验证SE模型中焦亡的发生
确定焦亡是否在SE的病理过程中被激活。
在PILO诱导的SE小鼠海马和原代神经元中检测焦亡相关蛋白NLRP3、GSDMD、caspase-1 p20的表达,以及炎症因子IL-18和IL-1β水平;并通过TRM大鼠模型排除失神发作中焦亡的参与。
TRPM7 contributes to pyroptosis and its involvement in status epilepticus
包含细胞模型、动物模型、患者样本等多种模型,进行基因敲低/过表达、药物抑制、脑电记录、膜片钳等全面验证。
N2a细胞 原代海马神经元 C57BL/6J小鼠SE模型 TRPM7条件敲除小鼠
SE诱导剂量:PILO 300 mg/kg i.p. TRPM7敲低:AAV-sh-TRPM7病毒立体定位注射 TRPM7抑制:NS8593(5 mg/kg i.v.)和SDUY-225(2.5和5 mg/kg i.v.) NLRP3抑制:MCC950(50 mg/kg i.p.) 信号通路抑制:Stattic(0.5 μM)、NAC(5 mM)、AG490(50 μM)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定焦亡是否在SE的病理过程中被激活。
在PILO诱导的SE小鼠海马和原代神经元中检测焦亡相关蛋白NLRP3、GSDMD、caspase-1 p20的表达,以及炎症因子IL-18和IL-1β水平;并通过TRM大鼠模型排除失神发作中焦亡的参与。
探究TRPM7在SE模型中表达是否上调。
通过Western blot和免疫荧光检测PILO诱导的SE小鼠、原代神经元和N2a细胞中TRPM7的表达变化,并分析其与神经元标记物NeuN的共定位。
确定TRPM7是否促进焦亡。
在N2a细胞中过表达或敲低TRPM7,检测焦亡相关蛋白表达变化;在体内通过AAV-sh-TRPM7和TRPM7-CKO小鼠验证TRPM7敲除对焦亡的影响。
探究TRPM7通过Zn2+内流是否触发焦亡。
使用TSQ染色检测SE小鼠海马Zn2+积累;用ZnCl2处理N2a细胞;用TPEN、DFX、TTM分别螯合Zn2+、Fe2+、Cu2+,观察焦亡蛋白变化。
揭示TRPM7介导Zn2+如何激活STAT3,并验证p-STAT3直接结合Nlrp3和Trpm7启动子。
检测PILO处理后STAT3磷酸化水平;使用ChIP-qPCR验证p-STAT3与Trpm7和Nlrp3启动子区域结合;通过STAT3抑制剂Stattic抑制STAT3磷酸化。
验证TRPM7敲低或抑制是否能缓解SE小鼠的神经损伤和过度兴奋。
在SE小鼠中通过AAV-sh-TRPM7或药物NS8593、MCC950、SDUY-225处理,检测神经元损伤、焦亡水平、脑电活动(EEG)。
评估SDUY-225作为TRPM7抑制剂在SE模型中的效果。
通过膜片钳记录HEK293细胞TRPM7电流,测定SDUY-225的抑制效果;在SE小鼠和N2a细胞中评估其对焦亡、神经元损伤和EEG活动的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| TRPM7抑制剂 | NS8593 | -- | -- |
| NLRP3抑制剂 | MCC950 | -- | -- |
| Zn2+螯合剂 | TPEN | -- | -- |
| Fe2+螯合剂 | 地拉罗司 | -- | -- |
| Cu2+螯合剂 | 四硫代钼酸铵 | -- | -- |
| 活性氧清除剂 | N-乙酰半胱氨酸 | -- | -- |
| JAK2抑制剂 | AG490 | -- | -- |
| STAT3抑制剂 | Stattic | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Abbkine | BMU106-CN |
| 细胞转染 | Lipo8000转染试剂 | Beyotime | -- |
| RNA提取 | RNAiso Plus | TaKaRa | -- |
| qRT-PCR | SYBR Green qPCR预混液 | Bimake | -- |
| ChIP | 抗STAT3抗体 | CST | #12640 |
| 抗磷酸化STAT3抗体 | CST | #9145 | |
| 正常小鼠IgG | Santa Cruz | sc-2025 | |
| 免疫荧光 | 抗TRPM7抗体 | Abcam | ab729 |
| 抗NLRP3抗体 | Proteintech | 19771-1-AP | |
| 抗NeuN抗体 | Abcam | ab104224 | |
| 抗GFAP抗体 | Bioawamp | PAB32097 | |
| DAPI染料 | Solarbio | C0060 | |
| western blot | 抗NLRP3抗体 | ABclonal | A5652 |
| 抗磷酸化STAT3抗体(Tyr705) | Bioss | bs-1658R | |
| 抗caspase-1抗体 | Proteintech | 22915-1-AP | |
| 抗STAT3抗体 | Proteintech | 10253-2-AP | |
| 抗GSDMD抗体 | Abcam | ab219800 | |
| 抗磷酸化JAK2抗体 | Bioawamp | PAB30711 | |
| 抗JAK2抗体 | Abcam | ab32101 | |
| 抗Tubulin抗体 | Santa Cruz | sc-8035 | |
| 抗β-actin抗体 | Proteintech | 20536-1-AP | |
| 抗TRPM7抗体 | Abcam | ab245408 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| ELISA | 人IL-1β ELISA试剂盒 | Wuhan ColorfulGene Biological Technology | -- |
| 人IL-18 ELISA试剂盒 | Wuhan ColorfulGene Biological Technology | -- | |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | Bioswamp | -- | |
| 小鼠IL-18 ELISA试剂盒 | Bioswamp | -- | |
| Zn2+染色 | TSQ荧光染料 | AAT BIOQUEST | 21254 |
| 膜片钳 | EPC-10放大器 | HEKA | -- |
| 脑电图 | 不锈钢螺丝 | -- | -- |
| 立体定位注射 | 注射泵 | RWD Life Science Co., Ltd | R462 |
| 荧光显微镜 | 共聚焦荧光显微镜 | Nikon A1R | -- |
| 荧光显微镜 | Olympus BX61 | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SE模型诱导 | PILO剂量:300 mg/kg i.p. 阅读提示:Methods: Animals and drug administration |
| 细胞培养 | N2a细胞购买来源:Fenghbio;BV2细胞购买来源:Procell;培养条件:10% FBS DMEM + 1% 青霉素-链霉素 阅读提示:Methods: Cell culture and drug administration |
| siRNA转染 | siRNA靶序列见Supplemental Table 1 阅读提示:Methods: Small interfering RNA (siRNA) and overexpression plasmid transfection |
| ChIP assay | 抗体:anti-STAT3 (#12640), anti-p-STAT3 (#9145) from CST;PILO浓度:12 mM;交联时间:10 min 阅读提示:Methods: Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay |
| 立体定位注射 | 注射位点:AP:-3.28 mm, ML:±2.75 mm, DV:-2.5 mm;注射量:1 μL;流速:1 μL/min 阅读提示:Methods: Stereotaxic injection |
| EEG记录 | 电极位置:双侧体感皮层(AP:-1.0 mm, ML:±1.5 mm);参考电极:小脑 阅读提示:Methods: Electroencephalogram (EEG) recordings |
| Zn2+染色 | TSQ浓度:4.5 μM;孵育时间:5 min 阅读提示:Methods: Zn2+ staining |
| Western blot | 一抗稀释比例:1:1000 或 1:5000,具体抗体见方法 阅读提示:Methods: Western blot |