CD47阻断驱动的坏死性凋亡与BCL-2抑制驱动的凋亡在淋巴恶性肿瘤中的互补作用

CD47 blockade-driven necroptosis complements BCL-2 inhibition-driven apoptosis in lymphoid malignancies

作者信息Stephen J F Chong, Rebecca Valentin, Jing Wang, Fen Zhu, Prafulla C Gokhale, Benjamin K Eschle, Filip Garbicz, Kartini Iskandar, Tomasz Sewastianik, Brienne C Y Toh, Johany Penailillo, Marisa O Peluso, Jeremy Zhang, Liam Hackett, Mary C Collins, Timothy Z Lehmberg, Ammar Adam, Li Zhang, Caroline M Armet, Matthew Rausch, Benjamin H Lee, Pamela M Holland, Vito J Palombella, Alison M Paterson, Li Ren Kong, Elisa Ten Hacken, Jennifer L Guerriero, Charles Herbaux, Catherine J Wu, Wee Joo Chng, Shazib Pervaiz, Carsten U Niemann, Ruben D Carrasco, Matthew S Davids
PMID41484790
发布时间2026-01-03
DOI10.1186/s13045-025-01774-3

实验完整度

包含体外细胞系和原代CLL细胞实验、体内细胞系来源和患者来源异种移植模型,并进行了功能验证(siRNA敲低、抑制剂)和机制验证(Western blot、IHC)。

主要模型

Ri-1淋巴瘤细胞系(DLBCL) 患者原代慢性淋巴细胞白血病(CLL)细胞 Ri-1细胞系来源异种移植小鼠模型 DLBCL患者来源异种移植(PDX)小鼠模型

重点核对

使用Protein G包被板固定抗体以模拟Fc受体支架 SRF231浓度(10 µg/ml)和处理时间(细胞系24小时,原代细胞6小时) venetoclax剂量(体外50 nM或5 nM,体内25 mg/kg或100 mg/kg) BH3 profiling评估BCL-2依赖性的条件 RIPK1抑制剂Necrostatin-1和RIPK3抑制剂GSK'872的预处理

摘要

免疫检查点阻断CD47在淋巴恶性肿瘤中显示出有前景的结果,其效应归因于促进肿瘤细胞吞噬。然而,已报道了其他细胞毒性细胞死亡机制,可能有助于整体抗肿瘤活性。尽管先前研究强调了caspase非依赖性细胞死亡机制,但该机制尚未被充分表征,因此需要进一步研究以全面理解CD47阻断的抗肿瘤机制,从而为联合治疗优化药物搭档选择。方法:使用了全人源抗CD47单克隆抗体SRF231、magrolimab以及小鼠单克隆抗CD47抗体B6H12。通过定制的Hoechst/Annexin V、精准医学技术BH3 profiling以及标准实验技术——流式细胞术、siRNA和CRISPR Cas9遗传操作、Western blotting和免疫组织化学,评估了包括凋亡、自噬和坏死性凋亡在内的多种细胞死亡机制。这些技术用于广泛的淋巴恶性肿瘤模型,包括弥漫性大B细胞淋巴瘤、伯基特淋巴瘤和T急性淋巴细胞白血病细胞系、患者原发性慢性淋巴细胞白血病细胞,以及淋巴样细胞系来源和患者来源的异种移植小鼠,以阐明CD47阻断的细胞死亡机制并确定联合治疗的最佳药物搭档。结果:我们证明了抗CD47抗体SRF231、magrolimab和B6H12通过激活RIPK1/MLKL/坏死性凋亡通路,消除了多种体外和体内淋巴恶性肿瘤模型中的肿瘤细胞。此外,BH3 profiling技术区分了两种不同的淋巴恶性肿瘤模型,它们在与SRF231联合使用时对BCL-2抑制剂venetoclax的反应不同;一种突出了SRF231诱导的坏死性凋亡和venetoclax诱导的凋亡在特异性依赖BCL-2生存的模型中的有效且独特机制,而另一种则暗示venetoclax在不依赖BCL-2生存或对venetoclax治疗无反应的模型中与SRF231联合是适得其反的搭档。结论:总的来说,这项研究揭示了通过激活坏死性凋亡来靶向CD47的一种新的非经典细胞死亡机制,并为进一步评估CD47阻断与或不与凋亡诱导剂联合用于合适淋巴恶性肿瘤患者的治疗策略提供了证据和依据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
抗CD47抗体SRF231诱导非吞噬性细胞死亡的机制是什么,以及如何通过BH3 profiling筛选合适的联合治疗搭档(如venetoclax)?
核心机制
SRF231通过激活RIPK1/MLKL介导的坏死性凋亡通路诱导细胞死亡,与凋亡和自噬无关;在BCL-2依赖的模型中,SRF231诱导的坏死性凋亡与venetoclax诱导的凋亡互补,但耐药细胞中venetoclax可能通过稳定MCL-1而促进肿瘤生长。
主要证据
体外实验显示SRF231增加p-RIPK1和p-MLKL水平,siRNA敲低MLKL或抑制RIPK1/RIPK3可阻断细胞死亡;体内异种移植模型中SRF231处理肿瘤的IHC显示p-RIPK1和p-MLKL增加,且与venetoclax联合在BCL-2依赖模型中增强疗效,但在耐药PDX模型中加速复发。
研究意义
研究提出CD47阻断通过激活坏死性凋亡发挥抗肿瘤作用,并建议使用BH3 profiling评估BCL-2依赖性,以指导CD47阻断单独或联合venetoclax的合理应用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证CD47阻断诱导吞噬和细胞死亡

