体内动物模型(tMCAO小鼠)、行为学、影像学、组织学、分子生物学及组学分析等多个证据层级,并有功能验证。

主要模型

人iPSC诱导的间充质干细胞(MSC) tMCAO小鼠模型

重点核对

小鼠品系:C57BL/6J,雄性,9-10周龄,23-27g tMCAO手术:左侧大脑中动脉阻塞45分钟 给药方式:鼻内给药,3次(术后2、24、48小时),每次1.0×10^10个sEV或BDNF-sEV 鼻内给药前30分钟给予透明质酸酶10 μL(100 U/只) 行为学测试时间点:术后3、7、14、21、28天

摘要

间充质干细胞在动物研究和临床试验中显示出治疗脑缺血的前景,但其临床应用仍面临许多挑战。利用小细胞外囊泡可能克服这些挑战。在本研究中,我们在培养的间充质干细胞中过表达脑源性神经营养因子,并使用阴离子交换色谱法纯化小细胞外囊泡。在缺血性卒中小鼠模型中,经鼻给药后,小细胞外囊泡选择性地靶向梗死周围区域,而脑源性神经营养因子的装载增强了小细胞外囊泡在改善功能行为、神经修复(表现为梗死体积减小、神经发生和血管生成增加、突触可塑性和纤维保留增强)以及降低炎性细胞因子表达和胶质反应方面的疗效。经鼻给予小细胞外囊泡和脑源性神经营养因子-小细胞外囊泡可上调神经保护相关基因并下调炎症相关基因,且脑源性神经营养因子-小细胞外囊泡治疗激活了缺血脑中的脑源性神经营养因子/原肌球蛋白相关激酶B信号通路。对小细胞外囊泡和脑源性神经营养因子-小细胞外囊泡的转录组学和蛋白质组学分析揭示了大量参与神经保护和抗炎的蛋白质和微小RNA,且脑源性神经营养因子-小细胞外囊泡表现出与小细胞外囊泡不同的特征。总之,经鼻递送负载脑源性神经营养因子的细胞外囊泡是治疗脑缺血的一种有前景的替代策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
经鼻给予负载BDNF的间充质干细胞来源小细胞外囊泡能否有效治疗脑缺血,并与单独使用sEV相比增强疗效。
核心机制
BDNF-sEVs通过激活BDNF/TrkB信号通路及其下游分子(Akt、Erk、PLCγ1、CREB)的磷酸化,同时其携带的丰富蛋白质和miRNA可能协同发挥神经保护和抗炎作用。
主要证据
在tMCAO小鼠模型中,BDNF-sEVs显著改善神经功能,减少梗死体积,抑制神经炎症,促进神经发生、血管生成、突触可塑性和纤维保留,并激活BDNF/TrkB信号通路。
研究意义
经鼻递送负载BDNF的sEVs为脑缺血提供了一种有前景的替代治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

sEVs制备与表征

获得高纯度、载有BDNF的sEVs并验证其基本特性。

在MSCs中过表达BDNF(LV-CMV-BDNF-mCherry-WPRE-pA),通过阴离子交换色谱纯化sEVs,并通过TEM、NTA、Western blot、ELISA等方法验证其形态、粒径、标志物及BDNF含量。

2

体内分布与安全性评价

评估sEVs经鼻给药后在体内的分布及对鼻黏膜的安全性。

tMCAO小鼠经鼻给予mCherry标记的sEVs,使用IVIS成像观察器官分布,并通过免疫荧光染色检测sEVs与神经元、小胶质细胞、星形胶质细胞的共定位;同时通过H.E.染色评估鼻黏膜毒性。

3

行为学评估

评估sEVs和BDNF-sEVs对tMCAO小鼠神经功能恢复的影响。

在术后3、7、14、21、28天进行mNSS、转棒、足错步和握力测试,由不知情的观察者执行。

4

梗死体积测量

评估sEVs和BDNF-sEVs对脑梗死体积的影响。

术后3天通过MRI和TTC染色测量梗死体积;术后28天通过MRI测量脑萎缩体积。

5

炎症反应评估

评估sEVs和BDNF-sEVs对缺血脑炎症反应的影响。

术后3天收集脑组织,通过Bio-Plex检测23种细胞因子,免疫荧光染色检测Iba1/CD68阳性细胞(M1型小胶质细胞)密度,Western blot检测cleaved caspase-3表达。