评估SRF231是否通过巨噬细胞吞噬作用和非吞噬作用诱导淋巴恶性肿瘤细胞死亡。

将CFSE标记的Jurkat或CLL细胞与hMDMs共培养,用SRF231处理2小时,通过流式细胞术检测吞噬和细胞死亡;将CLL细胞暴露于protein G固定的SRF231,用AnnV/Hoechst检测细胞死亡。

2

排除凋亡和自噬机制

确定SRF231诱导的细胞死亡是否依赖于caspase或自噬通路。

使用pan-caspase抑制剂Z-VAD-FMK和自噬抑制剂BAPTA预处理原代CLL细胞,检测caspase 3裂解和LC3A/B表达。

3

验证坏死性凋亡通路激活

检测SRF231是否通过RIPK1/RIPK3/MLKL通路诱导坏死性凋亡。

Western blot和免疫细胞化学检测p-RIPK1和p-MLKL水平;使用siRNA敲低MLKL和RIPK1/RIPK3抑制剂预处理验证。

4

评估与venetoclax的联合效应在BCL-2依赖模型

确定SRF231诱导的坏死性凋亡能否增强venetoclax在BCL-2依赖的细胞中的凋亡效应。

使用BH3 profiling评估细胞的BCL-2依赖性;用SRF231和venetoclax单独或联合处理细胞,检测细胞活力、caspase 9活性、caspase 3裂解、p-MLKL和吞噬作用。

5

验证联合治疗在体内BCL-2依赖模型中的活性

评估SRF231联合venetoclax在BCL-2依赖的淋巴瘤和白血病异种移植模型中的抗肿瘤疗效。

在CB17-SCID小鼠中皮下植入Ri-1或HL60细胞,分别或联合给予SRF231和venetoclax,监测肿瘤体积、完全缓解率和生存。

6

评估SRF231在venetoclax耐药模型中的活性

确定SRF231能否克服venetoclax耐药,并评估联合是否对耐药细胞有效。

用venetoclax和SRF231处理venetoclax耐药细胞系(如TMD8、OCI-Ly1-R),检测细胞活力和坏死性凋亡标志物;在DLBCL PDX模型中评价SRF231单药和联合venetoclax的疗效。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
Ficoll-PaqueGE Healthcare--
RosetteSep人单核细胞富集混合物Stem Cell Technologies#15068
SRF231Surface Oncology--
MagrolimabProSci#10-950
B6H12BD Biosciences#556043
维奈克拉MedChemexpress Co.#HY-15531
APC小鼠抗人CD14BD Biosciences#555399
APC小鼠抗人CD206BD Biosciences#550889
CellTrace CFSELife Technologies#C34554
Zombie Violet可固定活力试剂盒Biolegend#423113
Z-VAD-FMKSanta Cruz Biotechnology#sc-3067
BAPTA/AMSanta Cruz Biotechnologysc-202488
GSK'872Selleckchem#S8465
Necrostatin-1Selleckchem#S8037
RIPK1磷酸化Ser166兔抗体Cell Signaling Technology#65746
RIPK1兔抗体Cell Signaling Technology#3493
MLKL磷酸化ser358兔抗体Cell Signaling Technology#91689
抗MLKL兔抗体Cell Signaling Technology#14993
β-肌动蛋白小鼠抗体Santa Cruz Biotechnology#sc-47778
caspase 3兔抗体Cell Signaling Technology#9662
抗LC3兔抗体Cell Signaling Technology#4108
抗ERK兔抗体Cell Signaling Technology#4695
抗PGAM兔抗体Abcam#ab126534
抗兔IgG,HRP连接抗体Cell Signaling Technology#7074
抗小鼠IgG,HRP连接抗体Cell Signaling Technology#7076
MLKL磷酸化Ser358兔抗体Abcam#ab187091
MLKL磷酸化Thr357小鼠抗体Novus Biologicals#MAB91871
RIPK1磷酸化ser166兔抗体Thermofisher#PA5-104645
RIPK1磷酸化ser166兔抗体Thermofisher#PA5-104645
MLKL磷酸化ser358兔抗体Cell Signaling Technology#91689
Neon转染系统和试剂盒Thermo Fisher#MPK10096
针对人MLKL的ON-TARGETplus siRNA--#J-005326-05-0020
重组人M-CSFLife Technologies#PHC9501
HoechstInvitrogen#H3570
Alexa Fluor 488-Annexin VLife Technologies#A13201
含DAPI的封片剂ThermoFisher#P36931
Alexa Fluor-488抗兔IgGInvitrogen#A11034
CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒Promega#G7570
Caspase-Glo 9检测试剂盒Promega#G8211
BD Fortessa流式细胞仪BD Biosciences--
Vectra 2智能玻片分析系统Caliper LifeSciences--
HALO图像分析软件Indica Labs--
GraphPad Prism----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞处理
SRF231浓度(10 µg/ml)、处理时间(细胞系24小时,原代细胞6小时)、Protein G包被板的规格和抗体固定方法
阅读提示:Methods: Scaffolding/immobilization of antibody and protein G-based cytotoxicity assay; 图1和2的图例
联合治疗
venetoclax剂量(体外50 nM或5 nM,体内25 mg/kg或100 mg/kg)、给药顺序(联合组SRF231后venetoclax延迟给药)
阅读提示:Methods: Tumor xenograft studies; 图4和6的图例
BH3 profiling
BH3肽和venetoclax浓度、细胞数量、孵育时间(60分钟)、透化条件(0.002% digitonin)、染色抗体组合
阅读提示:Methods: BH3 profiling; 图3和6的图例
抑制剂实验
Z-VAD-FMK、BAPTA、GSK'872、Necrostatin-1的浓度和预孵育时间(1小时或30分钟)
阅读提示:Methods: Reagents and antibodies; 图2G-H和图S4的图例
动物实验
小鼠品系(CB17-SCID,NSG)、细胞植入数量(Ri-1 1×10^7,HL60 5×10^6)、给药途径(IP或口服)、剂量和方案
阅读提示:Methods: Tumor xenograft studies; 图4和6的图例