6

神经发生与血管生成评估

评估sEVs和BDNF-sEVs对缺血后神经发生和血管生成的影响。

术后14天脑切片进行Ki67、DCX、CD31免疫荧光染色,统计阳性细胞密度。

7

突触和纤维保留评估

评估sEVs和BDNF-sEVs对突触及神经纤维的保护作用。

术后28天通过TEM观察突触密度,Western blot检测PSD95、synapsin-1,DTI成像分析各向异性分数,免疫荧光染色检测MBP和NF200。

8

机制探索:BDNF/TrkB信号通路

验证BDNF-sEVs是否通过激活BDNF/TrkB信号通路发挥作用。

术后3天收集缺血脑组织,Western blot检测BDNF、TrkB、Akt、Erk、PLCγ1、CREB的总蛋白及磷酸化水平。

9

转录组分析

探究sEVs和BDNF-sEVs治疗后的转录组变化。

术后3天对缺血脑组织进行RNA测序,分析差异表达基因,并进行KEGG通路富集。

10

蛋白质组和miRNA分析

分析sEVs和BDNF-sEVs的蛋白质及miRNA组成。

对sEVs和BDNF-sEVs进行标记定量蛋白质组学和小RNA测序,鉴定差异表达的蛋白质和miRNA。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
单丝缝合线Doccol602256PK10
透明质酸酶Sigma-Aldrich9001-54-1
慢病毒 LV-CMV-BDNF-mCherry-WPRE-pABrain VTA--
Econo-Pac层析柱Bio-Rad Laboratories--
阴离子交换树脂GE Health Care Life Science--
超滤装置Thermo Fisher Scientific--
ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0010c
兔抗NeuN抗体Abcamab177487
兔抗Iba1抗体Wako019-19741
大鼠抗GFAP抗体Thermo Fisher13-0300
握力计Ugo BasileNO47200
转棒仪Ugo Basile600
9.4T小动物MRI扫描仪Bruker BioSpin--
2,3,5-三苯基氯化四氮唑Sigma AldrichT8877
Bio-Plex系统BioRad--
23因子细胞因子试剂盒BioRad12005641
大鼠抗CD68抗体Abcamab53444
大鼠抗Ki67抗体Invitrogen14-5698-82
兔抗双皮质素抗体Abcamab18723
小鼠抗CD31抗体Santa cruzsc-376764
大鼠抗髓鞘碱性蛋白抗体SigmaMAB386
兔抗NF200抗体SigmaN4142
Alexa Fluor 488或594二抗Thermo FisherA21206/A11012/A11007/A11006/A32744
兔抗BDNF抗体Abcamab108319
山羊抗TrkB抗体R&D SystemsAF1494
兔抗磷酸化TrkB抗体ABclonalAP0423
小鼠抗Akt抗体Cell Signaling Technology2920
兔抗磷酸化Akt抗体Cell Signaling Technology4060
兔抗Erk抗体Cell Signaling Technology4695
兔抗磷酸化Erk抗体Cell Signaling Technology4370
兔抗PLCγ1抗体Cell Signaling Technology5690
兔抗磷酸化PLCγ1抗体Cell Signaling Technology14008
兔抗CREB抗体Cell Signaling Technology9197
小鼠抗磷酸化CREB抗体Santa Cruzsc-81486
兔抗裂解caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
兔抗PSD95抗体Cell Signaling TechnologyD74D3
兔抗突触素1抗体SigmaS193
小鼠抗GAPDH抗体Abcamab8245
小鼠抗β-微管蛋白抗体Cell Signaling Technology86298
小鼠抗β-肌动蛋白抗体Abcamab8226
莱卡超薄切片机LeicaUC-7
JEOL透射电子显微镜Japan Electron Optics Laboratory Co., Ltd.JEM-1400 PLUS
TRIzol试剂Invitrogen15596026
NanoDrop 2000分光光度计Thermo Scientific--
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
TruSeq链特异性mRNA文库制备试剂盒Illumina--
Illumina HiSeq X Ten测序平台Illumina(上海欧亿生物技术有限公司提供)--
逆转录试剂盒Takara BiotechnologyRR047A
SYBR Green PCR试剂盒Takara BiotechnologyRR430A
Opticon 2实时荧光定量PCR检测系统BioRad--
胰蛋白酶Promega--
Orbitrap Exploris 480质谱仪Thermo Fisher Scientific--
NEB Next小RNA文库制备试剂盒NEB--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
小鼠品系、年龄、性别、体重;MCAO阻塞时间;麻醉方案;术后神经功能评分标准
阅读提示:见Methods 'Animal models and grouping'
sEVs制备
MSC来源、BDNF过表达载体、sEV纯化方法(阴离子交换色谱)、BDNF装载量
阅读提示:见Methods 'Cell culture and sEVs preparation'
经鼻给药
给药时间、剂量、次数;透明质酸酶用量;给药前处理
阅读提示:见Methods 'Animal models and grouping'
行为学评估
各测试的具体参数(如转棒速度、足错步评估时间)、测试时间点、盲法
阅读提示:见Methods 'Behavioral tests'
梗死体积测量
MRI参数(T2加权成像序列)、TTC染色浓度和时间、计算方式
阅读提示:见Methods 'Magnetic resonance imaging' 和 'TTC staining and infarct volume measurement'
炎症评估
细胞因子检测方法和时间点、免疫荧光染色的抗体及区域选择
阅读提示:见Methods 'Cytokine analysis' 和 'Immunofluorescent staining and quantification'
神经发生与血管生成
标记物(Ki67、DCX、CD31)、观察区域(SVZ和梗死周围)、统计标准
阅读提示:见Results 'BDNF-sEVs and sEVs promote neurogenesis and angiogenesis'及图5图注
突触和纤维保护
TEM制备和定量方法、Western blot检测的蛋白和抗体、DTI参数
阅读提示:见Methods 'Transmission electron microscopy (TEM)', 'Western blots', 'Magnetic resonance imaging (MRI)'及图6图注
机制验证
Western blot分析的具体蛋白及磷酸化位点、取样时间点
阅读提示:见Methods 'Western blots' 和 Results 'BDNF-sEV treatment activates the BDNF/TrkB signaling'
转录组分析
RNA提取、文库构建、测序平台、差异表达基因阈值、通路富集方法
阅读提示:见Methods 'RNA sequencing (RNAseq)'
蛋白质组和miRNA分析
蛋白质组学方法(LC-MS/MS)、miRNA测序方法、差异表达阈值
阅读提示:见Methods 'Proteomic analysis of BDNF-sEVs and sEVs' 和 'Small RNA sequencing'